李俊杰, 趙 洋, 哈 洋, 蘇喆瑩, 王景然, 全雪麗, 吳松權*
(1.延邊大學 農(nóng)學院,吉林 延吉 133000;2.臺頭鎮(zhèn)人民政府,山東 壽光 262735)
黃芪,又稱黃耆、綿芪,是豆科黃芪屬植物,主要分布在我國內(nèi)蒙古、山西、甘肅、黑龍江、寧夏、吉林等北方地區(qū)[1],作為臨床常用中藥,藥用歷史久遠[2]。黃芪最早見于我國的《神農(nóng)本草經(jīng)》,李時珍在《本草綱目》中將其稱之為黃芪,味甘,氣微溫,主入歸肺、脾二經(jīng),具有補氣健脾、升陽舉陷、益衛(wèi)固表、利尿消腫、托毒生肌之功效[3-5]。《中華人民共和國藥典》中規(guī)定正品黃芪為蒙古黃芪(Astragalusmembranaceus(Fisch.) Bunge. var.mongholicus(Bunge.) Hsiao)和膜莢黃芪(Astragalusmembranaceus(Fisch.) Bunge)的干燥根[6]。
CBF(C-repeatbindingfactor)是低溫響應基因,在植物響應低溫和調(diào)控途徑中起著十分重要的作用,同時在不同植物物種對脅迫的響應中也發(fā)揮著不同的作用,有部分學者發(fā)現(xiàn),CBF也能對其他非生物脅迫和激素作出反應,如高溫、干旱、鹽和脫落酸等[7-10]。已有研究發(fā)現(xiàn),CBF基因在不同植物抗凍性調(diào)控中發(fā)揮關鍵作用[11]。當植物感受到低溫信號時,CBF會快速進行響應,并結合到冷應答基因的啟動子區(qū)域激活它們的轉錄表達[12-13]。該試驗旨在了解膜莢黃芪中CBF基因的結構及其在低溫與干旱脅迫條件下的表達量變化,為進一步研究CBF基因功能奠定基礎。
1.1.1 植物材料
膜莢黃芪種植于延邊大學農(nóng)學院試驗基地。不定根誘導采用李子羊等[14]的方法。待不定根長出后,利用B5+IBA(2 mg/L)培養(yǎng)基進行繼代增殖培養(yǎng),之后分別在4 ℃低溫脅迫和15% PEG干旱脅迫條件下處理0、2、4 h并迅速置于液氮中冷凍,將處理后的樣品保存于-80 ℃冰箱備用,重復3次。
1.1.2 試劑
SMARTerTMRACE cDNA5′-RACE和3′-RACE試劑盒,購自Clontech公司;Trizol試劑,購自Invitrogen公司;ReverTra Ace qPCR RT Kit反轉錄試劑盒,購自 Toyobo公司;SYBRPremix Ex TaqTM(TliRNaseH Plus)熒光定量試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒和PMD19-T載體,購自大連Takara公司。
1.1.3 主要儀器
DW-86L828超低溫保存冰箱(Haier公司)、MJ-78A高壓滅菌鍋(上海施都凱公司)、T100TMThermal Cycler PCR儀(美國Bio-Rad公司)、干燥箱(上海施都凱公司)、高速冷凍離心機(Hitachi)、超微量紫外分光光度計(Nanodrop 2000 C)、凝膠成像系統(tǒng)(美國UVP公司)。
1.2.1 總RNA的提取與cDNA的合成
采用Trizol一步法提取總 RNA,使用超微量分光光度計測定其濃度及吸光值;依據(jù)測定值計算并稀釋RNA的濃度到500 ng/μL,并進行瓊脂糖凝膠電泳檢驗。將所提取的RNA放置于-80 ℃超低溫冰箱中保存。以提取的膜莢黃芪的RNA作為反轉錄的模板,參照反轉錄試劑盒的步驟合成cDNA的第1條鏈。
1.2.2 設計CBF基因的簡并引物
用NCBI網(wǎng)站(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中的GeneBank數(shù)據(jù)庫,搜索并下載已經(jīng)收錄在內(nèi)的擬南芥、大豆等植物的膜莢黃芪CBF基因(AmCBF)的同源序列。利用多序列比對軟件MEGA7進行比對,分析并確定CBF基因的保守區(qū)域。利用引物設計軟件Primer Premier5.1設計CBF基因的簡并引物,分別命名為AmCBF-ju1、AmCBF-jd1,引物的序列如表1所示。
1.2.3CBF基因保守區(qū)的克隆
以合成的cDNA第1條鏈為模板,進行PCR擴增,反應體系為20 μL:10×PCR Buffer2.0 μL,25 mmol/L MgCl22.0 μL,2 mmol/L dNTP 2.0 μL,cDNA模板1 μmol/L,2.0 μL,上游引物AmCBF ju1 2.0 μL,下游引物AmCBF jd1 2.0 μL,5 U ExTaq酶0.2 μL,剩余用ddH2O補足。PCR產(chǎn)物在1.2%瓊脂糖凝膠上電泳,參照回收試劑盒說明書對DNA凝膠進行回收,參照T載體說明書連入 PMD-19T載體。將重組質粒轉化至大腸桿菌感受態(tài)JM109,通過對藍色和白色的菌落進行篩選,白色菌落即是成功的轉化子。將提取的重組質粒DNA 原液稀釋50倍后,使用M13引物(表 1)進行PCR檢測。對檢測為陽性的克隆菌株進行測序,測序由上海英駿生物技術有限公司完成。
1.2.4 5′-RACE和3′-RACE擴增
參考SMARTerTMRACE cDNA 5′-RACE和3′-RACE試劑盒的說明書進行,根據(jù)目的基因保守序列的測序結果設計5′-RACE和3′-RACE特異引物,設計的引物序列如表1所示。PCR得到的產(chǎn)物按照步驟1.2.3進行回收、連接、轉化并測序。
1.2.5CBF全長CDS的克隆
利用DNAstar軟件對克隆所得到的基因保守序列以及5′-RACE和3′-RACE產(chǎn)物序列進行拼接分析,從而得到2個基因的全長序列。根據(jù)拼接的基因全長序列設計全長特異引物(表1),驗證基因的全長編碼信息。
表1 引物序列
1.2.6 生物信息學分析
檢索同源性氨基酸序列采用在線工具BLAST;分析基因的開放閱讀框(ORF)采用Lasergene軟件包中的EditSeq;預測編碼蛋白的分子量和等電點等理化性質采用ExPASyProtParam服務器;利用ExPASyProtScale服務器分析蛋白疏水性;預測蛋白跨膜結構用在線工具TMHMM-2.0;預測蛋白質二級結構采用 SOPMA服務器,預測亞細胞定位情況采用在線工具TargetP1.1和WoLF PSORT;預測信號肽采用在線工具SignalP 5.0;利用MEGA7軟件進行氨基酸序列比對分析以及構建CBF氨基酸序列系統(tǒng)發(fā)育進化樹。
1.2.7 膜莢黃芪CBF熒光定量PCR分析
根據(jù)獲得的AmCBF的特異序列設計1對熒光定量PCR引物(表 1),所用內(nèi)參基因為黃芪18S基因(Genbank登陸號為 AF359594,表 1)。以標準的AmCBF和18S基因拷貝數(shù)的對數(shù)值為橫坐標,以測得的 CT 值為縱坐標,繪制各自的標準曲線。根據(jù)未知樣品的 CT 值,即可在各自標準曲線中得到樣品的拷貝數(shù),再求出相對于內(nèi)參基因18S的相對表達量。每組樣品進行 3 次重復檢測。
1.2.8 統(tǒng)計分析
AmCBF基因表達量數(shù)據(jù)的統(tǒng)計分析利用SPSS 19.0軟件進行,個體差異利用Duncan多范圍檢驗進行評估(P<0.05),用標準差來代表誤差。
使用表1中設計的簡并引物AmCBF-ju1和AmCBF-jd1進行PCR擴增試驗。得到的PCR產(chǎn)物經(jīng)過回收、連接、轉化和M13鑒定等操作,將最后得到的鑒定產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測,其過程中的相關圖片如圖1所示。PCR擴增后,膜莢黃芪基因CBF的片段長度約為240 bp。測序后,基因AmCBF的保守區(qū)域長度為230 bp,并將其命名為AmCBF-RT。
使用NCBI主頁的BLAST功能(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.)對克隆得到的AmCBF-RT基因保守區(qū)進行同源性檢測比較。其結果顯示,膜莢黃芪CBF與豆科植物苜蓿(AC166046.15)、木豆(XM020350729.1)CBF基因的相似度分別為83%和86%。因此,初步認定克隆到的AmCBF是膜莢黃芪CBF基因的1個片段。
反轉錄試劑盒合成的第1條鏈,用表1中設計的特異性引物進行5′-RACE和3′-RACE的 PCR擴增實驗。其過程中的PCR結果電泳圖以及鑒定圖如圖2所示。
測序回來的結果顯示,AmCBF基因5’序列的長度為572 bp,通過BLAST進行同源性檢測分析,結果顯示與豆科植物木豆(XM020350729.1)、赤豆(XM017585861.1)的序列相似性分別是87%和87%,因此,初步確定所得到的AmCBF基因5’是膜莢黃芪CBF基因的5’端;AmCBF基因3’序列的長度為425 p,通過BLAST進行同源性檢測分析,結果顯示與豆科植物苜蓿(XM003611110.2)、鷹嘴豆(XM004511547.2)的序列相似性分別是78%和78%,因此,初步確定所得到的AmCBF基因3’是膜莢黃芪CBF基因的3’端。
將5′-RACE和3′-RACE測序結果進行比對并拼接,從而得到理論上AmCBF基因的全長序列。分別設計基因的全長引物(表1)。以膜莢黃芪總RNA反轉錄得到的cDNA為模板,進行PCR擴增試驗。對PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。 PCR鑒定結果顯示與PCR擴增所得目的條帶長度一致(圖3)。故確定其為基因AmCBF的全長,并命名為AmCBF-cds。
對AmCBF基因的全長序列進行分析(圖4)。圖中方框表示基因編碼的起始密碼子和終止密碼子。AmCBF全長827 bp,其中,包括642 bp的開放閱讀框(ORF),54 bp的5’非翻譯區(qū)(5′-UTR),131 bp的3′非翻譯區(qū),其中包含25 bp的Poly尾;其A+T的含量為61.9%,G+C的含量為38.1%。
使用NCBI中的BLAST功能對AmCBF進行同源性檢測,結果顯示其與豆科植物狹葉羽扇豆(CP023126.1)的同源性為82%,并與其他豆科植物的CBF基因相似性也較高。初步證實該試驗所克隆的CBF基因是膜莢黃芪CBF基因的序列。
對AmCBF所編碼的蛋白質序列進行分析。結果顯示AmCBF蛋白編碼213個氨基酸,這與其它植物CBF蛋白編碼氨基酸結果相似[15-16]。分子式為C1040H1632N308O331S10,分子量為24 066.86 Da,其理論等電點為5.84。該蛋白質中酸性氨基酸有31個,堿性氨基酸有27個,說明該蛋白質呈酸性,而且其不穩(wěn)定系數(shù)為71.21,屬于不穩(wěn)定蛋白;親水指數(shù)為-0.758,表明該蛋白為親水性蛋白(圖 5),與山葡萄VaCBF3[17]生物信息學分析結果一致。亞細胞定位顯示,位于細胞核和細胞質的可能性較大,預測概率分別為56.5%和21.7%,并且不存在信號肽??缒そY構分析的預測結果顯示,AmCBF沒發(fā)現(xiàn)交匯區(qū)域,因此該基因所編碼的蛋白都是非跨膜蛋白。與RcCBF[18]跨膜結構分析結果一致,RcCBF蛋白也沒有跨膜結構,不屬于跨膜蛋白。
通過使用PRABI在線分析軟件對基因AmCBF預測編碼的蛋白質二級結構預測結果如圖6所示。AmCBF基因蛋白的二級結構包含29個α折疊,44個β折疊以及140個無規(guī)則延伸構成,分別占據(jù)13.62%、20.66%和65.73%。
為了深入研究AmCBF和其他物種CBF的進化關系,運用分析軟件MEGA7構建CBF基因與其他不同物種CBF基因的進化樹(圖7),AmCBF與豆科植物木豆(Cajanuscajan)、鷹嘴豆(Cicerarietinum)的CBF歸為Type Ⅱ,大豆(Glycinesoja)、毛豆(Glycinemax)、決明子(Sennatora)、黧豆(Mucunapruriens)的CBF歸為Type Ⅰ,榴蓮(Duriozibethinus)、蓖麻(Ricinuscommunis)、甜瓜(Cucumismelo)的CBF歸為Type Ⅲ,白梨(Pyrusxbretschneideri)、海棠(Malussieversii)、梅花(Prunusmume)、杏(Prunusarmeniaca)的CBF歸為Type Ⅳ。
進一步驗證AmCBF在低溫下的表達(圖8),在低溫和干旱脅迫條件處理下,AmCBF表達量趨勢相似,均為先上升后下降。且在脅迫處理2 h后,AmCBF表達量顯著上升,在處理時間達到4 h后,基因表達水平均呈下降趨勢,但其表達量仍與對照組有顯著性的差異。綜合分析表明,AmCBF在低溫和干旱的脅迫處理條件下都能被誘導表達,且低溫處理條件下表達量高于干旱處理,并且發(fā)現(xiàn)它們誘導表達的時間存在一定差異。
CBF在調(diào)節(jié)植物生長發(fā)育和外界環(huán)境響應方面發(fā)揮著重要作用[19],目前為止,學者們從擬南芥、番茄、大豆、葡萄等植物中克隆到了CBF基因并通過研究發(fā)現(xiàn)其有調(diào)節(jié)植物抗冷能力的作用[20-22]。在低溫下植物細胞內(nèi)的自由水減少,間接對植物造成干旱等逆境傷害。因此,抗冷和抵御干旱等逆境脅迫有密不可分的聯(lián)系,CBF家族的部分成員對干旱逆境誘導也有響應[23]。該研究采用同源克隆法和RACE技術在膜莢黃芪中克隆得到了CBF基因,并分別在低溫和干旱脅迫條件下處理0、2、4 h。熒光定量PCR分析結果表明,在2 h后表達量最高,4 h后表達量有所下降,且低溫脅迫時表達量高于干旱脅迫。已有研究發(fā)現(xiàn),低溫脅迫下,CBF基因都具有瞬時表達特性。CBF基因在低溫脅迫下短時間內(nèi)即被強烈誘導并表達,但隨著時間推移,誘導作用逐漸減弱[24]。如擬南芥CBF1、棉花GhDREB1基因的表達在2 h后達到表達高峰[25-26];黑麥草CBF的表達高峰為2~4 h[27]。這與該試驗結果一致,初步認定克隆得到的CBF基因是膜莢黃芪的基因序列。該研究中膜莢黃芪CBF基因的克隆和表達分析為CBF基因低溫調(diào)控途徑研究和抗寒分子機制研究奠定了基礎。