凌霄雁 林 栩 鄭心彤 黃海庭 古賢君 梁 釗 覃 卿 杜秀日 唐志明 王 晨 韋美理
(右江民族醫(yī)學院附屬醫(yī)院,百色533000)
足細胞已成為治療腎臟疾病的直接靶點,幾乎腎小球疾病都涉及足突(foot procfesses,F(xiàn)Ps)回縮消失、足細胞脫落或凋亡等足細胞損傷,最終引起蛋白尿、腎小球硬化[1]。而足細胞的正常結構和功能是由許多足細胞基因及其產(chǎn)物相互作用來維持的,例如裂孔隔膜相關蛋白nephrin、podocin、CD2AP和synaptopodin,它們在穩(wěn)定腎小球濾過系統(tǒng)中共同發(fā)揮作用。相關研究發(fā)現(xiàn)足細胞基因的突變、缺乏會引起或加劇足細胞損傷,但是至今其中的分子病理生理機制尚未完全闡明[2-3]。
miRNA已被證明對足細胞的穩(wěn)態(tài)至關重要,它是一種能靶向調(diào)節(jié)特定基因的非編碼小RNA,足細胞中miRNA的兩種必需酶Dicer或Drosha特異性損失則導致小鼠FPs消失、足細胞凋亡,出現(xiàn)明顯的蛋白尿并迅速發(fā)展為腎衰竭[4]。TGF-β1作為常用于誘導腎細胞損傷的因子,前期課題組已在TGF-β1誘導的足細胞損傷模型中發(fā)現(xiàn)miR-155表達增加,其表達水平可能與CD2AP、synapto?podin具有相關性,然而miR-155是否參與TGF-β1誘導的足細胞損傷,其中關系如何未明確,本實驗進一步深入研究miR-155與足細胞蛋白的調(diào)控關系,為miR-155在足細胞損傷中的作用提供理論和實驗依據(jù)[5]。
1.1 材料 腎小球足細胞株(MPC5,上海復旦大學細胞中心);RPMI1640培養(yǎng)基(美國Gibco公司);胎牛血清(以色列BI-04-002-1A);胰蛋白酶(美國Gibco公司);miR-155-5p模擬物(miR-155 mimics)、miR-155-5p抑制劑(miR-155 inhibitor)、miR-155 NC陰性對照(廣州RiboBio公司);脂質體2000轉染試劑(美國Invitrogen公司);Opti-MEM無血清培養(yǎng)基(美國Gibco公司);重組人TGF-β1(美國PeproTech公司);RT-PCR試劑盒(日本TaKaRa公司);Mir-X miRNA FirstStrand Synthesis Kit(美國Clontech公司);PCR引物由生工生物工程(上海)股份有限公司設計并合成(引物序列見表1);Podocin、CD2AP、synaptopodin、GAPDH兔抗小鼠一抗和HRP標記的羊抗兔二抗(美國Proteintech公司);磷酸酶抑制劑混合物、蛋白酶抑制劑混合物(北京康為世紀公司);BCA蛋白定量試劑盒(中國碧云天公司);蛋白質提取試劑盒、ECL發(fā)光顯影液(美國Millipore公司);4%多聚甲醛(上海Absin公司),Alexa Fluor 594熒光素標記兔抗IgG(美國CST公司);熒光定量PCR儀(瑞士Roche公司);凝膠成像系統(tǒng)(上海天能公司);免疫熒光顯微鏡(日本Olympus公司)。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養(yǎng) 培養(yǎng)方法參考本課題組的前期研究[5]。在含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),細胞長滿至80%~90%時用胰蛋白酶消化傳代,放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。用細胞免疫熒光染色鑒定足細胞是否分化成熟。
1.2.2 細胞轉染與藥物處理 以0.4×105~1×105個細胞種于6孔板中,待各組細胞融合至50%~70%后分別將Cy3 miR-155 NC、miR-155 mimics/mimics NC、miR-155 inihibitor/inhibitor NC及Lipo?fectamineTM2000加入Opti-MEM無血清培養(yǎng)基中混勻,靜置5 min,然后相對應混合,輕輕吹打混勻,室溫靜置20 min后加入6孔板細胞中,在培養(yǎng)箱孵育4~6 h。①用免疫熒光倒置顯微鏡隨機取3個高倍鏡視野,觀察Cy3 miR-155 NC紅色熒光的細胞數(shù)占總細胞數(shù)的百分比(轉染細胞率=熒光表達細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%),取其平均值作為轉染效率。②6孔板細胞中加入TGF-β1干預,終濃度為12 ng/ml,繼續(xù)培養(yǎng)進行后續(xù)實驗。
表1 熒光定量PCR引物序列Tab.1 Primers of RT-PCR
1.2.3 細胞分組 ①檢測正常組、TGF-β1組miR-155及蛋白CD2AP表達量;②分為miR-155 mimics+TGF-β1組、miR-155 mimics NC+TGF-β1組和miR-155 inhibitor+TGF-β1組、miR-155 inhibitor NC+TGF-β1組,在轉染(0 h、24 h、48 h、72 h)收集細胞檢測miR-155表達量;③分為正常組、TGF-β1組、TGF-β1+mimics組、TGF-β1+mimics NC組、TGF-β1+inhibitor組、TGF-β1+inhibitor NC組,給予TGF-β1干預48~72 h收集細胞進行檢測。
1.2.4 RT-PCR檢測足細胞miRNA-155、Podo?cin、CD2AP、Synaptopodin mRNA的表達 按1.2.3進行干預后,用TRIzol提取各實驗組細胞的總RNA,用紫外分光光度計進行總RNA的濃度和純度檢測,按照TaKaRa試劑盒說明書進行反轉錄和qRT-PCR,以GAPDH作為內(nèi)參,miRNA內(nèi)參為U6,反應條件:變性95℃30 s,反應95℃5 s,延伸60℃30 s,共40個循環(huán),以2-ΔΔCt法計算相對表達量。
1.2.5 Western blot檢測足細胞Podocin、CD2AP、Synaptopodin蛋白的表達 各組細胞按1.2.3進行干預后用RIPA裂解液充分裂解細胞,提取各組細胞總蛋白,并用BCA法測定蛋白濃度。將蛋白質樣品與蛋白質上樣緩沖液混勻,100℃下反應3~5 min充分變性,冷卻至室溫,取30~50μg蛋白樣品進行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳,300 mA恒流濕轉至PVDF膜,封閉液室溫封閉1 h,加一抗(Podocin 1∶400,CD2AP 1∶1 000,synaptopodin 1:1 000,GAPDH 1∶10 000),4℃孵育搖勻過夜。TBST洗膜3次,加入HRP標記的二抗(1∶5 000)室溫孵育2 h。TBST洗膜3次,用化學發(fā)光液進行顯影,凝膠成像系統(tǒng)采集圖像,Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。
1.2.6 細胞免疫熒光法 用PBS洗細胞3次,4%多聚甲醛室溫下固定15 min,PBS洗3次,0.3%Tri?tonX-100室溫破膜10 min,PBS洗3次,山羊血清室溫封閉1 h,加入一抗(CD2AP,1∶100),4℃搖床過夜,PBS洗3次,加入熒光二抗(1∶500)室溫避光孵育1 h,滴加DAPI復染5 min后防熒光淬滅劑封片,免疫熒光顯微鏡下觀察、攝片,Image Pro Plus圖像分析軟件分析熒光強度。
1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS20.0軟件進行統(tǒng)計分析,符合正態(tài)性分布的資料以±s表示,兩組間比較采用t檢驗;多組間比較用單因素方差分析(Oneway ANOVA),兩兩比較用LSD-t檢驗;轉染后miR-155表達隨時間變化的比較采用兩因素重復測量方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 足細胞分化鑒定 應用細胞免疫熒光染色檢測足細胞特異性蛋白CD2AP,熒光顯微鏡觀察顯示染色明顯,CD2AP分布于胞漿、細胞周邊、次級突起(圖1),此為分化足細胞CD2AP的分布的特征。用于實驗的細胞均為分化成熟的足細胞。
圖1 CD2AP在足細胞中的表達和分布(×200)Fig.1 Expression and distribution of CD2AP in podocytes(×200)
圖2 miR-155和CD2AP在TGF-β1誘導的足細胞中的表達Fig.2 Expressions of miR-155 and CD2APin podocyte in?duced by TGF-β1
2.2 TGF-β1誘導足細胞miR-155和蛋白CD2AP表達改變 用TGF-β1處理足細胞72 h后提取細胞,與正常組相比,TGF-β1處理可使足細胞中miR-155的表達顯著升高,CD2AP的蛋白表達水平顯著降低(P<0.05,圖2)。這與本課題組前期實驗TGF-β1誘導足細胞損傷結果一致[5]。
2.3 miR-155轉染足細胞后不同時間的miR-155表達變化 轉染成功指示劑Cy3 miR-155 NC轉染入足細胞,24 h后用倒置熒光顯微鏡觀察轉染熒光情況,紅色熒光明顯分布于細胞內(nèi),轉染效率為90%左右(圖3A)。轉染miR-155 mimics或miR-155 in?hibitor 0 h、24 h、48 h、72 h,用RT-PCR檢測miR-155的表達。重復測量方差分析結果顯示:對照組NC+TGF-β1的0 h和24 h miR-155表達水平無明顯差異(P>0.05);mimics+TGF-β1組24 h和0 h相比,miR-155表達水平增加(P<0.05);inhibitor+TGF-β1組24 h和0 h相比,miR-155表達水平差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。轉染24 h、48 h、72 h:①不同的時間點miR-155表達差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);②不同組間miR-155表達差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);③不同轉染組和觀察時間之間存在交互作用(P<0.05)。miR-155 mimics+TGF-β1組在轉染48 h、72 h后miR-155表達水平上升(P<0.05),NC+TGF-β 1組轉染48 h、72 h后miR-155水平稍上調(diào)(P<0.05),但mimics+TGF-β1組與mimics NC+TGF-β1組比,miR-155表達水平增加(P<0.05),而miR-155 inhibitor+TGF-β1組在轉染miR-155 inhibitor 48、72 h后miR-155表達水平下降(P<0.05),inhibitor NC+TGF-β1組miR-155的表達水平上調(diào)(P<0.05),inhibitor+TGF-β1組與inhibitor NC+TGF-β1組比,miR-155表達水平降低(P<0.05),miR-155 inhibitor可能抑制了TGF-β1誘導的足細胞miR-155水平的表達(圖3)。以上說明miR-155可能參與了TGF-β1對足細胞的作用。
圖3 miR-155在足細胞中的轉染效果Fig.3 Transfection effects of miR-155 in podocytes
2.4 轉染miR-155 mimics和miR-155 inhibitor后TGF-β1誘導的足細胞miR-155表達水平的變化 各組與正常組比,miR-155的表達量差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),與TGF-β1組相比,miR-155 mimics的轉染顯著上調(diào)miR-155的表達量(P<0.05),而轉染miR-155 inhibitor后miR-155表達下調(diào),差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05),TGF-β1+mimics NC、TGF-β 1+inhibitor NC組與TGF-β1處理組相比miR-155的表達水平無明顯變化(表2)。結果進一步表明,miR-155 mimics可上調(diào)TGF-β1誘導的足細胞miR-155表達,miR-155 inhibitor則抑制TGF-β1誘導的足細胞miR-155表達。
表2 miR-155 mimics/miR-155 inhibitor轉染后miR-155表達水平的變化(xˉ±s,n=3)Tab.2 Changes in miR-155 expression level after miR-155 mimics/miR-155 inhibitor transfection(xˉ±s,n=3)
表3 miR-155表達水平對TGF-β1誘導足細胞損傷中podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA表達的影響(±s)Tab.3 Effects of miR-155 expression level on expression of podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA in TGF-β1 induced podocyte injury(±s)
表3 miR-155表達水平對TGF-β1誘導足細胞損傷中podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA表達的影響(±s)Tab.3 Effects of miR-155 expression level on expression of podocin/CD2AP/synaptopodin mRNA in TGF-β1 induced podocyte injury(±s)
Note:Compared with normal group,1)P<0.05;compared with TGF-β1 group,2)P<0.05.
Groups Normal TGF-β1 TGF-β1+miR-155 mimics TGF-β1+mimics NC TGF-β1+miR-155 inhibitor TGF-β1+inhibitor NC Podocin mRNA 1.000±0.000 0.817±0.0311)0.127±0.0041)2)0.847±0.040 1)1.133±0.049 2)0.838±0.017 1)CD2APmRNA 1.000±0.000 0.786±0.0531)0.597±0.0371)2)0.790±0.0591)1.003±0.0682)0.771±0.060 1)Synaptopodin mRNA 1.000±0.000 0.679±0.0391)0.443±0.0491)2)0.686±0.0321)0.943±0.0282)0.647±0.0391)
2.5 miR-155轉染后對TGF-β1損傷足細胞podo?cin、synaptopodin、CD2APmRNA表達的影響 與正常對照組相比,TGF-β1組足細胞中podocin、CD2AP、synaptopodin mRNA的表達下調(diào),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),與TGF-β1組相比,TGF-β1+miR-155mimics組中podocin、CD2AP、synaptopodin mRNA的表達明顯下調(diào),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),而TGF-β1+miR-155 inhibitor組中podocin、CD2AP、syn?aptopodin mRNA的表達升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),TGF-β1+miR-mimics NC、TGF-β1+miR-155inhibitor NC組與TGF-β1處理組相比無統(tǒng)計學意義(表3)。結果表明,miR-155 mimics可促進TGF-β1誘導的足細胞podocin、CD2AP、synaptopodin表達下降,miR-155 inhibitor可逆轉TGF-β1對足細胞蛋白的損傷作用。
圖4 miR-155高表達對podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達的影響Fig.4 Effects of miR-155 overexpression on expressions of podocin,CD2APand synaptopodin protein
圖5 miR-155低表達對podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達的影響Fig.5 Effects of miR-155 low expression on expressions of podocin,CD2APand synaptopodin proteins
2.6 miR-155轉染后對TGF-β1損傷足細胞podo?cin、CD2AP、synaptopodin蛋白表達的影響 West?ern blot結果顯示,miR-155 mimics或miR-155 inhibi?tor轉染足細胞后,各組細胞之間podocin、CD2AP、synaptopodin蛋白水平的差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),miR-155 mimics高表達可促進podocin、syn?aptopodin、CD2AP蛋白表達下降,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖4),而miR-155 inhibitor則下調(diào)足細胞miR-155水平,進而抑制3種蛋白的水平降低(P<0.05,圖5),TGF-β1+miR-155 mimics NC、TGF-β1+miR-155inhibitor NC組與TGF-β1組相比無統(tǒng)計學差異。結果進一步表明,miR-155的表達變化可影響TGF-β1誘導 的 足 細 胞podocin、synaptopodin、CD2AP蛋白損傷。
2.7 miR-155轉染后免疫熒光染色觀察蛋白CD2AP表達與分布 CD2AP蛋白的表達與Western blot、RT-PCR結果一致。分化成熟的正常足細胞,CD2AP蛋白主要分布胞漿、周邊、次級突起(例如白色實心箭頭);TGF-β1處理的細胞,CD2AP蛋白熒光減弱,部分向核周分布(例如空心粗箭頭);miR-155 mimics轉染足細胞后CD2AP蛋白熒光比TGF-β1組較弱,且主要向核周分布(例如空心粗箭頭);miR-155 inhibitor抑制TGF-β1引起的CD2AP蛋白改變。見圖6。
圖6 各組細胞CD2AP蛋白的分布與表達(×400)Fig.6 Expression of CD2AP protein in each group(×400)
隨著蛋白質組學、生物信息學、分子生物學技術的發(fā)展,越來越多的足細胞超微結構、基因和功能被鑒定,足細胞與足細胞之間相互交叉作用,又通過足突附著于腎小球基底膜(glomerular base?ment membrane,GBM)[6]。由足細胞頂膜、裂孔隔膜(slit diaphragm,SD)、FPs、GBM組成了具有濾過功能的沙漏結構,其中的基因蛋白發(fā)生變化可引起足細胞結構功能改變,最終導致腎小球濾過功能下降和腎臟疾病,因此被認為是足細胞損傷的標志蛋白[7-8]。SD蛋白CD2AP缺乏的小鼠中活性氧增多,進而促使足細胞凋亡,抑制SHIP2使活性氧下降也不能阻止CD2AP缺乏引起的足細胞凋亡,而CD2AP過表達可減少足細胞凋亡[2]。其他的SD蛋白nephrin、podocin,突觸蛋白synaptopodin的突變和缺少都會引起足細胞的損傷,這與課題組實驗結果相一致,在TGF-β1干預的足細胞中,CD2AP與podocin、synaptopodin表達均降低[9]。研究還發(fā)現(xiàn),與免疫炎癥密切相關的miR-155對足細胞蛋白CD2AP、podocin、synaptopodin具有靶向作用,miR-155高表達可負性調(diào)節(jié)podocin、synapto?podin、CD2AP的表達,miR-155低表達可使podo?cin、synaptopodin、CD2AP表達上調(diào)。
越來越多證據(jù)表明,miRNA在腎臟發(fā)育和腎臟生理穩(wěn)態(tài)中起著重要的作用,很多腎臟疾病存在miRNA的失調(diào)[4]。近年來,miR-155在腎臟疾病中的作用不斷被發(fā)現(xiàn),糖尿病腎病患者血液、尿液中miR-155的表達發(fā)生改變,miR-155還可能參與調(diào)節(jié)肥胖相關腎病腎臟組織和內(nèi)皮細胞、狼瘡腎炎系膜細胞的損傷[10-13]。但是,目前miR-155對足細胞損傷的調(diào)控尚不清楚。有文獻表明腎上皮細胞、內(nèi)皮細胞、基底膜、外基質和系膜細胞之間存在串擾,miRNA旁分泌和自分泌介導腎小球細胞,例如miR-143可能是足細胞和腎小球內(nèi)皮細胞損傷串擾的介質,miR-378a-3p可抑制基底膜中細胞外基質蛋白nephronectin(NPNT)的表達水平,引起足細胞podocin表達下降[14-16]。因此,miR-155是否參與調(diào)節(jié)足細胞的損傷,且串擾其他腎細胞的損傷,對腎臟疾病而言具有一定研究價值。
miRNA是基因表達的中心協(xié)調(diào)器,可同時調(diào)節(jié)多個功能相關的靶基因,有的研究認為miRNA主要是在翻譯水平調(diào)節(jié)靶蛋白,對mRNA的影響可能不大。成功轉染miR-155 mimics或miR-155 inhibitor后,在不同時間點觀察了TGF-β1損傷足細胞模型中miR-155表達水平的變化及相應足細胞蛋白的表達,miR-155的表達在48、72 h后明顯上調(diào)或下調(diào),隨后,在轉染48 h~72 h提取細胞,分別用RT-PCR和Western blot檢測CD2AP、podocin、synaptopodin的mRNA和蛋白表達變化,結果發(fā)現(xiàn),miR-155 mimics可使TGF-β1誘導的足細胞miR-155表達增加,同時促進足細胞CD2AP、podo?cin、synaptopodin mRNA的下調(diào),3種蛋白的蛋白表達量也一致下降,而miR-155 inhibitor可以與TGFβ1誘導足細胞增加的miR-155競爭結合,下調(diào)TGF-β1引起的miR-155表達,從而抑制miR-155對足細胞的作用,CD2AP、podocin、synaptopodin的mRNA和蛋白表達均上調(diào),這說明miR-155可能同時靶向了足細胞的3種蛋白,從而參與調(diào)節(jié)TGF-β1誘導的足細胞損傷。有研究表明,CD2AP、podocin和nephrin可通過磷酸肌醇3-OH激酶連接,被認為是SD復合物[17]。CD2AP作為銜接蛋白通過其羧基端與骨架蛋白結合,將nephrin、podocin、syn?aptopodin與細胞骨架肌動蛋白連接起來,從而在功能上相互作用,影響CD2AP在足細胞中的定位和表達則破壞SD的穩(wěn)定性和細胞骨架[18-19]。用免疫熒光觀察CD2AP蛋白的表達與Western blot和PCR結果一致,其分布也發(fā)生了相應改變,再次證明了miR-155對足細胞蛋白的作用。
綜上所述,miR-155的表達變化影響TGF-β1誘導的足細胞損傷,在蛋白和mRNA層面都是有作用的,轉染inhibitor可抑制miR-155對CD2AP、podocin和synaptopodin的靶向作用,改善足細胞的損傷。因此,miR-155有很大的潛力成為足細胞損傷新的藥物靶標,本課題組也提出假設,miR-155可以靶向足細胞、系膜細胞、內(nèi)皮細胞、基底膜等腎細胞之間的串擾,緩解腎臟疾病,但具體的信號通路機制需要進一步深入研究。