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      低鹽泡菜中耐酸性乳酸菌的篩選、鑒定及特性研究

      2022-02-13 11:51:04孫熙浛崔承弼齊仕博
      食品與機械 2022年1期
      關(guān)鍵詞:耐酸性胃液泡菜

      孫熙浛 崔承弼, 齊仕博 齊 欣

      (1. 延邊大學農(nóng)學院,吉林 延吉 133002;2. 延邊大學藥學院,吉林 延吉 133002)

      泡菜又名發(fā)酵蔬菜、腌漬菜,是將新鮮蔬菜經(jīng)低濃度鹽水或少量鹽腌漬而成,其優(yōu)勢益生菌群主要以乳酸菌為主[1-2]。高鹽飲食是導致死亡的危險元素[3],因此,減少鹽分攝入是維護身體預防慢性病的重要手段。

      乳酸菌(Lactic acid bacteria,LAB)是一類能利用可發(fā)酵碳水化合物產(chǎn)生大量乳酸的細菌的統(tǒng)稱[4]。泡菜發(fā)酵期間,微生物菌群不斷更替,乳酸菌會伴隨原輔料、鹽濃度和發(fā)酵條件等因素的變化而不同。只有耐受低pH、酸性強的環(huán)境且數(shù)量多、活力強的乳酸菌才能在腸道中發(fā)揮生物功效,進而在人體內(nèi)發(fā)揮益生作用[5]。趙山山等[6]從貴州遵義市自制泡菜中篩選得到11株產(chǎn)酸量較高、耐酸性能優(yōu)良的乳酸菌,具有潛在的益生特性。馮金曉等[7]從6個泡菜樣品中,篩選得到2株耐酸性較強的乳酸菌。此外,乳酸菌還能夠保護腸道健康,提高絨毛密度[8]。

      研究擬選取四川、河北和東北地區(qū)的低鹽泡菜,篩選出耐酸性優(yōu)良的菌株,進行形態(tài)學、生理生化鑒定及16S rDNA 分子種屬鑒定并將其命名,測定菌株的生長曲線、耐酸產(chǎn)酸能力、耐受胃腸液能力、耐膽鹽能力、疏水及自凝集能力,通過綜合比對,篩選出具有益生特性的耐酸性乳酸菌菌株,為益生菌制劑的研發(fā)提供依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與儀器

      1.1.1 材料與試劑

      14份泡菜樣品:分別為蘿卜泡菜、洋姜泡菜、白菜泡菜、紅椒泡菜、東北酸菜,來自于四川、河北和東北地區(qū),市售;

      MRS瓊脂培養(yǎng)基、MRS肉湯培養(yǎng)基:青島高科園海博生物技術(shù)有限公司;

      胃蛋白酶:北京奧博星生物技術(shù)有限責任公司;

      胰蛋白酶:MYM Biological Technology Company, USA;

      牛膽鹽:廣東環(huán)凱威微生物科技有限公司;

      碳酸鈣、丙三醇、氯化鈉:分析純,天津科密歐化學試劑有限公司;

      革蘭氏試劑盒:青島青藥生物工程有限公司。

      1.1.2 儀器與設(shè)備

      臺式離心機:TGL-16M型,湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司;

      分析天平:PWC124型,上海民橋精密科學儀器有限公司;

      立式壓力蒸汽滅菌:BXM-30R型,重慶雅馬拓科技有限公司;

      雷磁pH計: PHS-25型,上海儀電科學儀器股份有限公司;

      電熱恒溫培養(yǎng)箱: YM-666型,上海新苗醫(yī)療設(shè)備有限公司;

      多功能熒光酶標儀:SP-Max 3500FL型,上海閃譜生物科技有限公司;

      顯微鏡:GX53型,德國Leica公司。

      1.2 方法

      1.2.1 泡菜鹽度及pH值的測定

      (1) 鹽度:參照彭易濤[9]的方法。

      (2) pH值:按:GB 5009.237—2016執(zhí)行。

      1.2.2 菌株的分離與純化 選取含鹽量≤6%的泡菜,用生理鹽水按倍比稀釋法,將菌液涂布至2% CaCO3-MRS瓊脂平板上,37 ℃厭氧培養(yǎng)48 h,根據(jù)呈現(xiàn)的形態(tài)特征挑選菌落,反復進行平板劃線分離與純化,直至出現(xiàn)純菌落。

      1.2.3 耐酸性菌株的篩選與初步鑒定 在pH 4.0的MRS液體培養(yǎng)基中接種2%的供試菌懸液,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,選取產(chǎn)生菌體沉淀生長狀況良好的菌株放入pH 3.0,2.0的液體培養(yǎng)基中進行重復篩選。將生長較為旺盛的菌株通過梯度稀釋后涂布于MRS瓊脂培養(yǎng)基上,37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,觀察菌落形狀、大小、顏色等特征并進行革蘭氏染色和過氧化氫酶試驗。

      1.2.4 16S rDNA分子鑒定 將分離純化的菌株送檢至生工生物工程(上海)股份有限公司,采用Ezup柱式細菌基因組DNA抽提試劑盒提取鑒定菌株基因組DNA,得到16S rDNA基因組片段序列后,進行BLAST序列比對。將獲得的基因組DNA進行核酸電泳驗證,加入通用引物進行PCR擴增,正向引物為27f:5'-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3';反向引物為1492R:5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'。PCR擴增條件:94 ℃預變性4 min;94 ℃變性45 s,55 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,共30個循環(huán);72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。將PCR擴增產(chǎn)物測序、雙向拼接后,用BLAST模塊在NCBI上對比同源性,使用Megalign程序繪制系統(tǒng)發(fā)育樹并進行分析。

      1.2.5 耐酸性菌株的生物學性質(zhì)測定

      (1) 生長曲線:在MRS液體培養(yǎng)基中按2%接種待測菌株,37 ℃靜置培養(yǎng),隔2 h取樣,共培養(yǎng)24 h,用空白培養(yǎng)基作為對照組,測定OD600 nm值,繪制5株菌株的生長曲線。

      (2) 酸耐受能力:在10 mL pH值分別為4.0,3.0,2.0的MRS肉湯培養(yǎng)基中,以2%接種量接入待測菌株,37 ℃ 恒溫培養(yǎng),測定0,24 h的OD600 nm值,用空白培養(yǎng)基作對照,按式(1)計算相對生長率。

      (1)

      式中:

      R——相對生長率,%;

      a——培養(yǎng)24 h后菌株在pH 6.3培養(yǎng)基中的OD600 nm值;

      b——培養(yǎng)0 h后菌株在pH 6.3培養(yǎng)基中的OD600 nm值;

      c——培養(yǎng)24 h后菌株在不同pH培養(yǎng)基中的OD600 nm值;

      d——培養(yǎng)0 h后菌株在不同pH培養(yǎng)基中的OD600 nm值。

      (3) 產(chǎn)酸活力:將菌株以2%的接種量接至MRS液體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng),向10 mL菌液中滴加酚酞指示劑,以0.1 mol/L的NaOH溶液進行滴定,直至出現(xiàn)微紅色,靜止30 s,觀察有無褪色現(xiàn)象,記錄消耗NaOH的體積[10]。產(chǎn)酸活力以每1×107個細胞,發(fā)酵1 mL MRS肉湯培養(yǎng)基得到1 μg乳酸為1個活力單位(U)。

      1.2.6 耐酸性菌株的體外益生特性測定

      (1) 模擬胃液耐受能力:取待測菌液,4 ℃、7 000 r/min離心8 min,用1×PBS緩沖液洗滌后懸浮菌體。取供試菌懸液各1 mL分別接種于9 mL pH值分別為4.0,3.0,2.0的人工胃液中,37 ℃恒溫培養(yǎng)3 h,測其活菌數(shù),按式(2) 計算存活率[11]。

      (2)

      式中:

      S——菌株存活率,%;

      N0——菌株初始的活菌數(shù),CFU/mL;

      N1——菌株處理后的活菌數(shù),CFU/mL。

      (2) 模擬腸液耐受能力:取1 mL經(jīng)人工胃液消化3 h 的菌液,接種至9 mL pH值為8.0的人工模擬腸液中,恒溫水浴培養(yǎng)8 h,測其活菌數(shù),按式(2)計算存活率。

      (3) 模擬膽鹽耐受能力:取2%培養(yǎng)至對數(shù)生長中后期的菌液,接種至含0.3%膽鹽的MRS-THIO培養(yǎng)基中,120 r/min、37 ℃搖床培養(yǎng)0,2,4,6,8 h,設(shè)置未添加膽鹽的MRS-THIO培養(yǎng)基作為空白對照組,測定OD600 nm值,按式(3)計算菌株存活率[12]。

      (3)

      式中:

      S——菌株存活率,%;

      A0——不含膽鹽培養(yǎng)基的OD600 nm值;

      A1——含膽鹽培養(yǎng)基的OD600 nm值。

      (4) 疏水能力:取待測菌液,4 ℃、7 000 r/min離心8 min,收集菌泥,用1×PBS緩沖液洗滌,使菌體OD600 nm值為0.25±0.05,向試管中加入2 mL菌懸液、二甲苯并充分振蕩,渦旋振蕩2 min,于通風櫥靜置待其分層,分別測水相OD600 nm值,以不添加二甲苯的菌液作為空白對照組,按式(4)計算菌株的疏水率[13]。

      (4)

      式中:

      H——疏水率,%;

      A0——二甲苯混合前菌液的OD600 nm值;

      A——二甲苯混合后菌液的OD600 nm值。

      (5) 自凝集能力:取待測菌液,4 ℃、4 000 r/min離心8 min,收集菌泥,用1×PBS緩沖液洗滌,使其菌體OD600 nm值為0.25±0.05,37 ℃靜止后吸取上清液,設(shè)置1×PBS緩沖液作為空白對照組,測定時間分別為0,2,4,6,8,12,16,24 h,測定OD600 nm值,按式(5)計算菌株的自凝集率[13]。

      (5)

      式中:

      A——自凝集率,%;

      A0——0 h的OD600 nm值;

      At——t時刻的OD600 nm值。

      1.2.7 數(shù)據(jù)處理 所有試驗重復3次,以平均值±標準差表示,利用Origin 8.5軟件作圖,運用SPSS 22.0軟件進行單因素方差分析,P<0.05表示有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 理化指標檢測

      由表1可知,14份樣品的含鹽量為0.87%~9.48%,符合行業(yè)標準。陳功[14]研究表明,按鹽度不同可將泡菜分為超低鹽泡菜(食鹽量≤3%)、低鹽泡菜(食鹽量≤6%)和中鹽泡菜(食鹽量≤10%)。因此,A、D是中鹽泡菜,B是低鹽泡菜,其他均為超低鹽泡菜,是因為不同地區(qū)泡菜的原材料和制作方式不同。泡菜的pH值為2.80~5.31,其鹽度和pH值無相關(guān)性。

      表1 泡菜樣品的理化指標

      2.2 耐酸性菌株的篩選

      由表2可知,從含鹽量≤6%的12份泡菜樣品中共分離得到126株產(chǎn)生溶鈣圈的菌株,將其接種至pH 4.0的培養(yǎng)基中進行初次耐酸性篩選,結(jié)果見表3,共有35株菌生長,其中18株生長情況良好;將18株優(yōu)良菌株于pH 3.0的培養(yǎng)基中進行第2次耐酸性篩選,仍有13株菌株生長性能良好;于pH 2.0的培養(yǎng)基中進行第3次篩選,只有5株菌株生長情況良好。因此,選擇J2、N6、F8、M1、M12 5株菌株進行后續(xù)試驗。

      表2 樣品中菌株的分離結(jié)果

      表3 耐酸性菌株的篩選?

      2.3 耐酸性乳酸菌的鑒定

      2.3.1 形態(tài)學鑒定及生理生化鑒定 由圖1可知,菌株J2為圓形的白色不透明菌落,菌落光滑濕潤、邊緣整齊;菌株N6為乳白色的光滑菌落,中央凸起、邊緣整齊;菌株F8為圓形的乳白色菌落,表面光滑、中央凸起;菌株M1為圓形的乳白色黏稠菌落,表面濕潤;菌株M12為白色不透明菌落,表面呈黏稠光滑的圓形。5株菌株的菌落形態(tài)相似,具有乳酸菌的典型特征。

      圖1 菌落形態(tài)對比圖

      由圖2可知,菌株J2菌體細胞呈卵圓形或球形,成對、單個或鏈狀排列;菌株N6菌體細胞呈桿狀排列;菌株F8為短桿菌,呈單個或兩個生長,無芽孢產(chǎn)生;菌株M1為短桿菌,短鏈或呈鏈排列;菌株M12為不規(guī)則短棒狀細胞,呈短鏈狀或成對存在。5株菌株的革蘭氏染色均為藍紫色,屬于革蘭氏陽性菌。經(jīng)過氧化氫酶接觸后,5株菌株均不產(chǎn)生氣泡,為過氧化氫酶陰性菌。

      圖2 顯微鏡下的細胞形態(tài)對比圖

      2.3.2 16S rDNA序列同源性對比 由圖3可知,擴增產(chǎn)物條帶序列大小為1 483~1 507 bp,條帶清晰可見且無雜帶。由圖4可知,菌株J2和腸膜明串珠菌(Leuconostocmesenteroides)的同源性為100%,菌株N6和副干酪乳桿菌(Lactobacillusparacasei)的同源性為100%,菌株M1、M12和食竇魏斯氏菌(Weissellacibaria)的同源性為100%,菌株F8和類植物乳桿菌(Lactobacillusparaplantarum)的同源性為100%。

      圖3 瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物

      圖4 5株菌株的16S rDNA序列系統(tǒng)進化樹

      王璐等[15]從果蔬發(fā)酵樣品中篩選出2株耐酸性乳酸菌,分別為植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)S3-10和干酪乳桿菌(Lactobacilluscasei)R10;李欣等[16]從黑龍江大慶地區(qū)的自然發(fā)酵酸菜中篩選出6株耐酸性乳酸菌,包括3株彎曲乳桿菌(Lactobacilluscurvatus),2株清酒乳桿菌(Lactobacillussake),1株植物乳桿菌。這與試驗結(jié)果存在差異,可能由于不同地區(qū)的泡菜有不同的微生物菌群和生物學特性,泡菜的加工工藝及貯藏環(huán)境也會導致乳酸菌種類和數(shù)量不同,但試驗分離出了泡菜中較為少見的W.cibaria。

      2.4 耐酸性乳酸菌的生物學性質(zhì)

      2.4.1 生長曲線 由圖5可知,L.mesenteroidesJ2、L.paracaseiN6、L.paraplantarumF8、W.cibariaM1和W.cibariaM12均在6 h后進入對數(shù)期,16 h后進入穩(wěn)定期。楊英歌等[17]研究的乳酸菌4 h后進入對數(shù)期,14 h后進入穩(wěn)定期,而夏勒合特·巴克爾拜等[18]研究的植物乳桿菌進入對數(shù)期和穩(wěn)定期的時間分別為2,18 h。說明不同種類的乳酸菌進入對數(shù)期和穩(wěn)定期的時間不同。6 h時,L.paracaseiN6的生長速度最快,OD600 nm值為0.81;16 h時,W.cibariaM12的吸光度最高為2.41;24 h時,W.cibariaM12的吸光度最高為2.42。5株菌株生長曲線排序為W.cibariaM12>W.cibariaM1>L.paracaseiN6>L.paraplantarumF8>L.mesenteroidesJ2。

      圖5 菌株的生長曲線

      2.4.2 酸耐受能力和產(chǎn)酸能力 由圖6可知,L.paracaseiN6在pH為4.0,3.0,2.0時的相對生長率分別為84.23%,58.95%,20.72%,均顯著高于其他菌株(P<0.05),W.cibariaM1和W.cibariaM12的次之。5株菌株的相對生長率排序為L.paracaseiN6>W.cibariaM1>W.cibariaM12>L.paraplantarumF8>L.mesenteroidesJ2。菌株之間的酸耐受性差異明顯,且同一菌種的不同菌株之間的酸耐受性也存在差異。

      由圖6可知,L.paracaseiN6的產(chǎn)酸活力為(5.05±0.09) U,高于其他菌株;W.cibariaM12的產(chǎn)酸活力為(5.03±0.01) U,顯著高于W.cibariaM1、L.paraplantarumF8和L.mesenteroidesJ2的(P<0.05)。羅強等[19-20]研究表明,菌株耐酸產(chǎn)酸能力的相關(guān)性有待進一步研究。樣品發(fā)酵過程中產(chǎn)酸量與乳酸菌發(fā)酵過程中產(chǎn)乳酸的量呈正相關(guān),對雜菌具有較好的抑制作用。

      字母不同表示差異顯著( P<0.05)

      2.5 耐酸性乳酸菌的體外益生特性

      2.5.1 體外模擬胃液、腸液耐受能力 由圖7(a)可知,當pH為4.0時,5株菌存活率均在81%以上;當pH為3.0時,L.paracaseiN6的存活率為90.49%,顯著高于其他菌株(P<0.05),W.cibariaM1和W.cibariaM12的存活率分別為72.80%,70.25%,均顯著高于L.paraplantarumF8和L.mesenteroidesJ2(P<0.05);當pH為2.0時,L.paracaseiN6仍能達到48.65%的存活率,且存活率顯著高于其他菌株(P<0.05),L.paraplantarumF8和L.mesenteroidesJ2均不耐受pH 2.0的強酸環(huán)境。熊強等[21]從自制泡菜中分離出的6株植物乳桿菌中,其中有4株在人工胃液中的存活率在80%以上。趙芳等[22]研究顯示,菌株在pH 2.0的人工胃液中處理2 h后幾乎都無法存活。

      字母不同表示差異顯著( P<0.05)

      由圖7(b)可知,經(jīng)pH 4.0胃液和pH 8.0腸液消化后菌株的存活狀況良好,存活率>62.44%;經(jīng)pH 3.0胃液和pH 8.0腸液消化后,L.paracaseiN6存活率為79.26%,顯著高于其他菌株(P<0.05),W.cibariaM1和W.cibariaM12的存活率分別為50.65%,53.37%,差距相對較小,說明同種乳酸菌的益生特性差異不大;經(jīng)pH 2.0胃液和pH 8.0腸液消化后,L.paraplantarumF8和L.mesenteroidesJ2的存活率幾乎為零。綜上,L.paracaseiN6、W.cibariaM1和W.cibariaM12對人工胃液、腸液環(huán)境均具有較強的耐受性。

      2.5.2 體外模擬膽鹽耐受能力 由圖8可知,當培養(yǎng)時間為2 h時,菌株存活率均在80%以上,隨著培養(yǎng)時間的增加,菌株存活率呈下降趨勢;當培養(yǎng)時間為4 h時,L.paracaseiN6存活率為63.64%,顯著高于其他菌株(P<0.05),與李洋等[12,23]的結(jié)果一致;當培養(yǎng)時間為8 h時,L.paracaseiN6的存活能力最強,存活率為41.16%,顯著高于其他菌株(P<0.05),W.cibariaM12和W.cibariaM1的次之。

      字母不同表示差異顯著(P<0.05)

      2.5.3 疏水能力 由圖9可知,L.paracaseiN6、W.cibariaM12、W.cibariaM1和L.paraplantarumF8均屬于高度疏水菌株,疏水率均在60%以上,其中L.paracaseiN6的疏水率達78.72%,顯著高于其他菌株(P<0.05);L.mesenteroidesJ2為中度疏水菌株,疏水率為42.81%。5株菌株的表面疏水能力為L.paracaseiN6>W.cibariaM12>W.cibariaM1>L.paraplantarumF8>L.mesenteroidesJ2。

      字母不同差異顯著( P<0.05)

      2.5.4 自凝集能力 由圖10可知,5株菌株的自聚集率均呈上升趨勢,與Abushelaibi等[24-25]的研究結(jié)果相似。培養(yǎng)24 h時,L.paracaseiN6的自凝集能力最高,達76.51%,與Mih等[26]的結(jié)果一致;W.cibariaM12、W.cibariaM1、L.paraplantarumF8和L.mesenteroidesJ2的自凝集率分別為65.00%,62.54%,49.95%,36.31%。

      圖10 乳酸菌菌株細胞的表面自凝集率

      3 結(jié)論

      從14份泡菜樣品中篩選出含鹽量≤6%的12份樣品,共分離純化出126株產(chǎn)生溶鈣圈的菌株,并篩選出5株耐酸性菌株,經(jīng)16S rDNA分子鑒定為腸膜明串珠菌(Leuconostocmesenteroides)J2、副干酪乳桿菌(Lactobacillusparacasei)N6、類植物乳桿菌(Lactobacilluparaplantarum)F8、食竇魏斯氏菌(Weissellacibaria)M1和食竇魏斯氏菌(Weissellacibaria)M12。其中,L.paracaseiN6、W.cibariaM1和W.cibariaM12是具有益生特性的耐酸性乳酸菌菌株,可用于初步篩選,但還需進一步的穩(wěn)定性試驗和遺傳穩(wěn)定性研究,以鑒定適合人類或動物使用的潛在益生菌。

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