周芳偉,吳懷通,尹佟明
(教育部林木遺傳與生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇省林木遺傳與高效培育重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,南方現(xiàn)代林業(yè)協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇 南京 210037)
MYB (V-myb avian myeloblastosis viral oncogene homolog)轉(zhuǎn)錄因子是植物中最大的轉(zhuǎn)錄因子家族之一,調(diào)控表皮毛發(fā)育、根毛密度、花和種子發(fā)育,參與次生代謝以及對(duì)生物和非生物脅迫反應(yīng)[1-2],與bHLH轉(zhuǎn)錄因子和WD40蛋白結(jié)合形成MBW轉(zhuǎn)錄激活復(fù)合物啟動(dòng)下游基因的表達(dá)。根據(jù)保守結(jié)構(gòu)域的重復(fù)次數(shù),MYB 家族分為4個(gè)亞家族,其中R2R3 MYB是最大的亞家族[3-4],也是目前功能研究最為廣泛的一類MYB轉(zhuǎn)錄因子,通常在N端包含2個(gè)不完全的MYB重復(fù)序列,在C端包含轉(zhuǎn)錄激活或抑制域[5]。R2R3 MYB轉(zhuǎn)錄因子在擬南芥(Arabidopsisthaliana)中有125個(gè)基因成員,依據(jù)C端序列差異分為25個(gè)亞組,每個(gè)亞組有較為獨(dú)立的特殊功能,例如第6亞組基因參與花青素的生物合成、第22亞組成員在非生物脅迫響應(yīng)過(guò)程發(fā)揮重要作用、第21亞組成員廣泛參與腋芽分生組織調(diào)節(jié)。其中,MIXTA/MIXTA-like基因?qū)儆诘?亞組[3,5-7]。
MIXTA/MIXTA-like基因主要參與表皮細(xì)胞分化,第1個(gè)MIXTA基因是從金魚草(Antirrhinummajus)突變體中鑒定出來(lái)的,命名為AmMIXTA,是金魚草花瓣表皮細(xì)胞分化為錐形細(xì)胞的關(guān)鍵調(diào)控因子[8]。后續(xù)還鑒定出3個(gè)與MIXTA基因功能相似的同源基因分別是AmMYBML1(MYBMIXTA-like1)、AmMYBML2和AmMYBML3[9-10],都在金魚草花瓣表皮細(xì)胞分化過(guò)程中發(fā)揮重要作用,它們的功能相似或相同但并不冗余[10]。近幾年,越來(lái)越多的研究報(bào)道了MIXTA/MIXTA-like基因在不同植物中參與調(diào)控表皮細(xì)胞錐形化,同時(shí)對(duì)角質(zhì)層及表皮蠟質(zhì)合成、表皮毛發(fā)育也起到調(diào)控作用,這類基因被證實(shí)是參與植物表皮細(xì)胞分化的主要調(diào)控因子。
植物表皮細(xì)胞分化后主要形成錐形化細(xì)胞、角質(zhì)層以及多種形態(tài)的表皮毛等植物表皮附著物。錐形化細(xì)胞是表皮細(xì)胞分化形成的一種高于扁平細(xì)胞的凸起狀錐形細(xì)胞[8,11-12],其中花瓣表皮細(xì)胞的錐形化在自然界中廣泛存在[13],且不同植物之間的細(xì)胞大小,圓錐形的角度和高度也存在顯著差異。圓錐形細(xì)胞與花瓣的顏色、對(duì)光的捕獲和反射、氣味的產(chǎn)生、潤(rùn)濕性以及傳粉媒介在花表面的附著力有關(guān)[13-15]。
許多陸地植物組織器官的表面有角質(zhì)層,是抵抗生物和非生物脅迫的第1道屏障[16-17]。植物角質(zhì)層的保護(hù)功能取決于其組成成分的物理化學(xué)性質(zhì)。植物角質(zhì)層通常由2個(gè)主要成分組成:角質(zhì)支架以及圍繞角質(zhì)支架的表皮蠟[18]。角質(zhì)層蠟質(zhì)是減少非氣孔失水的主要屏障之一,對(duì)植物耐旱性發(fā)揮重要作用[17-18]。目前在擬南芥、番茄(Solanumlycopersicum)、洋桔梗(Eustomagrandiflorum)和地錢(Marchantiapolymorpha)等多個(gè)植物種中均發(fā)現(xiàn)MIXTA/MIXTA-like基因?qū)琴|(zhì)層及表皮蠟質(zhì)合成具有調(diào)控作用。
表皮毛是植物表皮細(xì)胞凸起、分化后附著在植物表面的一種特殊結(jié)構(gòu)。表皮毛的存在加強(qiáng)了對(duì)表皮的保護(hù)作用,可以減少食草動(dòng)物和取食昆蟲的侵害[19-21],還可以減少蒸騰,有利于植物生長(zhǎng)[22-23]。在擬南芥、番茄、黃花蒿(Artemisiaannua)、黃瓜(Cucumissativus)及楊樹(Populus)等多個(gè)植物種中均發(fā)現(xiàn)MIXTA/MIXTA-like基因參與表皮毛的發(fā)育調(diào)控[20-23]。種毛是一種特殊的表皮毛,是附屬在植物種子表面的毛狀纖維,起到輔助種子擴(kuò)散和傳播的作用。如棉花(Gossypiumhirsuta)的棉纖維發(fā)育起始于胚珠表皮細(xì)胞,由單細(xì)胞分化而來(lái)。目前棉纖維發(fā)育已得到較為深入的研究[24-25],棉纖維細(xì)胞的起始分化期決定了有多少胚珠表皮細(xì)胞發(fā)育成棉纖維[26-27],因此闡明調(diào)控棉纖維起始分化的關(guān)鍵基因GhMML(GossypiumhirsuteMYBMIXTA-Like)[28],對(duì)提高棉花產(chǎn)量有重要意義,也為其他植物的種毛發(fā)育研究提供參考[29-31],特別是對(duì)楊樹、柳樹(Salixspp.)和法國(guó)梧桐(Platanusorientalis)等的飛絮治理有重要意義。
研究發(fā)現(xiàn),MIXTA/MIXTA-like基因在調(diào)控表皮細(xì)胞分化過(guò)程中發(fā)揮重要作用[32],不同植物中的MIXTA/MIXTA-like基因數(shù)目不同,但MIXTA/MIXTA-like基因在結(jié)構(gòu)和表達(dá)模式上有較高的相似性,因此,MIXTA/MIXTA-like基因是鑒定表皮細(xì)胞分化潛在遺傳機(jī)制的重要候選基因。了解MIXTA/MIXTA-like基因的特征及其對(duì)植物表皮細(xì)胞分化調(diào)控的研究進(jìn)展,對(duì)于闡明木本植物表皮細(xì)胞分化的分子調(diào)控,尤其是對(duì)加速林木飛絮污染防治基礎(chǔ)研究,具有重要意義。
MIXTA/MIXTA-like基因?qū)儆贛YB轉(zhuǎn)錄因子家族中的一類序列和功能保守的亞家族基因,有典型的MYB轉(zhuǎn)錄因子序列特征。MYB轉(zhuǎn)錄因子通常在N端含有高度保守的MYB結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)域是一段51~52個(gè)氨基酸的肽段,包含4個(gè)不完整的氨基酸重復(fù)序列(R),每個(gè)重復(fù)序列在三維空間中構(gòu)成 3 個(gè)α-螺旋,第2個(gè)和第3個(gè)螺旋以3個(gè)色氨酸殘基為疏水核心構(gòu)成“螺旋—轉(zhuǎn)角—螺旋(HTH)”結(jié)構(gòu),MYB 轉(zhuǎn)錄因子通過(guò)該結(jié)構(gòu)與 DNA 結(jié)合[33-34]。MYB結(jié)構(gòu)域根據(jù)堿基數(shù)目和色氨酸保守性上存在的差異分為R1、R2和R3 這3種類型,根據(jù)結(jié)構(gòu)域含有的R重復(fù)片段數(shù)將MYB超家族成員分為 1R-MYB (MYB-related proteins)、2R-MYB(R2R3)、3R-MYB(R1R2R3)和 4R-MYB(R1R2R2R1/2-MYB) 4個(gè)亞家族,R2R3 MYB亞家族是植物中最豐富的類型[3,33]。在擬南芥中已發(fā)現(xiàn)大約125個(gè)R2R3 MYB成員,這些成員在系統(tǒng)發(fā)育樹上被聚成25個(gè)亞組[34]。
R2R3 MYB轉(zhuǎn)錄因子第9亞組(subgroup 9,SBG9)的基因除N端2個(gè)高度保守的R2R3 MYB結(jié)構(gòu)域外,在C端還存在1個(gè)高度保守的第9亞組特征基序(SBG9基序)[3],這種高度保守的SBG9基序一般由10~22個(gè)氨基酸組成(序列通常為AQWESAR**AE*RL*RES)[8,31,34]。通過(guò)對(duì)SBG9基因序列分析,發(fā)現(xiàn)SBG9基因C端保守性較低,出現(xiàn)較高頻率的插入/缺失突變,以及同義和非同義替換[31]。在種子植物中,SBG9基因序列C端存在2個(gè)差異明顯的基序,進(jìn)一步將含SBG9基序的基因分成含SBG9-A基序和含SBG9-B基序這兩類基因(圖1)。含SBG9-A基序的基因在真雙子葉植物基因組復(fù)制事件中又產(chǎn)生了2個(gè)明顯分支,與最早鑒定出來(lái)的金魚草中的AmMIXTA基因聚在同一分支的命名為MIXTA,另一分支命名為MIXTA-like。含SBG9-B基序的基因在真雙子葉植物基因組復(fù)制事件中也產(chǎn)生了2個(gè)分支,分別稱為MYB17和MYB17-like(圖1)。
圖1 R2R3 MYB SBG9基因的分類及功能域結(jié)構(gòu)示意圖
真核生物基因組大且結(jié)構(gòu)復(fù)雜[35],基因表達(dá)調(diào)控是一個(gè)復(fù)雜的生物學(xué)過(guò)程。解析MIXTA/MIXTA-like基因的生物學(xué)功能,需要首先了解MIXTA/MIXTA-like基因在不同植物中及在不同組織器官中的時(shí)空表達(dá)模式。研究發(fā)現(xiàn),MIXTA/MIXTA-like基因在不同植物中的表達(dá)有一定的組織特異性,主要在花和葉片中高水平表達(dá)。例如:首先在金魚草中鑒定出來(lái)的AmMIXTA在花瓣中優(yōu)勢(shì)表達(dá)[36],其同源基因AmMYBML2基因在花瓣發(fā)育中表達(dá)相對(duì)較晚,明顯晚于AmMIXTA的表達(dá)高峰,在剛剛開放的花冠中表達(dá)量最大。AmMYBML2在葉片中同樣也有表達(dá),尤其是在擴(kuò)展期和成熟期葉片中[36]表達(dá)量更高。同樣,擬南芥的AtMYB16和AtMYB106也具有相似的表達(dá)模式,他們?cè)诨ㄓ绕涫腔ò曛斜磉_(dá)量最高,但這2種基因在葉片中也有表達(dá),尤其是在較幼嫩的蓮座葉中優(yōu)勢(shì)表達(dá)[34,37-38]。矮牽牛(Petuniahybrida)的MIXTA-like基因PhMYB1也在花中高表達(dá),并且表達(dá)量與花發(fā)育的不同階段有關(guān)[36]。猴面花(Mimulushybridus)中鑒定的MlMYBML7基因的表達(dá)僅限于花組織,且在花冠發(fā)育的9~10 mm階段達(dá)到頂峰[39]。洋桔梗的EgMIXTA1和黃花蒿的AaMIXTA1都在花芽中有較高的表達(dá)[40]。番茄的SlMIXTA-like表達(dá)譜顯示其在花瓣中顯著高表達(dá)[41-42]。此外,也有一些MIXTA基因在子房中優(yōu)勢(shì)表達(dá),例如黃瓜的CsMYB6在黃瓜果刺發(fā)生過(guò)程中主要表達(dá)于子房表皮[43-44]。同時(shí)也存在一些MIXTA基因在胚珠發(fā)育過(guò)程中特異表達(dá),例如棉花的10個(gè)GhMML基因,他們主要在棉纖維起始發(fā)育過(guò)程的胚珠表皮細(xì)胞中優(yōu)勢(shì)表達(dá),其中一些GhMML基因(GhMML3、GhMML4、GhMML7、GhMML8、GhMML9、GhMML10)在無(wú)絮突變體(SL-7-1、MD17、XZ142f1)中表達(dá)下調(diào)[17]。
綜上,MIXTA/MIXTA-like基因在不同植物中,表達(dá)部位可能不完全一致,主要在花和葉片中高水平表達(dá),也有在胚珠和子房中優(yōu)勢(shì)表達(dá)。造成這個(gè)差異的原因,可能是植物在進(jìn)化過(guò)程中,不同植物的組織器官發(fā)生特化,MIXTA/MIXTA-like基因家族成員也發(fā)生了不同程度的擴(kuò)張或收縮。
蟲媒花植物中,花的顏色和構(gòu)造是影響授粉昆蟲吸引的關(guān)鍵因素?;ò觐伾苫ㄉ爻煞趾秃?、環(huán)境以及花瓣表皮細(xì)胞的特性決定?;ò暝谖诜劾ハx的過(guò)程中不斷進(jìn)化,表皮細(xì)胞形狀發(fā)生改變進(jìn)化出圓錐形表皮細(xì)胞,可以增強(qiáng)花瓣表面的顏色強(qiáng)度和亮度[8,22-23]。MIXTA/MIXTA-like編碼的R2R3 MYB轉(zhuǎn)錄因子已經(jīng)在多個(gè)物種中被鑒定出可以促進(jìn)扁平細(xì)胞分化形成錐形表皮細(xì)胞。在金魚草中首先鑒定的AmMIXTA被證實(shí)對(duì)花瓣錐形表皮細(xì)胞形成起積極調(diào)控作用。隨后又在金魚草中鑒定出3個(gè)MIXTA-like同源基因(AmMYBML1、AmMYBML2和AmMYBML3)也在花瓣中表達(dá),表明在同一物種的同一組織中會(huì)有多個(gè)MIXTA基因發(fā)揮作用。AmMYBML1主要對(duì)金魚草腹瓣的錐形表皮細(xì)胞形成起調(diào)控作用[45]。AmMYBML2在花冠中表達(dá)量最高,與矮牽牛的PhMYB1和擬南芥的AtMYB16的親緣關(guān)系最為密切,它們具有相似的生物學(xué)功能,促進(jìn)細(xì)胞單向擴(kuò)張,決定花瓣表皮細(xì)胞伸展生長(zhǎng)的程度[36]。唐松草屬(Thalictrum)的MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子TtMYBML2具有與AmMYBML2和PhMYB1相似的功能,參與調(diào)控花瓣表皮細(xì)胞錐形化,在煙草(Nicotianatabacum)過(guò)表達(dá)可誘導(dǎo)心皮表皮細(xì)胞向外生長(zhǎng),并顯著增加花瓣正面表皮圓錐細(xì)胞的高度[46]。
MIXTA/MIXTA-like基因除了參與花瓣中錐形表皮細(xì)胞的形成,在猴面花中還鑒定出一種編碼R2R3 MYB的MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子MlMYBML7,通過(guò)調(diào)節(jié)花瓣腹側(cè)表皮細(xì)胞錐形化,使其在花瓣腹側(cè)形成 2 個(gè)毛茸茸的形狀類似于脊的結(jié)構(gòu),稱之為“花蜜向?qū)А盵47]。MlMYBML7控制猴面花中的花蜜向?qū)纬?,同時(shí)還促進(jìn)類胡蘿卜素色素沉積,花蜜向?qū)?duì)紫外線反射的響應(yīng)較強(qiáng)烈,類胡蘿卜素使花瓣色彩鮮艷,花心部位顏色較深,從而形成鮮明的顏色對(duì)比以吸引昆蟲授粉[39]。此外,在番茄中還發(fā)現(xiàn)SlMIXTA-like沉默植株番茄果實(shí)表皮錐形細(xì)胞發(fā)育受影響,同時(shí)采后失水并且對(duì)病原體的抵抗力發(fā)生了變化[41]。說(shuō)明MIXTA/MIXTA-like基因?qū)麑?shí)中表皮細(xì)胞錐形化也起到調(diào)控作用。
植物角質(zhì)層一般由植物表皮細(xì)胞合成和分泌,在植物與環(huán)境的界面形成疏水層[48-49],限制非蒸騰作用,防止水分流失[50-51]。此外,角質(zhì)層還可以作為物理屏障,抵御紫外線輻射、病原體攻擊和機(jī)械損傷[27,29]。擬南芥被作為研究遺傳學(xué)和分子生物學(xué)的一種模式植物,具有典型的角質(zhì)層結(jié)構(gòu)及組分,在擬南芥中首先發(fā)現(xiàn)了參與角質(zhì)層生物合成以及蠟沉積的AP2/EREBP 超家族ERF亞家族的WAX INDUCER1/SHINE1(WIN1/SHN1)轉(zhuǎn)錄因子[52-53],過(guò)表達(dá)WIN1/SHN1可以增加角質(zhì)和蠟質(zhì)的產(chǎn)生[54]。近期的研究在維管植物角質(zhì)層形成的生化和遺傳基礎(chǔ)方面取得了相當(dāng)大的進(jìn)展[29-30,55], 揭示了維管植物中調(diào)節(jié)角質(zhì)層生物合成的遺傳網(wǎng)絡(luò),其中MYB轉(zhuǎn)錄因子起著核心作用。
擬南芥中調(diào)節(jié)表皮細(xì)胞發(fā)育的編碼R2R3 MYB的MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子MYB16和MYB106通過(guò)直接激活角質(zhì)層生物合成基因WIN1/SHN1來(lái)控制擬南芥中的角質(zhì)層形成[51,56]。MYB106和MYB16的敲除導(dǎo)致表皮缺陷,角質(zhì)和蠟質(zhì)減少。相反,MYB106過(guò)表達(dá)可誘導(dǎo)角質(zhì)和蠟質(zhì)合成,并提高WIN1/SHN1的表達(dá)[57]。WIN1/SHN1表達(dá)被MYB106-VP16(在MYB106編碼序列的C端添加VP16 轉(zhuǎn)錄激活域序列)誘導(dǎo)并被MYB106-SRDX(在MYB106編碼序列的C端添加SRDX 轉(zhuǎn)錄抑制域序列)抑制,表明MIXTA-like蛋白和WIN1/SHN1協(xié)同調(diào)節(jié)角質(zhì)的生物合成和蠟積累[58]。番茄的MIXTA-like基因SlMIXTA-like對(duì)果實(shí)角質(zhì)層和錐形表皮細(xì)胞的形成均有積極的調(diào)節(jié)作用,并與角質(zhì)層聚合物的形成、角質(zhì)層的組裝和表皮細(xì)胞的模式化有關(guān)[41]。地錢的MIXTA-like基因MpSBG9也是角質(zhì)層生物合成的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子,其優(yōu)先調(diào)節(jié)角質(zhì)形成的同源基因的表達(dá),而不是蠟的生物合成基因[59]。還有一些MIXTA-like基因在角質(zhì)層發(fā)育過(guò)程中主要對(duì)表皮蠟起重要調(diào)控作用,洋桔梗EgMIXTA1基因過(guò)表達(dá)的植物在葉表面有更多的蠟晶沉積,并且角質(zhì)層蠟的總量也明顯增加。表明它參與角質(zhì)蠟的生物合成[40]。綜上,MIXTA/MIXTA-like基因參與了不同植物的角質(zhì)層的生物合成,在不同物種間的功能具有保守性。尤其是在植物進(jìn)化早期的物種苔蘚中,也發(fā)現(xiàn)了MIXTA/MIXTA-like基因參與了角質(zhì)層的合成調(diào)控,這意味著陸地植物特有的MIXTA-MYB譜系在角質(zhì)層的早期起源和進(jìn)化中起著重要作用。
植物表皮毛是由表皮細(xì)胞分化而來(lái)的一種特殊的單細(xì)胞或多細(xì)胞結(jié)構(gòu)[60],分為有分泌功能的腺毛和不具分泌功能的非腺毛[61]。在植物表面起保護(hù)作用,如提供機(jī)械屏障保護(hù)植物免受動(dòng)物和昆蟲侵害,有的植物腺毛還能夠產(chǎn)生、分泌或儲(chǔ)存具有重要價(jià)值的次生代謝產(chǎn)物[40,62]。擬南芥的莖、葉片和萼片上的表皮毛是單細(xì)胞凸起分化形成的毛狀結(jié)構(gòu),已在擬南芥中發(fā)現(xiàn)多個(gè)基因調(diào)節(jié)表皮毛的發(fā)育[3,63-64]。例如,編碼R2R3MYB的控制擬南芥表皮毛形成的關(guān)鍵正調(diào)控基因GL1是最早克隆出來(lái)的[65-67],其突變體出現(xiàn)莖葉無(wú)毛的表型。同樣編碼R2R3 MYB的擬南芥MIXTA-like基因AtMYB106/NOK是擬南芥是表皮毛分枝的負(fù)調(diào)節(jié)因子[38],nok突變體中表皮毛分支明顯增多并具有玻璃狀表型外觀[68],而在nok突變體中過(guò)表達(dá)AtMYB106基因,減少了表皮毛分支的形成[69]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),TCP15也參與調(diào)控?cái)M南芥表皮毛分支的形成,TCP15與MYB106的啟動(dòng)子在體內(nèi)結(jié)合,調(diào)控MYB106基因的表達(dá)[70]。在其他植物中也發(fā)現(xiàn)了一些與擬南芥MIXTA-like基因親緣關(guān)系較近的基因調(diào)控表皮毛的發(fā)育。例如黃瓜的MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子CsMYB6負(fù)調(diào)控果刺形成,時(shí)空表達(dá)分析表明,CsMYB6在黃瓜果刺起始過(guò)程中的子房表皮中高水平表達(dá)。在黃瓜中過(guò)表達(dá)CsMYB6,轉(zhuǎn)基因植株中果刺數(shù)量和大小明顯減少[43]。
腺毛是具有分泌功能的植物表皮毛,主要作用是分泌和儲(chǔ)存次生代謝產(chǎn)物,是由多細(xì)胞分化形成的毛狀結(jié)構(gòu)。研究發(fā)現(xiàn),MIXTA/MIXTA-like基因?qū)ο倜陌l(fā)育也有一定的調(diào)控作用。番茄和黃花蒿是研究腺毛發(fā)育的理想材料[62,71]。番茄表皮毛主要受 R2R3 MYB 轉(zhuǎn)錄因子、HD-Zip Ⅳ蛋白、C2H2鋅指蛋白以及螺旋—環(huán)—螺旋結(jié)構(gòu)的 bHLH轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控。其中番茄中的MIXTA-like基因SlMX1編碼R2R3 MYB轉(zhuǎn)錄因子,過(guò)表達(dá)后轉(zhuǎn)基因植株的腺毛數(shù)量遠(yuǎn)高于野生植株,并且葉片厚度增加。SlMX1基因表達(dá)下調(diào),則葉片的腺毛數(shù)量減少,表明SlMX1是番茄腺毛發(fā)育的正調(diào)節(jié)因子[72-73]。黃花蒿是抗瘧藥青蒿素的主要來(lái)源,青蒿素作為植物的次級(jí)代謝產(chǎn)物,主要在腺毛中合成和儲(chǔ)存,因此腺毛密度直接關(guān)系到黃花蒿中有效成分青蒿素的含量。HD-ZIP IV轉(zhuǎn)錄因子AaHD1和MIXTA-like蛋白AaMIXTA1在促進(jìn)黃花蒿腺毛發(fā)生中起重要作用。AaHD1是黃花蒿腺毛形成的正調(diào)控因子[74]。AaMIXTA1主要在黃花蒿腺毛的基底細(xì)胞中表達(dá)。AaMIXTA1的過(guò)表達(dá)和抑制分別導(dǎo)致轉(zhuǎn)基因植株中腺毛數(shù)量和青蒿素含量的增加和減少。表明AaMIXTA1是腺毛發(fā)育的正調(diào)控因子,促進(jìn)腺毛的發(fā)育而不會(huì)對(duì)腺毛的形態(tài)結(jié)構(gòu)產(chǎn)生任何異常影響[72]。研究還發(fā)現(xiàn)一種新的HD-ZIPIV/MIXTA復(fù)合物可以促進(jìn)黃花蒿腺毛的發(fā)育。HD-ZIP IV轉(zhuǎn)錄因子AaHD8與MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子AaMIXTA1相互作用形成一種復(fù)合物,提高了調(diào)控黃花蒿腺毛起始發(fā)育的關(guān)鍵基因AaHD1基因的轉(zhuǎn)錄活性,促進(jìn)了腺毛的形成[74]。
種毛是促進(jìn)植物種子靠風(fēng)力傳播的一種表皮毛,長(zhǎng)期以來(lái),楊樹、柳樹和法國(guó)梧桐等的飛絮污染是造林和城市綠化中的重大困擾。這些植物的飛絮是在種子發(fā)育過(guò)程中由胎座的表皮細(xì)胞發(fā)育而來(lái)[75]。種毛發(fā)育研究是飛絮治理和開展不飛絮精準(zhǔn)育種的前提。研究MIXTA/MIXTA-like基因?qū)ΨN毛發(fā)育的調(diào)控有重要的理論意義和應(yīng)用價(jià)值。棉纖維是已知自然界中最長(zhǎng)的單細(xì)胞分化的種毛,有著重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值[76]。對(duì)棉纖維的起始發(fā)育研究相對(duì)比較深入,研究發(fā)現(xiàn),MIXTA-like轉(zhuǎn)錄因子在棉纖維發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮了重要作用。根據(jù)MIXTA序列特征,在棉花基因組中一共鑒定出10個(gè)GhMML基因[17]。其中,與擬南芥AtMYB06同源性最高的GhMYB25(GhMML7)是棉纖維發(fā)育的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子,GhMYB25沉默纖維起始分化細(xì)胞減少,伸長(zhǎng)速度減緩,出現(xiàn)“短纖維”表型[77]。而AtMYB106負(fù)調(diào)控?cái)M南芥毛狀體分支,表明棉纖維是不同于毛狀體的特殊種毛[34]。研究者利用正向遺傳學(xué)的圖位克隆方法在棉纖維突變體中克隆并驗(yàn)證了GhMYB25-like(GhMML3)以及其串聯(lián)重復(fù)基因GhMML4,分別調(diào)控棉花短絨與長(zhǎng)絨的起始發(fā)育[78-81]。在無(wú)絮突變體以及GhMML3-RNAi沉默植株中,包括GhMML4在內(nèi)的5個(gè)GhMML(GhMML4、GhMML7、GhMML8、GhMML9、GhMML10)基因表達(dá)量均被下調(diào),表明GhMML3是其他GhMML基因的上游調(diào)節(jié)因子[17]。
研究表明,MIXTA/MIXTA-like基因在不同組織器官中的表達(dá)主要與表皮細(xì)胞的分化相關(guān)(表1)。植物的表皮層是表皮細(xì)胞分化形成的功能多樣、結(jié)構(gòu)復(fù)雜的組織。在植物不斷進(jìn)化過(guò)程中,對(duì)于不同物種,表皮細(xì)胞分化方式不同,MIXTA/MIXTA-like基因也隨之衍生出不同的調(diào)控方式。表1列出了不同植物中MIXTA/MIXTA-like基因家族成員在表皮細(xì)胞分化過(guò)程中的代表性功能研究。如:首次在金魚草中鑒定出來(lái)的AmMIXTA及其同源基因AmMYBML1,參與調(diào)節(jié)花瓣表皮細(xì)胞錐形化;擬南芥的MYB106功能不僅體現(xiàn)在對(duì)表皮毛分支起調(diào)控作用,還體現(xiàn)在對(duì)其角質(zhì)層及表皮蠟質(zhì)形成的調(diào)控上。
表1 MIXTA/MIXTA-like基因家族成員在不同植物中的功能研究
綜合分析MIXTA/MIXTA-like基因在不同物種中的功能發(fā)現(xiàn),其作用部位和作用方式在不同植物種中有所不同,但最終調(diào)控目的都集中在表皮細(xì)胞分化上(表1)。如:金魚草、矮牽牛和唐松草的MIXTA/MIXTA-like基因參與調(diào)控表皮細(xì)胞凸起形成錐形表皮細(xì)胞;擬南芥、番茄、洋桔梗和地錢的MIXTA/MIXTA-like基因?qū)χ参锉砥ぜ?xì)胞合成和分泌的角質(zhì)層及表皮蠟質(zhì)起調(diào)控作用;擬南芥、黃瓜、黃花蒿以及棉花的MIXTA/MIXTA-like基因?qū)Ρ砥ぜ?xì)胞分化形成的表皮毛起調(diào)控作用,以上結(jié)果表明MIXTA/MIXTA-like基因在不同植物種表皮細(xì)胞分化過(guò)程中功能是高度保守的。但隨著植物在進(jìn)化過(guò)程中對(duì)環(huán)境的適應(yīng)以及MIXTA/MIXTA-like基因在不同物種基因組中擴(kuò)張和收縮不同,MIXTA/MIXTA-like基因在植物不同組織和器官中功能分化存在差異,因此MIXTA/MIXTA-like基因一些潛在功能也有待進(jìn)一步挖掘。
植物表皮細(xì)胞是植物與外界環(huán)境接觸的最外層細(xì)胞,其結(jié)構(gòu)特征與功能密切相關(guān)。表皮毛由表皮細(xì)胞分化而來(lái),可以防止食草動(dòng)物和取食昆蟲的侵害,也可以降低蒸騰速率。角質(zhì)層及表皮蠟質(zhì)形成了非氣孔失水的最外層屏障,在應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫中發(fā)揮重要作用。錐形表皮細(xì)胞可以直接影響花瓣的顏色,吸引授粉昆蟲。棉纖維是附屬在種皮上的特殊的表皮細(xì)胞,是天然纖維的重要來(lái)源。楊樹、法國(guó)梧桐等的飛絮可以極大提高種子的擴(kuò)散能力,但同時(shí)會(huì)帶來(lái)嚴(yán)重的環(huán)境污染。綜合表皮細(xì)胞分化的重要功能,對(duì)表皮細(xì)胞分化分子機(jī)制研究有重要理論意義和應(yīng)用價(jià)值。研究發(fā)現(xiàn),R2R3 MYB、bHLH 和 HD-ZIP IV亞家族均有成員參與表皮細(xì)胞分化,其中編碼R2R3 MYB 蛋白的MIXTA/MIXTA-like基因被證明廣泛參與表皮細(xì)胞分化調(diào)控,但由于不同植物中基因功能的分化,MIXTA/MIXTA-like基因一些潛在的生物學(xué)功能還有待挖掘,其調(diào)控網(wǎng)絡(luò)也需要進(jìn)一步研究,并且由于木本植物組培體系不完善、育種周期長(zhǎng)等特點(diǎn),目前關(guān)于MIXTA/MIXTA-like基因在木本植物中參與表皮細(xì)胞分化的報(bào)道較少。隨著生物信息學(xué)和分子生物學(xué)的快速發(fā)展,將極大推進(jìn)對(duì)MIXTA/MIXTA-like在表皮細(xì)胞分化過(guò)程中的作用機(jī)制進(jìn)行更全面、更深入的研究。同時(shí)隨著基因編輯技術(shù)在林木中的廣泛應(yīng)用,可以實(shí)現(xiàn)對(duì)林木中與表皮毛相關(guān)的重要性狀的精準(zhǔn)改良,例如在楊樹中對(duì)MIXTA/MIXTA-like基因進(jìn)行基因編輯,提高無(wú)絮楊樹新品種創(chuàng)制的可能性。
參考文獻(xiàn)(reference):
[1]KHOSLA A, PAPER J M, BOEHLER A P, et al. HD-Zip proteins GL2 and HDG11 have redundant functions inArabidopsistrichomes, and GL2 activates a positive feedback loop via MYB23[J]. Plant Cell, 2014, 26 (5): 2184-2200. DOI: 10.1105/tpc.113.120360.
[3]DUBOS C, STRACKE R, GROTEWOLD E, et al. MYB transcription factors inArabidopsis[J]. Trends Plant Sci, 2010, 15(10): 573-581. DOI: 10.1016/j.tplants.2010.06.005.
[4]FELLERA,MACHEMER K,BRAUN E L,et al.Evolutionary and comparative analysis of MYB and bHLH plant transcription factors[J].Plant J,2011,66(1):94-116.DOI:10.1111/j.1365-313x.2010.04459.x.
[5]MARTIN C,PAZ-ARES J.MYB transcription factors in plants[J].Trends Genet,1997,13(2):67-73.DOI:10.1016/S0168-9525(96)10049-4.
[6]李宗艷,李名揚(yáng).調(diào)控植物類黃酮生物合成的轉(zhuǎn)錄因子研究進(jìn)展[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2011,35(5):129-134.LI Z Y,LI M Y.Advance in transcriptional factors regulating flavonoid biosynthesis[J].J Nanjing For Univ(Nat Sci Ed),2011,35(5):129-134.DOI: 10.3969/j.issn.1000-2006.2011.05.029.
[7]JUNGBLUT P R,SCHAIBLE U E,MOLLENKOPF H J,et al.Comparative proteome analysis ofMycobacteriumtuberculosisandMycobacteriumbovisBCG strains:towards functional genomics of microbial pathogens[J].Mol Microbiol,1999,33(6):1103-1117.DOI:10.1046/j.1365-2958.1999.01549.x.
[8]NODA K,GLOVER B J,LINSTEAD P,et al.Flower colour intensity depends on specialized cell shape controlled by a Myb-related transcription factor[J].Nature,1994,369(6482):661-664.DOI:10.1038/369661a0.
[9]MARTIN C,BHATT K,BAUMANN K,et al.The mechanics of cell fate determination in petals[J].Philos Trans Royal Soc Lond Ser B Biol Sci,2002,357(1422):809-813.DOI:10.1098/rstb.2002.1089.
[10]JAFFé F W,TATTERSALL A,GLOVER B J.A truncated MYB transcription factor fromAntirrhinummajusregulates epidermal cell outgrowth[J].J Exp Bot,2007,58(6):1515-1524.DOI:10.1093/jxb/erm020.
[11]KAY Q. More than eye can see: the unexpected complexity of petal structure[J]. Plants Today, 1988, 87: 109-114. DOI: 10.1111/j.1749-6632.2002.tb07570.x.
[12]KAY Q,DAOUD H S,STIRTON C H.Pigment distribution,light reflection and cell structure in petals[J].Bot J Linn Soc,1981,83(1):57-83.DOI:10.1111/j.1095-8339.1981.tb00129.x.
[13]WHITNEY H M, CHITTKA L, BRUCE T J, et al. Conical epidermal cells allow bees to grip lflowers and increase foraging effificiency[J]. Curr Biol, 2009, 19: 948-953. DOI: 10.1016/j.cub.2009.04.051.
[14]NEINHUIS C,BARTHLOTT W.Characterization and distribution of water-repellent,self-cleaning plant surfaces[J].Ann Bot,1997,79(6):667-677.DOI:10.1006/anbo.1997.0400.
[15]SCHREIBER L. Annual plant reviews Volume 23: Biology of the plant cuticle[M]. Oxford: Blackwell Publishing Ltd, 2007.
[16]SHEPHERD T,WYNNE GRIFFITHS D.The effects of stress on plant cuticular waxes[J].New Phytol,2006,171(3):469-499.DOI:10.1111/j.1469-8137.2006.01826.
[17]YEATS T H,ROSE J K.The formation and function of plant cuticles[J].Plant Physiol,2013,163(1):5-20.DOI:10.1104/pp.113.222737.
[18]FICH E A,SEGERSON N A,ROSE J K.The plant polyester cutin:biosynthesis,structure,and biological roles[J].Annu Rev Plant Biol,2016,67:207-233.DOI:10.1146/annurev-arplant-043015-111929.
[19]SCHILMILLER A L,LAST R L,PICHERSKY E.Harnessing plant trichome biochemistry for the production of useful compounds[J].Plant J,2008,54(4):702-711.DOI:10.1111/j.1365-313x.2008.03432.x.
[20]NEAL J J,STEFFENS J C,TINGEY W M.Glandular trichomes ofSolatiumberthaultiiand resistance to the Colorado potato beetle[J].Entomol Exp et Appl,1989,51(2):133-140.DOI:10.1111/j.1570-7458.1989.tb01223.x.
[21]BODNARYK R P.Physical and chemical defences of pods and seeds of white mustard(SinapisalbaL.) against tarnished plant bugs,Lyguslineolaris(Palisot De Beauvois)(Heteroptera:Miridae)[J].Can J Plant Sci,1996,76(1):33-36.DOI:10.4141/cjps96-006.
[22]CHOINSKI J S,WISE R R.Leaf growth development in relation to gas exchange inQuercusmarilandicaMuenchh[J].J Plant Physiol,1999,154(3):302-309.DOI:10.1016/S0176-1617(99)80172-2.
[23]PéREZ-ESTRADA L B,CANO-SANTANA Z,OYAMA K.Variation in leaf trichomes of Wigandia arens:environmental factors and physiological consequences[J].Tree Physiol,2000,20(9):629-632.DOI:10.1093/treephys/20.9.629.
[24]PATERSON A H,WENDEL J F,GUNDLACH H,et al.Repeated polyploidization ofGossypiumgenomes and the evolution of spinnable cotton fibres[J].Nature,2012,492(7429):423-427.DOI:10.1038/nature11798.
[25]ZHANG TZ,HU Y,JIANG W K,et al.Sequencing of allotetraploid cotton(GossypiumhirsutumL.a(chǎn)cc.TM-1) provides a resource for fiber improvement[J].Nat Biotechnol,2015,33(5):531-537.DOI:10.1038/nbt.3207.
[26]HAIGLER C H,BETANCUR L,STIFF M R,et al.Cotton fiber:a powerful single-cell model for cell wall and cellulose research[J].Front Plant Sci,2012,3:104.DOI:10.3389/fpls.2012.00104.
[27]TURLEY R B, KLOTH R H. Identification of a third fuzzless seed locus in upland cotton(GossypiumhirsutumL.)[J]. J Hered, 2002, 93(5): 359-364. DOI: 10.1093/jhered/93.5.359.
[28]TIAN Y, DU J J, WU H T, et al. The transcription factor MML4_D12 regulates fiber development through interplay with the WD40-repeat protein WDR in cotton[J]. J Exp Bot, 2020, 71(12): 3499-3511. DOI: 10.1093/jxb/eraa104.
[29]STEWART JM.Fiber initiation on the cotton ovule(Gossypiumhirsutum)[J].Am J Bot,1975,62(7):723-730.DOI:10.1002/j.1537-2197.1975.tb14105.x.
[30]WU YR,MACHADO A C,WHITE R G,et al.Expression profiling identifies genes expressed early during lint fibre initiation in cotton[J].Plant Cell Physiol,2006,47(1):107-127.DOI:10.1093/pcp/pci228.
[31]BROCKINGTON S F,ALVAREZ-FERNANDEZ R,LANDIS J B,et al.Evolutionary analysis of theMIXTAgene family highlights potential targets for the study of cellular differentiation[J].Mol Biol Evol,2013,30(3):526-540.DOI:10.1093/molbev/mss260.
[32]OGATA K,MORIKAWA S,NAKAMURA H,et al.Solution structure of a specific DNA complex of the Myb DNA-binding domain with cooperative recognition helices[J].Cell,1994,79(4):639-648.DOI:10.1016/0092-8674(94)90549-5.
[33]MILLARD P S,KRAGELUND B B,BUROW M.R2R3 MYB transcription factors-functions outside the DNA-binding domain[J].Trends Plant Sci,2019,24(10):934-946.DOI:10.1016/j.tplants.2019.07.003.
[34]STRACKE R,WERBER M,WEISSHAAR B.The R2R3-MYB gene family inArabidopsisthaliana[J].Curr Opin Plant Biol,2001,4(5):447-456.DOI:10.1016/s1369-5266(00)00199-0.
[35]JAENISCH R, BIRD A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals[J]. Nat Genet, 2003, 33: 245-254. DOI: 10.1038/ng1089.
[36]BAUMANN K,PEREZ-RODRIGUEZ M,BRADLEY D,et al.Control of cell and petal morphogenesis by R2R3 MYB transcription factors[J].Development,2007,134(9):1691-1701.DOI:10.1242/dev.02836.
[37]KRANZ H D,DENEKAMP M,GRECO R,et al.Towards functional characterisation of the members of theR2R3-MYBgene family fromArabidopsisthaliana[J].Plant J,1998,16(2):263-276.DOI:10.1046/j.1365-313x.1998.00278.x.
[38]JAKOBY M J,F(xiàn)ALKENHAN D,MADER M T,et al.Transcriptional profiling of matureArabidopsistrichomesreveals that NOECK encodes the MIXTA-like transcriptional regulator MYB106[J].Plant Physiol,2008,148(3):1583-1602.DOI:10.1104/pp.108.126979.
[39]YUAN Y W,SAGAWA J M,DI STILIO V S,et al.Bulk segregant analysis of an induced floral mutant identifies a MIXTA-like R2R3 MYB controlling nectar guide formation inMimuluslewisii[J].Genetics,2013,194(2):523-528.DOI:10.1534/genetics.113.151225.
[40]WANG L,XUE W,LI X,et al.EgMIXTA1,a MYB-type transcription factor,promotes cuticular wax formation inEustomagrandiflorumleaves[J].Front Plant Sci,2020,11:524947.DOI:10.3389/fpls.2020.524947.
[41]LASHBROOKE J,ADATO A,LOTAN O,et al.The tomato MIXTA-like transcription factor coordinates fruit epidermis conical cell development and cuticular lipid biosynthesis and assembly[J].Plant Physiol,2015,169(4):2553-2571.DOI:10.1104/pp.15.01145.
[42]XU J S,VAN HERWIJNEN Z O,DRGER D B,et al.SlMYC1 regulates type VI glandular trichome formation and terpene biosynthesis in tomato glandular cells[J].Plant Cell,2018,30(12):2988-3005.DOI:10.1105/tpc.18.00571.
[43]ZHAO L,ZHU H,ZHANG K,et al.The MIXTA-LIKE transcription factor CsMYB6 regulates fruit spine and tubercule formation in cucumber[J].Plant Sci,2020,300:110636.DOI:10.1016/j.plantsci.2020.110636.
[44]YANG S,CAI Y L,LIU X W,et al.A CsMYB6-CsTRY module regulates fruit trichome initiation in cucumber[J].J Exp Bot,2018,69(8):1887-1902.DOI:10.1093/jxb/ery047.
[45]PEREZ-RODRIGUEZ M,JAFFE F W,BUTELLI E,et al.Deve-lopment of three different cell types is associated with the activity of a specific MYB transcription factor in the ventral petal ofAntirrhinummajusflowers[J].Development,2005,132(2):359-370.DOI:10.1242/dev.01584.
[46]DI STILIO V S,MARTIN C,SCHULFER A F,et al.An ortholog ofMIXTA-like2 controls epidermal cell shape in flowers ofThalictrum[J].New Phytol,2009,183(3):718-728.DOI:10.1111/j.1469-8137.2009.02945.x.
[47]LEONARD A S,BRENT J,PAPAJ D R,et al.Floral nectar guide patterns discourage nectar robbing by bumble bees[J].PLoS One,2013,8(2):e55914.DOI:10.1371/journal.pone.0055914.
[48]RAVEN J A.The evolution of vascular land plants in relation to supracellular transport processes[J].Adv Bot Res,1977,5:153-219.DOI:10.1016/S0065-2296(08)60361-4.
[49]KOLATTUKUDY P E.Biopolyester membranes of plants:cutin and suberin[J].Science,1980,208(4447):990-1000.DOI:10.1126/science.208.4447.990.
[50]KOLATTUKUDY P E.Polyesters in higher plants[J].Adv Biochem Eng,2001,71:1-49.DOI:10.1007/3-540-40021-4_1.
[51]NAWRATH C.Unraveling the complex network of cuticular structure and function[J].Curr Opin Plant Biol,2006,9(3):281-287.DOI:10.1016/j.pbi.2006.03.001.
[52]AHARONI A,DIXIT S,JETTER R,et al.The SHINE clade of AP2 domain transcription factors activates wax biosynthesis,alters cuticle properties,and confers drought tolerance when overexpressed inArabidopsis[J].Plant Cell,2004,16(9):2463-2480.DOI:10.1105/tpc.104.022897.
[53]BROUN P,POINDEXTER P,OSBORNE E,et al.WIN1,a transcriptional activator of epidermal wax accumulation inArabidopsis[J].PNAS,2004,101(13):4706-4711.DOI:10.1073/pnas.0305574101.
[54]KANNANGARA R,BRANIGAN C,LIU Y,et al.The transcription factor WIN1/SHN1 regulatesCutinbiosynthesisinArabidopsisthaliana[J].Plant Cell,2007,19(4):1278-1294.DOI:10.1105/tpc.106.047076.
[56]TAKETA S,AMANO S,TSUJINO Y,et al.Barley grain with adhering hulls is controlled by an ERF family transcription factor gene regulating a lipid biosynthesis pathway[J].PNAS,2008,105(10):4062-4067.DOI:10.1073/pnas.0711034105.
[57]OSHIMA Y, SHIKATA M, KOYAMA T, et al. MIXTA-like transcription factors and WAX INDUCER1/SHINE1 coordinately re-gulate cuticle development inArabidopsisandToreniafournieri[J]. Plant Cell, 2013, 25(5): 1609-1624. DOI: 10.1105/tpc.113.110783.
[58]YAN T, LI L, XIE L, CHEN M,et al. A novel HD-ZIP IV/MIXTA complex promotes glandular trichome initiation and cuticle development inArtemisiaannua[J]. New Phytol, 2018, 218(2): 567-578. DOI: 10.1111/nph.15005.
[59]XU B, TAYLOR L, PUCKER B,et al. The land plant-specific MIXTA-MYB lineage is implicated in the early evolution of the plant cuticle and the colonization of land[J]. New Phytol, 2021, 229(4): 2324-2338. DOI: 10.1111/nph.16997.
[60]MARTIN C, GLOVERB J. Functional aspects of cell patterning in aerial epidermis[J]. Curr Opin Plant Biol, 2007, 10: 70-82. DOI: 10(1).1016/j.pbi.2006.11.004.
[61]Advances in botanical research-incorporating advances in plant pathology[M].Amsterdam:Elsevier,2005.DOI:10.1016/s0065-2296(04)x4200-2.
[62]TISSIER A.Glandular trichomes:What comes after expressed sequence tags?[J].Plant J,2012,70(1):51-68.DOI:10.1111/j.1365-313x.2012.04913.x.
[63]LARKIN J C, BROWN M L, SCHIEFELBEIN J. How do cells know what they want to be when they grow up? lessons from epidermal patterning inArabidopsis[J]. Annu Rev Plant Biol, 2003, 54(1): 403-430. DOI: 10.1146/annurev.arplant.54.031902.134823.
[64]SERNA L, MARTIN C. Trichomes: different regulatory networks lead to convergent structures[J]. Trends Plant Sci, 2006, 11(6): 274-280. DOI: 10.1016/j.tplants.2006.04.008.
[65]OPPENHEIMER D G, HERMAN P L, SIVAKUMARAN S, et al. A myb gene required for leaf trichome differentiation inArabidopsisis expressed in stipules[J]. Cell, 1991, 67(3): 483-493. DOI: 10.1016/0092-8674(91)90523-2.
[66]BLOOMER R H, JUENGER T E, SYMONDS V V. Natural varia-tion in GL1 and its effects on trichome density inArabidopsisthaliana[J]. Mol Ecol, 2012, 21(14): 3501-3515. DOI: 10.1111/j.1365-294x.2012.05630.x.
[67]ZHAO M, MOROHASHI K, HATLESTAD G, et al. The TTG1-bHLH-MYB complex controls trichome cell fate and patterning through direct targeting of regulatory loci[J]. Development, 2008, 135(11): 1991-1999. DOI: 10.1242/dev.016873.
[68]FOLKERS U,BERGER J,HüLSKAMP M.Cell morphogenesis of trichomes inArabidopsis:differential control of primary and se-condary branching by branch initiation regulators and cell growth[J].Dev(Camb Engl),1997,124(19):3779-3786.
[69]GILDING E K,MARKS M D.Analysis of purified glabra3-shapeshifter trichomes reveals a role for NOECK in regulating early trichome morphogenic events[J].Plant J,2010,64(2):304-317.DOI:10.1111/j.1365-313x.2010.04329.x.
[70]CAMOIRANO A, ARCE A L, ARIEL F D, et al. Class I TCP transcription factors regulate trichome branching and cuticle development inArabidopsis[J]. J Exp Bot, 2020, 71(18): 5438-5453. DOI: 10.1093/jxb/eraa257.
[71]SHI P,F(xiàn)U X,SHEN Q,et al.The roles of AaMIXTA1 in regulating the initiation of glandular trichomes and cuticle biosynthesis inArtemisiaannua[J].New Phytol,2018,217(1):261-276.DOI:10.1111/nph.14789.
[72]EWAS M,GAO Y Q,WANG S C,et al.Manipulation of SlMXl for enhanced carotenoids accumulation and drought resistance in tomato[J].Sci Bull,2016,61(18):1413-1418.DOI:10.1007/s11434-016-1108-9.
[73]EWAS M,GAO Y Q,ALI F,et al.RNA-seq reveals mechanisms of SlMX1 for enhanced carotenoids and terpenoids accumulation along with stress resistance in tomato[J].Sci Bull,2017,62(7):476-485.DOI:10.1016/j.scib.2017.03.018.
[74]YAN T,CHEN M,SHEN Q,et al.HOMEODOMAIN PROTEIN 1 is required for jasmonate-mediated glandular trichome initiation inArtemisiaannua[J].New Phytol,2017,213(3):1145-1155.DOI:10.1111/nph.14205.
[75]LI J X,XIA X F,XU S J,et al.Development,structure and evolutionary significance of seed appendages inSalixmatsudana(Salicaceae)[J].PLoS One,2018,13(9):e0203061.DOI:10.1371/journal.pone.0203061.
[76]樊汝汶, 吳瓊美. 響葉楊(PopulusadenopodaMaxim)種子發(fā)育的胚胎學(xué)觀察[J]. 南京林學(xué)報(bào), 1982, 25(3): 116-128. FAN R W, WU Q M. The embryological observation of the seed development ofPopulusadenopoda[J]. J Nanjing For Univ, 1982, 25(3): 116-128. DOI: 10.3969/j.jssn.1000-2006.1982.03.010.
[77]MACHADO A,WU Y,YANG Y,et al.The MYB transcription factor GhMYB25 regulates early fibre and trichome development[J].Plant J,2009,59(1):52-62.DOI:10.1111/j.1365-313x.2009.03847.x.
[78]WAN Q,GUAN X,YANG N,et al.Small interfering RNAs from bidirectional transcripts of GhMML3_A12 regulate cotton fiber development[J].New Phytol,2016,210(4):1298-1310.DOI:10.1111/nph.13860.
[79]WALFORD S A,WU Y,LLEWELLYN D J,et al.GhMYB25-like:a key factor in early cotton fibre development[J].Plant J,2011,65(5):785-797.DOI:10.1111/j.1365-313x.2010.04464.x.
[80]ZHU QH,YUAN Y,STILLER W,et al.Genetic dissection of the fuzzless seed trait inGossypiumbarbadense[J].J Exp Bot,2018,69(5):997-1009.DOI:10.1093/jxb/erx459.
[81]WU H,TIAN Y,WAN Q,et al.Genetics and evolution ofMIXTAgenes regulating cotton lint fiber development[J].New Phytol,2018,217(2):883-895.DOI:10.1111/nph.14844.
[82]PASTORE J J,LIMPUANGTHIP A,YAMAGUCHI N,et al.Late meristem IDENTITY2 acts together with LEAFY to activate APETALA1[J].Development,2011,138(15):3189-3198.DOI:10.1242/dev.063073.
[83]TAN J,WALFORD S A,DENNIS E S,et al.Trichomes control flower bud shape by linking together young petals[J].Nat Plants,2016,2:16093.DOI:10.1038/nplants.2016.93.
[84]WENG L,TIAN Z,F(xiàn)ENG X,et al.Petal development inLotusjaponicus[J].J Integr Plant Biol,2011,53(10):770-782.DOI:10.1111/j.1744-7909.2011.01072.x.
[85]SCOVILLE A G,BARNETT L L,BODBYL-ROELS S,et al.Differential regulation of a MYB transcription factor is correlated with transgenerational epigenetic inheritance of trichome density inMimulusguttatus[J].New Phytol,2011,191(1):251-263.DOI:10.1111/j.1469-8137.2011.03656.x.
[86]PLETT J M,WILKINS O,CAMPBELL M M,et al.Endogenous overexpression ofPopulusMYB186 increases trichome density,improves insect pest resistance,and impacts plant growth[J].Plant J,2010,64(3):419-432.DOI:10.1111/j.1365-313x.2010.04343.x.