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    大豆蛋白納米纖維冷凝膠對核黃素的控釋研究

    2022-03-04 11:05:08關(guān)琛李萌李寧周航慶張建紅李琳
    關(guān)鍵詞:核黃素電位凝膠

    關(guān)琛,李萌,李寧,周航慶,張建紅,李琳

    (1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)食品學(xué)院,大慶 163319;2.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院)

    蛋白質(zhì)自組裝纖維結(jié)構(gòu)吸引了納米技術(shù)、食品、醫(yī)學(xué)等多個研究領(lǐng)域的顯著興趣[1]。大豆蛋白[2]、乳清蛋白[3]等多種食品蛋白[4]均可在酸性條件(通常在pH2.0左右)和低離子強度下,長時間加熱自組裝成納米纖維。這些蛋白納米纖維具有高縱橫比(長度1~10μm,直徑1~10 nm),能夠在極低的蛋白質(zhì)濃度下形成自支撐水凝膠,具有更好的乳化和起泡特性,可用作增稠劑、乳化劑等[5-6],在靶向、定點投放方面具有多種優(yōu)勢,可用于制造微膠囊、微凝膠和水凝膠等,來包封咖啡因[7]、維生素[8]等以實現(xiàn)控制釋放[9-10]。蛋白質(zhì)濃度、pH值、加熱時間和溫度、加熱方式、離子強度、離子類型[3,11]等因素都會影響納米纖維的形成和所得纖維的屬性。纖維表面存在多種反應(yīng)性的官能團,這使得它們可以被多種試劑調(diào)節(jié)。

    近年來,應(yīng)用食物蛋白納米纖維制造冷固性凝膠引起了國內(nèi)外學(xué)者的關(guān)注。Veerman等[12]通過Ca2+誘導(dǎo)β-乳球蛋白纖維冷凝膠,主要分兩步進行。第一步是蛋白質(zhì)溶液在遠(yuǎn)離等電點和低離子強度的條件下加熱形成納米纖維結(jié)構(gòu);在第二步中,調(diào)節(jié)pH值至中性條件后添加鹽,通過降低靜電斥力誘導(dǎo)凝膠化。該過程的蛋白濃度比熱誘導(dǎo)凝膠法或常規(guī)冷定型凝膠法低得多。Abaee等研究表明,添加少量的CaCl2可以形成透明凝膠,其微觀結(jié)構(gòu)的特征是形成細(xì)絲[13]。Mohammadian等[14-15]使用不同的二價陽離子制得乳清蛋白纖維冷凝膠,其中Zn2+-冷凝膠具有更緊密的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),在模擬胃液條件下降解的程度也更大。相同的蛋白質(zhì)濃度和pH條件下,冷固性凝膠比熱固性凝膠具有更均勻的微觀結(jié)構(gòu),更高的凝膠強度和斷裂性能、更好的保水性和透明度[16]。

    大豆分離蛋白(SPI)具有良好的凝膠性,可以用于改善食品的質(zhì)地和口感[17]。然而,傳統(tǒng)的SPI凝膠通常是通過熱處理實現(xiàn)的,這限制了它作為熱敏化合物載體的應(yīng)用。而納米載體可以為游離的生物活性成分提供許多優(yōu)點,例如增加溶解性(或分散性)和穩(wěn)定性,增強吸附,甚至改善細(xì)胞內(nèi)的滲透。目前,尚未見鹽誘導(dǎo)SPI纖維冷凝膠控釋性能的研究報道。核黃素具有較低的分子量和部分水溶性,并且與大豆蛋白沒有很強的相互作用,易于擴散和定量分析。因此,選用核黃素作為藥物模型,目的是探究SPI纖維冷凝膠作為核黃素載體,為SPI纖維冷凝膠的開發(fā)及利用提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    大豆低溫脫脂豆粕;山東萬得福集團實業(yè)有限公司;化學(xué)試劑均為分析純。硫磺素T(Th T)、核黃素均為分析純,購于美國Sigma公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    H1850R型高速冷凍離心機:湖南湘儀離心機有限公司;ALPHA 1-4 LSC型冷凍干燥機:德國Christ公司;KJ2300型凱氏定氮儀:瑞典Foss公司;Zetasizer Nano-ZS90粒度儀:英國馬爾文儀器公司;LVDV-II Pro型旋轉(zhuǎn)粘度計:美國Brookfield公司;U-1810型紫外可見分光光度計:北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;F-7000熒光分光光譜儀:日本日立高新技術(shù)公司。

    1.3 方法

    1.3.1 大豆分離蛋白的制備

    采用堿溶酸沉法自制。將低溫脫脂豆粕粉碎,按料液比1∶10加入去離子水,用1 mol·L-1NaOH調(diào)節(jié)pH至8.0,室溫下低速攪拌2 h后離心(8 000×g,30 min)。取上清液用1 mol·L-1HCl調(diào)節(jié)pH至4.5。4℃靜置1 h至蛋白質(zhì)析出后離心(8 000×g,10 min)。取出蛋白沉淀溶于去離子水,用1 mol·L-1NaOH調(diào)節(jié)pH至7.0。離心(8 000×g,10 min)去除不溶物。蛋白液于4℃透析48 h,凍干后得到SPI。凱氏定氮法測得蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為90.5%(N×6.25)。

    1.3.2 SPI纖維溶液的制備

    將SPI凍干粉溶解于去離子水中,室溫攪拌2 h后,調(diào)節(jié)pH值至2.0,4℃水化過夜。離心(10 000×g,30 min)后,凱氏定氮法測定上清液的蛋白含量。用去離子水(預(yù)調(diào)pH 2.0)將蛋白上清液稀釋到60 g·L-1。將蛋白溶液置于帶密封蓋的小瓶中,85℃水浴加熱20 h。加熱結(jié)束后,將蛋白質(zhì)樣品冰浴冷卻10 min,并置于4℃保存。

    1.3.3 SPI冷凝膠的制備

    根據(jù)Veerman等[13]的方法,SPI樣品用1 mol·L-1和0.1 mol·L-1NaOH將pH調(diào)節(jié)至8.0。添加適量的CaCl2溶液至終濃度為50 mmol·L-1,將溶液充分混合,室溫放置24 h后測定。

    1.3.4 Th T熒光測定

    將8 mg Th T溶于10 mL磷酸緩沖液中(10 mmol·L-1磷酸鹽和150 mmol·L-1NaCl,pH 7.0)中,使用0.22μm濾膜過濾后制得Th T的儲備液。用磷酸鹽緩沖液稀釋50倍制得工作液。將50μL的樣品加入5 mL Th T工作液后測量。激發(fā)波長為460 nm,發(fā)射波長為490 nm。

    1.3.5 ζ-電位測定

    在pH 2.0~10.0范圍內(nèi)測量SPI和SPI納米纖維溶液的ζ-電位。樣品在預(yù)設(shè)的pH值下用雙蒸水稀釋到1 mg·mL-1的蛋白質(zhì)濃度,然后用0.2 mol·L-1的NaOH或HCl調(diào)整到所需的pH值。

    1.3.6 表觀粘度測定

    在室溫下用旋轉(zhuǎn)粘度計測量溶液的流變特性。每次測試中,將約50 mL樣品倒入溫控測量容器中,在3 s間隔內(nèi)從1~100 s-1剪切。冪律模型參數(shù)由以下方程確定以表征溶液的流動行為:

    其中η是表觀粘度(Pa S),K是稠度系數(shù)(Pa Sn),γˉ是剪切速率(s-1),n是流動特性指數(shù)(無量綱)。

    1.3.7 載藥率及包封率測定

    核黃素以1.0 mg·mL-1的濃度溶于水中。然后將核黃素溶液加入SPI纖維溶液(pH 8.0)中,最終核黃素濃度分別為50、100、150、200、250μg·mL-1。添加適量的CaCl2、溶液至終濃度為50 mmol·L-1,將溶液充分混合,室溫放置24 h形成凝膠后離心(4 000×g,30 min)。用紫外-可見分光光度計在446 nm波長處測定核黃素滲濾液中核黃素的含量[10]。包封率(EE)和載藥率(LC)計算如下:

    包封率(EE)=凝膠中核黃素/總核黃素的質(zhì)量×

    1.3.8 模擬胃液和模擬腸液的制備

    模擬胃液(SGF):1.0 g NaCl及3.5 mL濃鹽酸定溶于500 mL雙蒸水,最終pH值為1.20。測定前1 h添加3.2 g·L-1的胃蛋白酶。

    模擬腸液(SIF):將6.8 g磷酸二氫鉀溶于250 mL去離子水中,加入去離子水450 mL,然后加入190 mL 0.2 mol·L-1的Na OH溶液,用0.2 mo1·L-1NaOH將pH值調(diào)至7.5,最后用雙蒸水定容至1 000 mL并于測定前1 h加入10.0 g·L-1胰蛋白酶。

    1.3.9 溶脹實驗

    稱取一定質(zhì)量的凝膠,然后將它們浸泡在不含酶的胃液或腸液中,定期取出,輕輕擦拭并重新稱重。溶脹度計算如下:

    式中,Wt是在時間t的凝膠重量,W0是初始凝膠劑重量。

    1.3.10 模擬胃腸液中的釋放性能測定

    取上述制備好的載藥凝膠放入裝有200 mL SGF和SIF的三角瓶中,置于37℃恒溫振蕩器中反應(yīng)8 h,振蕩速度100 r·min-1。為保證體積不變,每次取樣3.5 mL的同時補充等量的模擬胃腸液。

    1.4 統(tǒng)計分析

    所有實驗重復(fù)3次取均值,采用Origin 8.0軟件作圖。數(shù)據(jù)處理和分析采用SPSS 19.0軟件。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 SPI纖維形成過程中Th T及ζ-電位的變化

    硫磺素T(Th T)可以與纖維中分子間的β-折疊緊密結(jié)合[18],是一種可靠的淀粉樣纖維定量技術(shù),因為產(chǎn)生的熒光信號與纖維濃度成正比。如圖1所示,天然SPI在pH為2.0時熒光強度較低。加熱能夠觸發(fā)纖維的形成[19]。當(dāng)SPI在85℃加熱時,形成的纖維可以結(jié)合到Th T上,熒光強度隨加熱時間呈S形增加(圖1),這證實了β-折疊存在于SPI纖維中。熒光在最初幾小時變化不大(滯后期),然后迅速增加(生長期),表明在加熱過程中形成了纖維,最后趨于平穩(wěn)(穩(wěn)定期),表明纖維逐漸進入成熟階段,在此期間的自組裝速率下降。Akkerman等[20]報道了SPI在85℃下加熱可形成長的纖維狀半彈性聚集體。隨后將pH從2.0調(diào)整到8.0,SPI纖維熒光強度略低(數(shù)據(jù)未顯示)。熒光強度的降低可能是由于纖維的部分β-折疊結(jié)構(gòu)被破壞所致[21]。

    圖1 SPI纖維形成過程中Th T及ζ-電位的變化Fig.1 Th T fluorescence andζ-potential of amyloid-like fibril formation of SPI

    ζ-電位通常被認(rèn)為是蛋白質(zhì)懸浮液穩(wěn)定性的指標(biāo),ζ-電位絕對值越高,穩(wěn)定性越好[22]。SPI在pH 2.0時帶正電荷,當(dāng)pH低于其等電點時,氨基發(fā)生質(zhì)子化,并隨著加熱時間增加,表面電荷達到了新的平衡。加熱20 h后,ζ-電位值在21~25 mV之間,這與Liu等[23]結(jié)果一致。ζ-電位的增長可能是由于蛋白質(zhì)在纖維化過程中發(fā)生變性、水解和結(jié)構(gòu)單元自組裝,導(dǎo)致了蛋白質(zhì)的展開和帶電基團的暴露[6]。這一觀察結(jié)果與Th T熒光數(shù)據(jù)一致。

    2.2 pH對SPI纖維ζ-電位的影響

    如圖2所示,將SPI纖維溶液的pH從2.0增加到10.0,SPI表面電荷由正向負(fù)變化。其等電點與天然SPI的等電點非常相似(pH~4.5)。在等電點時,由于纖維內(nèi)和纖維間排斥的最小化,導(dǎo)致了纖維的不穩(wěn)定性,納米纖維發(fā)生破壞和聚集。由于沒有靜電斥力來減少纖維間和纖維內(nèi)的相互作用,蛋白原纖維聚集并斷裂成更短的片段[24]。中性pH下纖維的表面電荷量低于酸性pH下的纖維,說明帶電基團暴露較少。在pH為8.0時(高于蛋白等電點),對照體系和纖維體系的ζ-電位沒有顯著差異。有報道指出,當(dāng)β-乳球蛋白纖維溶液的pH值被調(diào)整到8時,仍然可以觀察到線性纖維[12],纖維的斷裂是一個相對緩慢的過程,完全解離可能需要很長時間。在此條件下,加入50 mmol·L-1CaCl2后,由于纖維間靜電相互作用的屏蔽和Ca2+離子在SPI的帶電或羧基之間形成鹽橋的作用,形成冷凝膠。這種方法制備的纖維冷凝膠的最低蛋白質(zhì)濃度比用傳統(tǒng)冷凝膠法制備的最低濃度低。

    圖2 pH對ζ-電位的影響Fig.2 Effect of pH onζ-potential

    2.3 凝膠預(yù)溶液的粘度和流動特性

    不同樣品溶液的表觀粘度隨剪切速率的變化如圖3所示,由冪律模型得到的流變參數(shù)見表1。溶液的粘度很大程度上取決于多肽的體積和分子間的相互作用。未加熱的SPI溶液粘度較低,表現(xiàn)出牛頓流體行為。纖維溶液樣品的粘度和剪切變稀程度均高于未加熱的樣品。這是由于蛋白溶液加熱后發(fā)生變性,蛋白分子展開形成納米纖維結(jié)構(gòu),流體力學(xué)直徑增大以及形成具有高纏繞和形成密集網(wǎng)絡(luò)能力的納米纖維結(jié)構(gòu),導(dǎo)致SPI纖維溶液粘度急劇增加[25],這與Mohammadian等[26]的結(jié)果一致。將纖維溶液的pH調(diào)至8.0時,由于纖維骨架上電荷分布發(fā)生改變,導(dǎo)致分子間的相互作用減弱,n值略有上升,表明假塑性減弱,這與Zhang等[27]的結(jié)果一致。流變結(jié)果除了受分散體系中纖維的體積分?jǐn)?shù)的影響,還會受到纖維剛性、纖維長度分布和基質(zhì)的影響[3]。當(dāng)pH值高于等電點時,纖維具有凈負(fù)電荷,這有利于在pI時形成的聚集體的分散,但纖維由于中和過程發(fā)生斷裂和長度縮短。SPI纖維溶液的粘度和稠度系數(shù)K隨著pH的增加而下降,這可能是由于纖維的部分結(jié)構(gòu)被破壞,與Th T結(jié)果一致。流變學(xué)結(jié)果表明性質(zhì),與天然蛋白相,SPI纖維溶液具有更高更大的尺寸,在pH 8.0時形成的縮短的纖維片段仍然具有較高的粘度,有助于改善凝膠性質(zhì)。纖維纏繞產(chǎn)生密集的堆積結(jié)構(gòu),能夠抵抗剪切場方向的流動。隨著剪切速率進一步增加,納米纖維結(jié)構(gòu)逐漸解纏,表現(xiàn)出強烈的剪切變稀特性。SPI纖維的高粘度和剪切變稀表明它們具有良好的物理改性能力。

    圖3 不同蛋白溶液的表觀粘度Fig.3 Apparent viscosity profiles of various soy protein dispersions

    表1 SPI溶液、纖維溶液(Ph 2.0、8.0)的流變參數(shù)(n,K)Table 1 Rheological parameters(n,k)for the SPI dispersions before and after fibrillation process

    2.4 溶脹實驗

    溶脹能力是納米纖維凝膠的重要特征,這是由于在蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)中存在的親水基團,如羥基、氨基和羧基。這種能力使蛋白質(zhì)納米凝膠成為封裝和傳遞生物活性化合物的理想結(jié)構(gòu),同時也是其柔軟和彈性特性的原因,是藥物釋放裝置開發(fā)過程中需要考慮的一個重要參數(shù)[28]。大豆蛋白水凝膠是pH敏感裝置,因為多肽鏈上存在酸性和堿性基團,可以接受或釋放質(zhì)子,以響應(yīng)介質(zhì)pH的變化[29]。通過未溶脹的聚合物的擴散比通過溶脹的聚合物慢得多。SGF(pH 1.2)和SIF(pH 7.5)中SPI纖維冷凝膠溶脹隨時間的演變?nèi)鐖D4所示。在酸性介質(zhì)中浸泡24 h后,SPI纖維冷凝膠的溶脹率達到10%左右,這是由于蛋白質(zhì)鏈上胺基的質(zhì)子化所產(chǎn)生的靜電斥力增強了水在網(wǎng)絡(luò)中的擴散,羧基處于非離子化狀態(tài)(-COOH),不與Ca2+交聯(lián),導(dǎo)致其結(jié)構(gòu)疏松,促進了凝膠網(wǎng)絡(luò)對水的吸收。放置在SIF(pH 7.5)中的凝膠,電離羧基(-COO-)可能通過與Ca2+形成鹽橋而相互交聯(lián)。鈣進一步在磷酸鹽緩沖液中沉淀,導(dǎo)致凝膠收縮,重量減少;凝膠可能會因分子重排而排出水分,減少孔隙度,從而防止溶脹。

    圖4 SPI纖維冷凝膠在SGF、SIF中的溶脹24 h(25℃)Fig.4 SPI fibrillar cold gels swelling in SGF and SIF over a 24 h period at 25℃

    2.5 荷載量和包封率

    蛋白質(zhì)納米凝膠在食品應(yīng)用中的使用可能會給含有熱敏成分的配方帶來一些限制—特別是當(dāng)這些納米系統(tǒng)是通過熱凝膠生產(chǎn)的時候。此外,由于纖維凝膠是通過物理凝膠化產(chǎn)生的,在主干或交聯(lián)中含有不穩(wěn)定的鍵,這些鍵在生理條件下通過酶作用(在通過胃腸道的過程中)或者化學(xué)作用(通常是通過水解)容易受到破壞。因此,包埋在這種納米結(jié)構(gòu)中的成分可以被降解。納米纖維冷凝膠的形成可能為食品蛋白作為熱敏性營養(yǎng)食品化合物的載體提供機。確定包封性參數(shù),特別是載體的包封率(EE)和載藥量(LC),對于評估系統(tǒng)對特定藥物的裝載能力以及藥物輸送系統(tǒng)的治療效果至關(guān)重要。因此,對SPI納米纖維冷凝膠的核黃素包封率(EE)和載藥量(LC)進行了測定。由圖5可以看出,隨著核黃素濃度的增加,凝膠中核黃素載藥量(LC)呈線性增加,包封率(EE)先增加后降低。當(dāng)核黃素濃度為200μg·mL-1時包封率達到86.6%,是制備核黃素納米凝膠的最佳濃度。而天然SPI在這一蛋白濃度下(60 g·L-1)加熱仍無法形成凝膠。因此,包封性參數(shù)的測定表明SPI纖維冷凝膠可以在較低蛋白濃度下用作藥物的包封體,這有助于擴大核黃素在食品和藥物制劑中的應(yīng)用。

    圖5 不同核黃素濃度的SPI纖維冷凝膠載藥量和包封率Fig.5 Drug encapsulations,loaded efficiencies of SPI fibrillar cold gels in different riboflavin concentrations

    2.6 核黃素在模擬胃腸液的釋放行為

    給藥系統(tǒng)的一個重要屬性是其藥物釋放過程,藥物釋放過程受到不同因素的影響,例如材料基質(zhì)的性質(zhì)(組成、結(jié)構(gòu)、膨脹和降解)、釋放介質(zhì)(pH、溫度、離子強度和酶)以及藥物(溶解性、穩(wěn)定性、電荷和可能與基質(zhì)的相互作用。而在模擬生理條件下測定藥物釋放系統(tǒng)的藥物釋放行為是非常重要的,因為它與所獲得的載體對人體健康的有效性密切相關(guān)。在模擬胃腸道條件下,核黃素從SPI纖維冷凝膠的體外釋放行為如圖6所示。凝膠中的核黃素均隨著消化時間的延長而釋放。在初始120 min內(nèi),核黃素釋放最快,釋放量達到43.6%;當(dāng)消化240 min時,核黃素釋放量基本趨于穩(wěn)定,釋放量達到55%。說明大豆蛋白纖維冷凝膠載體在SGF中對核黃素起到了控制-釋放作用。釋放率的變化結(jié)果與凝膠溶脹的觀察結(jié)果一致。SIF中凝膠的破壞有助于核黃素釋放速率的增加,而SGF中較小的溶脹則轉(zhuǎn)化為緩慢的擴散。此外,SGF中基質(zhì)對水的吸收有助于稀釋內(nèi)部核黃素濃度,降低核黃素從基質(zhì)流向溶解介質(zhì)。劉晶等[30]的研究表明蕓豆蛋白的纖維凝膠對咖啡因的具有緩釋效果。

    圖6 添加酶前后載藥SPI纖維冷凝膠在SGF、SIF中的核黃素釋放率Fig.6 Riboflavin release from SPI fibrillar cold gels in stimulated gastric fluid(SGF)and stimulated intestinal fluid(SIF)with and without enzyme

    消化酶的存在是影響蛋白質(zhì)凝膠控釋性能的另一個重要因素。這是由于消化酶能夠分解蛋白質(zhì)基質(zhì),從而加速分子的釋放。添加胃蛋白酶能夠提高核黃素的釋放量,主要是由于胃蛋白酶水解蛋白凝膠,使得凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)被破壞,蛋白質(zhì)之間的相互作用減弱,核黃素迅速擴散。與SGF中核黃素的釋放曲線類似,SPI纖維冷凝膠在初始120 min內(nèi),快速釋放核黃素;當(dāng)消化240 min時,核黃素釋放量為66%且基本趨于穩(wěn)定。添加胰蛋白酶后核黃素的釋放量升高至88%。體外評價表明,SPI纖維冷凝膠在胃腸道模擬介質(zhì)中表現(xiàn)出明顯的緩釋行為,這可以擴大其在生物活性化合物和藥物的定點遞送方面的應(yīng)用。

    3 結(jié)論

    SPI在pH 2.0下加熱20 h后形成的纖維,導(dǎo)致Th T熒光、ζ-電位、表觀粘度上升。然后將pH調(diào)至8.0,并加入CaCl2制得冷凝膠。與傳統(tǒng)的SPI凝膠相比,這種纖維冷凝膠可以在較低的蛋白濃度下形成凝膠網(wǎng)絡(luò),可將其用作核黃素載體。隨著核黃素濃度的增加,凝膠中核黃素載藥量呈線性增加,包封率先增加后降低。當(dāng)核黃素濃度為200μg·mL-1時包封率達到86.6%,是制備核黃素納米凝膠的最佳濃度。在模擬胃腸道條件下的核黃素體外釋放實驗也表明,SPI纖維冷凝膠表現(xiàn)出明顯的緩釋行為,可以用作核黃素的包封體。綜上所述,SPI纖維冷凝膠可以作為一種潛在的多功能載體,在較低的蛋白濃度下,將核黃素引入到食品的配方中,從而改善其保健屬性。

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