低鹽脅迫后兩種龍須菜(Gracilariopsis lemaneiformis)葉綠素?zé)晒馓卣鞯膶?duì)比分析

李曉梅, 楊曉琪, 段德麟

低鹽脅迫后兩種龍須菜()葉綠素?zé)晒馓卣鞯膶?duì)比分析

李曉梅1, 2, 3, 楊曉琪1, 2, 段德麟1, 2

(1. 中國(guó)科學(xué)院海洋研究所 海洋大科學(xué)研究中心 實(shí)驗(yàn)海洋生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 山東 青島 266071; 2. 青島海洋科學(xué)與技術(shù)試點(diǎn)國(guó)家實(shí)驗(yàn)室 海洋生物學(xué)與生物技術(shù)功能實(shí)驗(yàn)室, 山東 青島 266237; 3. 中國(guó)科學(xué)院大學(xué), 北京 100049)

以龍須菜981品種和其綠色突變型為材料, 運(yùn)用葉綠素?zé)晒夥治黾夹g(shù), 比較低鹽脅迫(鹽度28和22)下二者光合生理的差異。研究結(jié)果證實(shí), 在正常狀態(tài)下, 龍須菜綠色突變型具有較高的光能利用效率()、最大相對(duì)電子傳遞速率(ETRmax)、半飽和光強(qiáng)(k)和光性能指數(shù)(Iabs), 表明其光合性能優(yōu)于龍須菜981。在2種低鹽條件下培養(yǎng)3 d, 鹽度28處理后, 龍須菜981的最大相對(duì)電子傳遞速率下降了20.4%, 而龍須菜綠色突變型無(wú)顯著變化, 表明鹽度28可使龍須菜981的光合活性減弱。在鹽度22培養(yǎng)3 d后, 龍須菜981的最大光量子產(chǎn)量(V/m)下降幅度高達(dá)16.0%, 而龍須菜綠色突變型的下降幅度為11.9%; 龍須菜981電子傳遞的量子產(chǎn)額(EO)下降了20.3%, 而龍須菜綠色突變型則無(wú)顯著變化; 另外, 鹽度22處理后, 龍須菜981的光能利用效率和最大相對(duì)電子傳遞速率分別下降31.5%和22.1%, 下降幅度均高于龍須菜綠色突變型, 這表明龍須菜綠色突變型光合活性對(duì)低鹽脅迫的耐受性高于龍須菜981。

龍須菜; 低鹽脅迫; 葉綠素?zé)晒?/p>

龍須菜()隸屬紅藻門(mén)(Rhodophyta)江蘺目(Gracilariales)龍須菜屬(), 是一種生長(zhǎng)在潮間帶的大型經(jīng)濟(jì)紅藻[1]。龍須菜富含紅藻多糖、膳食纖維、維生素等物質(zhì), 具有降血壓和調(diào)節(jié)血脂的功效, 因而是健康海洋食品的來(lái)源[2-4]。龍須菜是瓊膠提取的重要原料[5-6], 近20年來(lái)已在我國(guó)南、北方實(shí)現(xiàn)了規(guī)模化養(yǎng)殖。2015年, 以龍須菜/江蘺屬為原料制備的瓊膠產(chǎn)量達(dá)到114 100 t(干質(zhì)量), 約占世界瓊膠產(chǎn)量的91%[2, 7]。龍須菜還可用作鮑養(yǎng)殖的活鮮餌料[3]。與許多大型海藻一樣, 龍須菜養(yǎng)殖對(duì)“碳匯漁業(yè)”發(fā)揮重要貢獻(xiàn)[8]。目前在中國(guó), 龍須菜養(yǎng)殖產(chǎn)量?jī)H次于海帶, 已成為第二大海藻養(yǎng)殖對(duì)象[9]。

溫度、鹽度、營(yíng)養(yǎng)鹽、光照等是影響龍須菜生長(zhǎng)的重要因素。高溫能夠誘發(fā)龍須菜氧化應(yīng)激, 造成龍須菜細(xì)胞損傷, 嚴(yán)重時(shí)甚至?xí)?dǎo)致藻體死亡[10]。Kang等[11]認(rèn)為龍須菜在高濃度CO2和NH4+培養(yǎng), 可提高光合效率, 增加生長(zhǎng)速率。強(qiáng)光可促進(jìn)龍須菜的光合作用[12]。在低鹽和高鹽條件下, 龍須菜光合放氧速率顯著下降且呼吸速率明顯提高, 從而導(dǎo)致生長(zhǎng)速率降低[13]。

鹽度是影響海藻生長(zhǎng)的最重要因素之一, 鹽度會(huì)影響藻類(lèi)的生理活性, 從而影響其生長(zhǎng)[1, 14-15]。受潮間帶環(huán)境的影響, 龍須菜需要經(jīng)歷周期性的低潮失水變化, 此時(shí)暴雨天氣會(huì)使藻體面臨低鹽脅迫。生長(zhǎng)在低鹽條件下的龍須菜葉綠素含量降低, 類(lèi)胡蘿卜素含量升高, 以提高其在低鹽條件下的光保護(hù)能力[16]。Chang等[17]發(fā)現(xiàn)低鹽能促進(jìn)龍須菜瓊膠產(chǎn)量積累以維持細(xì)胞形態(tài)。蔡西栗等[18]發(fā)現(xiàn)低鹽脅迫后龍須菜細(xì)胞色素體結(jié)板層結(jié)構(gòu)明顯腫脹且細(xì)胞間孔狀聯(lián)系部分受到破壞, 細(xì)胞內(nèi)紅藻淀粉顆粒變少。目前, 低鹽如何影響龍須菜光合作用的研究未見(jiàn)報(bào)道。

本研究以龍須菜981和其綠色突變型為對(duì)象, 通過(guò)對(duì)比其葉綠素?zé)晒馓卣? 探討低鹽條件(鹽度28和22)下光合生理響應(yīng)機(jī)制差異, 可為龍須菜響應(yīng)低鹽脅迫應(yīng)答提供理論依據(jù), 也可為低鹽環(huán)境下龍須菜養(yǎng)殖品種的選擇提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料采集

實(shí)驗(yàn)所用龍須菜981(編號(hào)Wt)和其綠色突變型(編號(hào)Gr)均采自山東高綠水產(chǎn)養(yǎng)殖有限公司(122.6°E, 37.2°N)。龍須菜綠色突變型, 是龍須菜981品種自然突變后連續(xù)無(wú)性繁殖而獲得, 其顏色表型穩(wěn)定(圖1)。從養(yǎng)殖筏架采集上述2種龍須菜, 低溫條件下運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室。用海水清洗, 去除其表面附著物, 分別在過(guò)濾的自然海水(鹽度為32), 于培養(yǎng)箱(GXZ- 280A, 寧波江南儀器廠)中預(yù)培養(yǎng)5 d, 培養(yǎng)條件: 溫度20 ℃, 光強(qiáng)72 μmol photons·m?2·s?1, 光周期L∶D=12 h∶12 h。

圖1 龍須菜981和龍須菜綠色突變型

1.2 方法

1.2.1 低鹽處理

使用光學(xué)折射鹽度計(jì)(SYY1-1, 濟(jì)南光學(xué)儀器廠)測(cè)定自然海水鹽度為32, 用去離子水將海水稀釋至鹽度28(低鹽條件1)和22(低鹽條件2)2種低鹽條件。將預(yù)培養(yǎng)的龍須菜981和龍須菜綠色突變型置于鹽度28和22兩種低鹽條件進(jìn)行脅迫處理, 處理過(guò)程中溫度始終保持20 ℃, 低鹽脅迫過(guò)程中的光強(qiáng)和光周期與預(yù)培養(yǎng)條件的一致。采集低鹽脅迫處理前(即第0天)以及低鹽脅迫后第1天、第2天和第3天的龍須菜樣品, 用于后續(xù)的葉綠素?zé)晒馍矸治觥?/p>

1.2.2 快速光響應(yīng)曲線(RLC)的測(cè)量與分析

挑選生長(zhǎng)狀態(tài)良好的龍須菜981和龍須菜綠色突變型藻體(5～10 cm), 使用Closed FluorCam FC800熒光成像系統(tǒng)(Photon Systems Instruments Ltd., Brno, Czech Republic)檢測(cè)二者快速光響應(yīng)曲線, 光合有效輻射(AR)梯度依次為: 0、66.29、169.86、377.00、584.14、791.28、998.42 μmol photons·m–2·s–1, 持續(xù)時(shí)間為10 s, 測(cè)定相對(duì)電子傳遞速率(relative electron transport rate,ETR), 采用Origin 2018軟件, 參照Eilers和Peeters[19]方法, 擬合快速光響應(yīng)曲線得到光能利用效率(、最大相對(duì)電子傳遞速率(ETRmax)和半飽和光強(qiáng)(k)。

1.2.3 快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)曲線(OJIP)檢測(cè)

采用Closed FluorCam FC800熒光成像系統(tǒng)(Photon Systems Instruments Ltd., Brno, Czech Republic), 對(duì)兩種龍須菜的葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)曲線進(jìn)行檢測(cè), 測(cè)量前暗適應(yīng)15 min。其中20 μs(O)、2 ms(J)、30 ms(I)和1 000 ms(P)分別記錄了O、J、I和P各相的熒光強(qiáng)度, 飽和光強(qiáng)度為3 000 μmol photons·m–2·s–1。從獲得的OJIP曲線各相熒光強(qiáng)度進(jìn)行JIP-test分析[20], 所得參數(shù)如表1。

1.2.4 非光化學(xué)淬滅(NPQ)的測(cè)量

采用Closed FluorCam FC800熒光成像系統(tǒng)(Pho-ton Systems Instruments Ltd., Brno, Czech Republic), 對(duì)2種龍須菜的NPQ進(jìn)行測(cè)量, 測(cè)量前暗適應(yīng)15 min。給予待測(cè)樣品飽和光(光強(qiáng)3 000 μmol photons·m–2·s–1)照射后繼續(xù)使用遠(yuǎn)紅外光照射, 得到NPQ值, 其反映待測(cè)樣品的熱耗散水平。

1.2.5 數(shù)據(jù)分析

所有數(shù)據(jù)均以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)表示。使用SPSS(21.0)進(jìn)行單因素方差分析,0.05為顯著差異。使用Origin 2018和Excel軟件繪制圖形。

表1 JIP-test參數(shù)及定義

Eilers和Peeters[19]建立了浮游植物光合作用速率與光強(qiáng)關(guān)系的動(dòng)態(tài)模型, 該模型通過(guò)最小二乘法對(duì)快速光響應(yīng)曲線進(jìn)行擬合, 擬合公式如下, 公式中的、和是通過(guò)模型擬合得到的常數(shù)參數(shù)。

各參數(shù)的計(jì)算公式分別是:

JIP-test是快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)分析的數(shù)學(xué)模型, 是專(zhuān)門(mén)用來(lái)評(píng)估毫秒級(jí)或微秒級(jí)葉綠體氧化還原級(jí)聯(lián)反應(yīng)的生物物理工具[21-22]。JIP-test可將瞬時(shí)熒光變化轉(zhuǎn)化為參數(shù)的定量變化, 其代表每一個(gè)被檢測(cè)的捕光復(fù)合體的總能量流入和流出之間的平衡, 并提供關(guān)于吸收能量的可能分配的信息, 利用這些方程, 可以描述PSII復(fù)合體之間的能量通信[23]。

2 結(jié)果

2.1 龍須菜981和龍須菜綠色突變型葉綠素?zé)晒鈱?duì)比分析

對(duì)正常生長(zhǎng)狀態(tài)下的龍須菜981和龍須菜綠色突變型的OJIP瞬時(shí)曲線檢測(cè)分析, 我們發(fā)現(xiàn)龍須菜綠色突變型的O、J、I和P相的熒光強(qiáng)度均高于龍須菜981(圖2a)。JIP-test分析表明, 龍須菜綠色突變型的Iabs高于龍須菜981(圖2b,0.01), 說(shuō)明龍須菜綠色突變型的PSII整體光合性能要高于龍須菜981。

另外我們發(fā)現(xiàn), 相同光化光梯度下, 龍須菜綠色突變型的ETR整體高于龍須菜981(圖2c)。指數(shù)模型擬合快速光響應(yīng)曲線(表2)發(fā)現(xiàn), 龍須菜綠色突變型的、ETRmax和k值均高于龍須菜981, 這表明龍須菜綠色突變型的光合效率和半飽和光強(qiáng)均高于龍須菜981。

PQ分析結(jié)果表明(圖2d), 龍須菜綠色突變型的PQ顯著低于龍須菜981(0.05), 說(shuō)明龍須菜綠色突變型的熱耗散水平低于龍須菜981。

2.2 低鹽脅迫對(duì)龍須菜981和龍須菜綠色突變型熒光參數(shù)的影響

低鹽28處理3 d后, 龍須菜綠色突變型V/m有微弱下降, 幅度為3.6%, 而隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng), 龍須菜981的V/m的下降趨勢(shì)增大(圖3a), 下調(diào)幅度可達(dá)10.2%。在鹽度28下, 龍須菜綠色突變型的EO無(wú)顯著變化(圖3b), 龍須菜981則下降了9.5%。龍須菜綠色突變型的V/m和EO受鹽度28影響較小, 而龍須菜981的V/m和EO則略有下降。

圖2 龍須菜981和龍須菜綠色突變型的葉綠素?zé)晒馓卣鞅容^

表2 龍須菜981(Wt)和龍須菜綠色突變型(Gr)的快速光響應(yīng)曲線參數(shù)

低鹽22處理后, 隨著時(shí)間的延長(zhǎng), 龍須菜綠色突變型的V/m下降趨勢(shì)增加, 在第3天出現(xiàn)顯著下降(圖3c), 幅度可達(dá)10.4%; 而龍須菜981的V/m也有明顯下降趨勢(shì), 幅度可達(dá)16.0%。在鹽度22下, 龍須菜綠色突變型的EO下降2.5%, 而龍須菜981第1天出現(xiàn)顯著下降(圖3d), 第3天后下降幅度為20.3%。這表明低鹽22條件脅迫處理后, 龍須菜981的V/m和EO下降幅度均高于龍須菜綠色突變型。

低鹽脅迫處理3 d后, 兩種龍須菜ETR均有下調(diào)趨勢(shì)(圖4a, b)。低鹽28條件脅迫3 d后, 龍須菜綠色突變型下降了9.7%, 而龍須菜981則下降了14.5%(圖4c); 龍須菜綠色突變型ETRmax下降了2.5%, 而龍須菜981發(fā)生顯著下降(圖4d), 下降幅度為20.4%。低鹽22條件脅迫3 d后, 龍須菜綠色突變型和龍須菜981的均出現(xiàn)下降, 幅度分別為12.1%和31.5%,ETRmax也分別下降了16.3%和22.1%。在鹽度28和22兩種低鹽條件下, 龍須菜綠色突變型光響應(yīng)曲線參數(shù)和ETRmax下降幅度均小于龍須菜981。

3 討論

3.1 龍須菜981與龍須菜綠色突變型葉綠素?zé)晒馓卣鲗?duì)比分析

龍須菜綠色突變型是龍須菜981品種自然突變后經(jīng)連續(xù)無(wú)性繁殖得到的表型穩(wěn)定的突變體, 其顏色的改變, 可能與藻膽蛋白的組成相關(guān)[4, 24-25], 而藻膽蛋白是藻類(lèi)光合作用重要的輔助色素, 因此我們推測(cè)龍須菜綠色突變型光合性能與龍須菜981品種存在較大差異。

圖3 低鹽脅迫3 d內(nèi)2種龍須菜葉綠素?zé)晒鈪?shù)對(duì)比

圖4 低鹽脅迫3 d后兩種龍須菜快速光響應(yīng)曲線及參數(shù)比較

植物中, PSII是光合作用電子傳遞鏈中響應(yīng)外界環(huán)境變化最敏感的組分[26]?？焖偃~綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)曲線OJIP, 主要反映了PSII的原初光化學(xué)反應(yīng)及光合結(jié)構(gòu)電子傳遞狀態(tài)等過(guò)程的變化[27]。在檢測(cè)的兩種龍須菜的OJIP曲線中, 龍須菜綠色突變型O、J、I和P相熒光強(qiáng)度均高于龍須菜981, 這說(shuō)明其PSII反應(yīng)中心和電子傳遞效率要高于龍須菜981。Iabs是以吸收光能為基礎(chǔ)的性能指數(shù), 能夠準(zhǔn)確反映藻類(lèi)光合結(jié)構(gòu)的狀態(tài)[28]。本研究中, 龍須菜綠色突變型的Iabs值高于龍須菜981, 說(shuō)明其光合性能要優(yōu)于龍須菜981。

快速光響應(yīng)曲線RLC提供了關(guān)于藻類(lèi)電子傳遞速率的信息, 同時(shí)反映光合結(jié)構(gòu)對(duì)瞬時(shí)及長(zhǎng)期光照的響應(yīng), 已被用于海藻一系列生理生態(tài)研究[29]。對(duì)比分析龍須菜981和龍須菜綠色突變型的快速光響應(yīng)曲線, 擬合分析后發(fā)現(xiàn)龍須菜綠色突變型有較高的值,反映藻體光化學(xué)反應(yīng)的啟動(dòng)速率, 因此龍須菜綠色突變型光能利用效率要高于龍須菜981。最大相對(duì)電子傳遞速率ETRmax反映了藻類(lèi)吸收光能中用于電子鏈傳遞的份額, 代表了光合速率的最大潛力, 決定了光合作用的能力[30]。相比于龍須菜981, 龍須菜綠色突變型中呈現(xiàn)較高的ETRmax值, 表明其潛在的最大光合作用能力大于龍須菜981。k反映了藻類(lèi)光合作用對(duì)強(qiáng)光的耐受能力, 龍須菜綠色突變型k高于龍須菜981, 表明其對(duì)強(qiáng)光的耐受能力高于龍須菜981。

綜上來(lái)看, 相比較龍須菜981, 龍須菜綠色突變型龍須菜對(duì)強(qiáng)光耐受能力較強(qiáng), 光合性能顯著上調(diào), 具體表現(xiàn)為: 捕光能力提升、PSII整體性能增強(qiáng)以及電子傳遞效率提高。龍須菜綠色突變型光合性能的增強(qiáng)可能有助于提升其固碳能力[31-32], 這有利于其通過(guò)光合作用進(jìn)行物質(zhì)積累增加產(chǎn)量。

3.2 低鹽脅迫后龍須菜981與龍須菜綠色突變型葉綠素?zé)晒鈱?duì)比分析

鹽度是決定海藻的生長(zhǎng)和繁殖的重要環(huán)境因子, 因潮汐、暴雨等自然過(guò)程帶來(lái)的海水鹽度波動(dòng)會(huì)干擾海藻的生理活性[33-34]。在低鹽條件下最大光合速率max顯著降低[35]。智利江蘺幼孢子體和配子體在低鹽條件生長(zhǎng)受抑制[36]。低鹽會(huì)抑制帚狀江蘺細(xì)胞分裂, 從而影響其在低鹽環(huán)境中的生長(zhǎng)[15]。低鹽脅迫影響縊江蘺光合速率和蛋白質(zhì)合成效率, 從而抑制其生長(zhǎng)過(guò)程中色素、藻膽蛋白以及可溶性蛋白的積累, 同時(shí)活性氧積累, 致使細(xì)胞膜發(fā)生脂質(zhì)過(guò)氧化, 導(dǎo)致細(xì)胞膜流動(dòng)性下降[37]。Kumar等[38]發(fā)現(xiàn)極端低鹽處理后活性氧的形成超過(guò)了臨界限度, 并伴隨著抗氧化酶活性下降, 對(duì)其造成嚴(yán)重威脅。

先前有報(bào)道稱(chēng), 低鹽脅迫下龍須菜生長(zhǎng)速率受顯著抑制[18]?；诳焖俟忭憫?yīng)曲線的擬合分析發(fā)現(xiàn), 低鹽28條件處理后龍須菜981的ETRmax顯著下調(diào), 并且隨著鹽度降低至22,ETRmax下調(diào)幅度增大, 表明低鹽處理對(duì)龍須菜981的光能轉(zhuǎn)化和電子傳遞產(chǎn)生了負(fù)面影響[39-40]。Li等[41]發(fā)現(xiàn)低鹽脅迫后紅藻光能捕獲及利用受抑制與負(fù)責(zé)光能轉(zhuǎn)化傳遞至光系統(tǒng)反應(yīng)中心的藻膽蛋白、類(lèi)胡蘿卜素和葉綠素等光合色素含量降低有關(guān)。然而, 龍須菜綠色突變型在鹽度22和28低鹽處理后ETRmax變化不顯著, 表明其光能轉(zhuǎn)化和電子傳遞能力受低鹽干擾較少, 暗示其具有較高的低鹽耐受性。

作為PSII在脅迫下效率狀態(tài)的指示性參數(shù),V/m代表PSII最大光化學(xué)效率, 反映所有PSII反應(yīng)中心處于完全開(kāi)放狀態(tài)的量子產(chǎn)量, 廣泛用于評(píng)價(jià)環(huán)境對(duì)海藻光合結(jié)構(gòu)的影響[42-44], 可有效評(píng)估光系統(tǒng)反應(yīng)中心的狀態(tài)。低鹽22處理后, 龍須菜981的V/m的下降程度加劇, 幅度高于龍須菜綠色突變型, 說(shuō)明鹽度22降低了PSII原初光能轉(zhuǎn)換效率, 使龍須菜981的PSII潛在活性中心受損, 導(dǎo)致最大光量子產(chǎn)量下降。同時(shí), 龍須菜981的EO下降明顯, 表明鹽度22抑制了龍須菜981光合作用電子傳遞量子產(chǎn)額, 影響了PSII受體側(cè)QA、QB和PQ等位點(diǎn)的電子傳遞, 這與先前的研究相一致[45-46]。

綜上來(lái)看, 鹽度28對(duì)龍須菜981光能轉(zhuǎn)化和電子傳遞產(chǎn)生了負(fù)面影響, 對(duì)龍須菜綠色突變型光合性能影響微弱。鹽度22抑制了龍須菜981對(duì)光能捕獲及利用, 其PSII反應(yīng)中心顯著受抑制, PSII受體側(cè)光合電子傳遞受阻, 從而嚴(yán)重降低了龍須菜981的光合能力。相對(duì)于龍須菜981, 鹽度22對(duì)龍須菜綠色突變型光能捕獲及利用、PSII反應(yīng)中心和電子傳遞的抑制程度較輕, 表明龍須菜綠色突變型對(duì)低鹽耐受性較高。

4 結(jié)論

本研究結(jié)果表明低鹽脅迫能影響龍須菜的光合活性。相對(duì)龍須菜981, 龍須菜綠色突變型的光合性能提升, 其光合性能對(duì)低鹽脅迫的耐受性要高于龍須菜981。因此, 龍須菜綠色突變型可作為龍須菜后續(xù)種質(zhì)改良的理想資源。

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Effects of low salinity stress on chlorophyll fluorescence characteristics in twostrains

LI Xiao-mei1, 2, 3, YANG Xiao-qi1, 2, DUAN De-lin1, 2

(1. CAS and Shandong Province Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Center for Ocean Mega-Science, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China; 2. Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Pilot National Laboratory for Marine Science and Technology (Qingdao), Qingdao 266237, China; 3. University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China)

Chlorophyll fluorescence was used to compare the differences in photosynthetic physiological characteristics between twostrains, such as strain 981 and its green mutant, under low salinity stress (28 and 22). The results showed that under normal conditions, the values of light energy use efficiency (), maximum relative electron transfer rate (ETRmax), half-saturation light intensity (k), and the performance index (Iabs) were higher in the mutant than those in strain 981, indicating the higher photosynthetic performance of the mutant strain. After exposure to salinity stress of 28 for three days, the photosynthetic performance of strain 981 decreased significantly, as evidenced by the 20.4% decrease inETRmax, while no significant change was observed in the mutant. When the twostrains were exposed to a salinity of 22 for three days, the values of maximum quantum yield for primary photochemistry (V/m) decreased by 16.0% and 11.9% in strain 981 and the mutant, respectively. The quantum yield for electron transport (EO) value decreased by 20.3% in strain 981, whereas no significant change was detected in the mutant. The decreases inandETRmaxin the mutant at a salinity of 22 were lower than those of strain 981, suggesting that the low salinity tolerance of the mutant strain was higher than that of strain 981. In conclusion, our results demonstrate that the green mutant is an ideal resource for improving thegermplasm.

; low salinity stress; chlorophyll fluorescence

Mar. 21, 2022

Q945.11; Q946

A

1000-3096(2022)12-0128-10

10.11759/hykx20220321002

2022-03-21;

2022-04-17

山東省自然科學(xué)基金(ZR2019BC024)

[Shandong Provincial Natural Science Foundation. No. ZR2019BC024]

李曉梅(1996—), 女, 山東青島人, 碩士研究生, 從事海藻生理研究, E-mail: 17854201364@139.com; 段德麟(1963—),通信作者, 男, 博士, 研究員, 主要從事海藻遺傳與發(fā)育研究, E-mail: dlduan@qdio.ac.cn

(本文編輯: 趙衛(wèi)紅)