南京市農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量檢測(cè)院 陳子瀟 張聰 錢(qián)麗娟
蔬菜中的農(nóng)藥殘留一直是農(nóng)業(yè)質(zhì)量安全問(wèn)題中極為重要的問(wèn)題,目前主要的前處理方法有液液萃取法、固相萃取法、凝膠滲透色譜法、基質(zhì)分散固相萃取法、QuEChERS技術(shù)等[1]。QuECHERS法在2003年開(kāi)發(fā)后應(yīng)其操作簡(jiǎn)便、分析農(nóng)藥范圍廣、精確度和準(zhǔn)確度高、回收率高、污染小等原因受到廣大關(guān)注[2]。以國(guó)標(biāo)GB 23200.113-2018為例,標(biāo)準(zhǔn)中QuECHERS法的前處理需進(jìn)行凈化以去除雜質(zhì)對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響,但各類(lèi)蔬菜及各種農(nóng)藥均有不同理化性質(zhì),應(yīng)對(duì)各檢測(cè)參數(shù)的前處理方法進(jìn)行進(jìn)一步研究,以通過(guò)不同前處理方法來(lái)獲得更接近真實(shí)值的檢測(cè)結(jié)果[3]。
本文選取10種蔬菜,采用高效氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜對(duì)10種蔬菜中23種農(nóng)藥進(jìn)行定性定量檢測(cè),討論QuECHERS法前處理是否凈化對(duì)農(nóng)藥殘留回收率的影響,以獲得更佳的回收率及準(zhǔn)確性。
1.1.1 儀器
安捷倫超高效氣相色譜三重四極桿質(zhì)譜聯(lián)用儀(Agilent 7890B-7000D,安捷倫科技(中國(guó))有限公司);美國(guó)Talboys EOFO-945066數(shù)顯型多管式旋渦混合器(上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);IKA T25 basic ULTRA-TURRAX高速勻漿機(jī)(IKA集團(tuán));TG 1650-WS高速離心機(jī)(上海盧湘儀離心機(jī)儀器有限公司);PL-E(PL602E)電子天平(梅特勒-托利多儀器有限公司);移液器:1000μL(美國(guó)貝克曼公司)。
1.1.2 試劑
乙腈、丙酮均為HPLC級(jí)(美國(guó)TEDIA公司);氯化鈉為分析純(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);QuECHERS前處理包(貨號(hào)5982-5650購(gòu)自安捷倫科技有限公司);QuECHERS凈化包(貨號(hào)5982-5256購(gòu)自安捷倫科技有限公司)。
農(nóng)藥分析標(biāo)準(zhǔn)品:甲胺磷、甲拌磷、α-六六六、γ-六六六、δ-六六六、五氯硝基苯、乙烯菌核利、甲基對(duì)硫磷、殺螟硫磷、三氯殺螨醇、毒死蜱、對(duì)硫磷、三唑酮、水胺硫磷、二甲戊靈、甲基異柳磷、丙溴磷、蟲(chóng)螨腈、聯(lián)苯菊酯、甲氰菊酯、氯菊酯、醚菊酯、苯醚甲環(huán)唑共計(jì)23種標(biāo)準(zhǔn)品均為1000mg/L,>1mL購(gòu)自農(nóng)業(yè)農(nóng)村部環(huán)境質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)測(cè)試中心。
1.2.1 儲(chǔ)備液配制
移液槍準(zhǔn)確吸取農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品0.800mL于25mL容量瓶中,丙酮定容至刻度線,配置成32mg/mL的農(nóng)藥單標(biāo),儲(chǔ)存于-20℃中保存。
1.2.2 基質(zhì)曲線的配置
選取干凈蔬菜作為空白基質(zhì),使用儲(chǔ)備液配置成不同濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)曲線,以剔除因蔬菜種類(lèi)不同而產(chǎn)生的基質(zhì)效應(yīng)的影響。
1.3.1 樣品采集
本文選用茼蒿、辣椒、韭菜、苦瓜、絲瓜、莧菜、菊花葉、木耳菜、蕹菜、葉用萵苣等10種蔬菜,經(jīng)組織攪碎機(jī)粉碎,按照GB 23200.113-2018中前處理方法提取后使用7890B-7000D氣質(zhì)聯(lián)用儀進(jìn)行分析,確保不含有本次實(shí)驗(yàn)涉及的目標(biāo)農(nóng)藥。
1.3.2 樣品農(nóng)藥添加
準(zhǔn)確稱(chēng)取蔬菜樣品10.0g(精確至0.01g)于50mL離心管中,用移液槍吸取1.1.1中制備的農(nóng)藥單標(biāo)30.0μL渦旋混勻1min,得到含加標(biāo)濃度為0.096mg/kg農(nóng)藥的待前處理蔬菜。
1.3.3 未凈化待測(cè)液的制備
將1.3.2中待處理離心管中加入10.0mL乙腈、2.0g氯化鈉,用高速勻漿機(jī)在15000r/min勻漿1min,將離心管置于高速離心機(jī)中以7500r/min離心3min,取1mL上層提取液經(jīng)0.22μm有機(jī)相濾膜過(guò)濾,裝入進(jìn)樣瓶得到未凈化待測(cè)液。
1.3.4 QuEChERS法凈化待測(cè)液的制備
將1.3.2中獲得的待處理離心管中加入10.0mL乙腈,用高速勻漿機(jī)在15000r/min勻漿1min,加入QuECHERS前處理包,用旋渦混合器4000r/min渦旋5分鐘,將離心管置于高速離心機(jī)中以7500r/min離心3min,上層清液即為乙腈層提取液。取1乙腈層提取液6mL,加入到QuECHERS凈化包內(nèi)15mL離心管,管內(nèi)已預(yù)加885mg硫酸鎂、150mgPSA及15mgGCB,渦旋混勻1min,將離心管置高速離心機(jī)中以7500r/min離心3min,取1mL上清液經(jīng)0.22μm有機(jī)相濾膜過(guò)濾,裝入進(jìn)樣瓶得到凈化待測(cè)液。
1.4.1 氣相色譜條件
色譜柱:Agilent HP-5MS UI超高惰性氣相色譜柱(30m×0.250mm,0.25μm);進(jìn)樣口溫度280℃;檢測(cè)器溫度280℃;進(jìn)樣量1μL;載氣為高純氦氣(濃度>99.999%);柱箱升溫速率見(jiàn)表1。
表1 載氣流速及梯度
后運(yùn)行300℃,時(shí)間5min用于清除色譜柱內(nèi)殘余雜質(zhì)。
1.4.2 質(zhì)譜條件
離子源為電子轟擊源(EI);電子能量70eV;離子源溫度280℃;MI1四極桿溫度150℃;CID流量(N2)1.5mL/min;淬滅流量(He)2.25mL/min。
從圖1中可以看出,除甲胺磷外,大部分農(nóng)藥回收率落于80%~120%之間。
圖1 GC-MS檢測(cè)未凈化的23種農(nóng)藥在10種蔬菜中的回收率
從圖1中可知甲胺磷在未凈化時(shí)普遍回收率較低,10種蔬菜的平均回收率為53.4%~77.3%,甲胺磷作為一種有機(jī)磷類(lèi)農(nóng)藥由于其極性較強(qiáng),在水中的溶解度較高,前處理中雖然加入了乙腈用于提取蔬菜中的甲胺磷,硫酸鎂及氯化鈉用于脫去蔬菜中的水分,但部分甲胺磷未能萃取到乙腈中,使得甲胺磷的回收率較低。另外進(jìn)樣口襯管和石英棉對(duì)有機(jī)磷農(nóng)藥也會(huì)有一定的吸附作用,最終導(dǎo)致了甲胺磷的回收率低。對(duì)比圖2經(jīng)過(guò)QuECHERS凈化包凈化后,其回收率有明顯提高,平均回收率提高至72.9%~92.8%,平均回收率提高了38.2%,其中韭菜提高率最高為64.7%,而瓜類(lèi)及茄果類(lèi)提高的較少,苦瓜為12.5%,絲瓜為30.9%,辣椒為15.3%,其他各葉菜類(lèi)也有較明顯提升,平均提升率為27.8%~54.7%。另外從圖中可以看出,未凈化時(shí)10種蔬菜中甲胺磷的回收率波動(dòng)范圍較大,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為10.6%,經(jīng)過(guò)凈化后相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差降低至4.9%,由此可以看出當(dāng)檢測(cè)單一甲胺磷組分時(shí),應(yīng)按照國(guó)標(biāo)給出的前處理方法進(jìn)行凈化,以得到更加準(zhǔn)確的定量值。
圖2 GC-MS檢測(cè)QuECHERS凈化后23種農(nóng)藥在10種蔬菜中的回收率
α-六六六、γ-六六六、δ-六六六這三種六六六中,γ-六六六波動(dòng)范圍最大,凈化后苦瓜回收率達(dá)117.4%,而最低的莧菜僅56.7%,各蔬菜間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為18.8%。與凈化后苦瓜的回收率相比,不加以?xún)艋苯由蠙C(jī)檢測(cè),苦瓜回收率為87.7%。α-六六六是最為穩(wěn)定,未凈化時(shí)平均回收率為88.5%~109.7%,經(jīng)過(guò)凈化后回收率降低至75.7%~105.0%,平均降低10.0%。
從未凈化的圖中看出,α-六六六、三氯殺螨醇、毒死蜱、聯(lián)苯菊酯、氯菊酯、醚菊酯回收率波動(dòng)范圍較小且最接近100%,平均回收率分別為88.5%~109.7%、88.4%~108.8%、89.9%~112.6%、87.7%~103.5%、83.9%~109.7%、88.6%~105.2%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為7.0%、6.5%、6.5%、6.3%、7.2%、5.0%。經(jīng)過(guò)凈化后,平均回收率擴(kuò)大至75.7%~105.0%、75.3%~100.3%、71.9%~117.4%、66.9%~100.8%、70.4%~100.3%、67.8%~102.7%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為10.2%、8.2%、13.5%、13.5%、11.9%、13.5%。相較于凈化,菊酯類(lèi)等參數(shù)更應(yīng)直接前處理提取農(nóng)藥后直接上機(jī)檢測(cè)。
甲拌磷和二甲戊靈經(jīng)過(guò)凈化后回收率降低最大,未經(jīng)凈化時(shí)各蔬菜的平均回收率為73.8%~104.9%、83.1%~110.7%,但經(jīng)過(guò)凈化以后平均回收率降至60.7%~99.1%、62.2~97.5%,各蔬菜的平均回收率從88.9%、94.1%降至75.9%、76.9%,此參數(shù)應(yīng)直接提取后上機(jī)。
從兩張圖中可以看出,經(jīng)過(guò)凈化后不同蔬菜中的相同種類(lèi)農(nóng)藥分步得更為散亂,且平均回收率均偏低,近一半?yún)?shù)回收率低于90%,而未經(jīng)凈化直接上機(jī)得到的檢測(cè)結(jié)果更為集中且回收率更接近100%。由于前處理包中含有無(wú)水氯化鎂,加入后吸收水分用于配合氯化鈉提取農(nóng)藥,但吸水后放出大量熱導(dǎo)致試管內(nèi)溫度升高易使農(nóng)藥分解導(dǎo)致回收率降低。
從圖1中看出,瓜類(lèi)蔬菜農(nóng)藥回收率與其他相比偏高,剔除未凈化時(shí)各蔬菜均無(wú)法滿足檢測(cè)回收率的甲胺磷后,苦瓜和絲瓜中各參數(shù)的平均回收率分別為84.3%~130.0%、73.8%~125.6%,各檢測(cè)值平均后為111.0%和102.3%,瓜類(lèi)蔬菜由于其含水量較高且顏色較淺,可能對(duì)回收率有較大影響。經(jīng)過(guò)凈化后平均回收率降至60.7%~117.4%、65.7%~101.4%,更接近100%回收率。進(jìn)一步對(duì)比發(fā)現(xiàn),苦瓜和絲瓜中甲拌磷參數(shù)與其他蔬菜相比偏低,未凈化時(shí)甲拌磷分別為84.3%、73.8%,凈化后分別為60.7%、65.7%,因此檢測(cè)瓜類(lèi)蔬菜的甲拌磷時(shí)不應(yīng)凈化,挑選空白樣品做加標(biāo)質(zhì)控避免選擇瓜類(lèi)蔬菜防止回收率偏大。
從圖2中看出,經(jīng)過(guò)凈化后莧菜、蕹菜回收率下降較大,大部分參數(shù)為各蔬菜的最低值,各參數(shù)平均回收率為56.7%~85.1%、61.3%~90.8%。而未經(jīng)凈化直接檢測(cè)的平均回收率去除甲胺磷后分別為84.5%~106.0%、88.6%~114.9%,滿足國(guó)標(biāo)檢測(cè)要求。
本文討論了QuECHERS前處理中是否凈化對(duì)農(nóng)藥回收率的影響,其中甲胺磷未經(jīng)凈化直接檢測(cè)時(shí)回收率較低,但經(jīng)過(guò)凈化后回收率平均提升38.2%至72.9%~92.8%??喙稀⒔z瓜等瓜類(lèi)蔬菜由于含水量較大且色素淺,經(jīng)過(guò)凈化后回收率降至60.7%~117.4%、65.7%~101.4%,相比于未凈化時(shí)84.3%~130.0%、73.8%~125.6%的回收率,對(duì)單一農(nóng)殘組分檢測(cè)時(shí)應(yīng)考慮不同的前處理方式。莧菜、蕹菜等深色葉菜類(lèi)未凈化時(shí)回收率為84.5%~106.0%、88.6%~114.9%更接近100%。
與傳統(tǒng)的前處理提取方法相比,QuECHERS法操作簡(jiǎn)便、污染小、回收率高,但對(duì)單一農(nóng)藥進(jìn)行精確檢測(cè)時(shí)應(yīng)進(jìn)一步研究,根據(jù)蔬菜種類(lèi)及農(nóng)藥組分采取不同前處理方法,從而使檢出值更接近農(nóng)藥的真實(shí)值。