免疫透射比濁法常見干擾因素的識別與應(yīng)對策略

賈珂珂， 孫文苑， 聶 睿， 崔麗艷

（北京大學(xué)第三醫(yī)院檢驗科，北京 100191）

免疫比濁法是將液相內(nèi)的沉淀反應(yīng)與現(xiàn)代光學(xué)儀器和自動分析技術(shù)相結(jié)合的一種分析技術(shù)，常用方法為免疫散射比濁法和免疫透射比濁法。免疫透射比濁法普遍用于全自動生化分析儀，具有自動化程度高、分析時間短、成本較低等優(yōu)點，然而在特定情況下，其測定結(jié)果受到一些干擾因素的影響。在生化分析儀上應(yīng)用的免疫透射比濁法主要為膠乳凝集免疫比濁法（latex agglutination turbidimetric immunoassay，LTIA）和顆粒增強免疫比濁法（particle-enhanced turbidimetric immunoassay，PETIA）。常見的溶血、脂血、黃疸等因素以及類風(fēng)濕因子（rheumatoid factor，RF）等自身抗體、M蛋白、嗜異性抗體等均會對免疫透射比濁法產(chǎn)生干擾，這些干擾因素可導(dǎo)致待測物的結(jié)果出現(xiàn)假性升高或降低，如果未被識別、糾正或提示臨床，就可能會給臨床診斷或治療監(jiān)測提供錯誤的信息，導(dǎo)致不良事件的發(fā)生[1]。本文主要探討了免疫透射比濁法常見的干擾類型、干擾識別及應(yīng)對策略。

1 樣本性狀的干擾

免疫透射比濁法可通過設(shè)置雙波長、樣本空白、樣本自動稀釋等方式減少干擾因素對檢測結(jié)果的影響，其對溶血、脂血、黃疸的抗干擾能力優(yōu)于免疫散射比濁法[2]。對于相同的檢測項目，不同檢測系統(tǒng)的免疫透射比濁法對溶血、脂血、黃疸的抗干擾能力有差異，需要具體評估。儀器如果能自動檢測血清指數(shù)，如溶血指數(shù)（hemolytic index，HI）、脂血指數(shù)（lipemic index，LI）和黃疸指數(shù)（icteric index，II），建議選擇合適的評價標準，設(shè)置相應(yīng)的警告值，以便給臨床決策提供可靠的信息[3]。

1.1 溶血

溶血對免疫透射比濁法的干擾主要來自血紅蛋白（hemoglobin，Hb）本身吸光度（A）值的干擾。Hb主要在415、540和570 nm有較強的吸收峰[4]，如果待測物的檢測波長也在540 nm，那么溶血產(chǎn)生的Hb就會影響反應(yīng)的A值。夏良裕等[3]評價了溶血對41個生化免疫項目的影響[檢測儀器為AU5800全自動生化分析儀（簡稱AUS5800，美國貝克曼庫爾特公司），試劑來自多個廠商]，其中14個項目采用免疫透射比濁法檢測，結(jié)果顯示，3個溶血組的免疫球蛋白（immunoglobulin，Ig）M、前白蛋白（prealbumin，PA）和RF結(jié)果均低于對照組（P＜0.05），其他項目與對照組比較，結(jié)果差異均無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05）或僅個別結(jié)果差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P＜0.05）；綜合考慮，RF的溶血警告指數(shù)設(shè)置為3（重度溶血，Hb為2.0～2.99 g/L），其他13個免疫透射比濁法項目的溶血警告指數(shù)設(shè)置為4（嚴重溶血，Hb 3～5 g/L），當(dāng)溶血指數(shù)達到相應(yīng)警告指數(shù)時，溶血對該項目的干擾可判斷為有臨床意義。彭鳳等[2]比較了免疫透射比濁法和免疫散射比濁法檢測IgG、IgM和C反應(yīng)蛋白（C-reactive protein，CRP）的抗干擾能力，當(dāng)Hb為9.9、29.8 μmol/L時對免疫散射比濁法有明顯干擾，而對免疫透射比濁法均無明顯干擾。劉蕊等[5]的研究結(jié)果顯示，Hb濃度越高，免疫透射比濁法檢測尿白蛋白時受干擾的程度越高。

1.2 黃疸

膽紅素對免疫透射比濁法的干擾主要是由膽紅素及其衍生物在特定波長下產(chǎn)生的本底對反應(yīng)A值的干擾引起的。膽紅素遇光和熱不穩(wěn)定，可生成膽綠素、膽褐素等衍生物，在360 nm及600～900 nm處形成新的吸收峰，造成吸收曲線漂移，因此雙波長分析對消除本底的效果有時會不理想[6]。

不同的商品化試劑盒抗膽紅素干擾的能力不同[7-9]。采用免疫透射比濁法和免疫散射比濁法檢測IgG、IgM和CRP時，膽紅素對這2種方法均無明顯干擾[2]。劉蕊等[5]的研究結(jié)果顯示，膽紅素對免疫透射比濁法和免疫散射比濁法檢測尿白蛋白均呈明顯正干擾，當(dāng)尿膽紅素濃度為16.85 μmol/L（相當(dāng)于“1+”）時，對免疫透射比濁法的干擾率為22.94%，對免疫散射比濁法的干擾率為15.11%。另外，SIMONSON等[10]的研究結(jié)果顯示，膽紅素可干擾兔抗人單抗，而對鼠抗人單抗無影響。

1.3 脂血

有脂濁的血清樣本中含有大量的乳糜微粒和極低密度脂蛋白，其對檢測結(jié)果的干擾主要是由于乳糜微粒具有光散射的特性，會產(chǎn)生濁度，從而影響反應(yīng)的A值或使產(chǎn)物的顏色發(fā)生變化。分光光度比色法、免疫透射比濁法、免疫散射比濁法均會受脂濁的影響，且受干擾的程度與濁度相關(guān)。

有研究結(jié)果顯示，當(dāng)檢測IgG、IgM和CRP時，免疫透射比濁法對脂濁的抗干擾能力優(yōu)于免疫散射比濁法[2]。國秀芝等[7]比較了3種檢測胱抑素C（cystatin C，Cys C）的顆粒增強免疫透射比濁法試劑，以±10%為判斷標準，乳糜濁度≤6 200 FTU時，對試劑B、C均無明顯干擾；試劑A受干擾較明顯，僅在乳糜濁度≤1 240 FTU時無明顯干擾；對35份乳糜血清樣本采用高速離心處理后，檢測下層清亮血清，試劑C的所有檢測結(jié)果升高，符合預(yù)期；試劑B的結(jié)果有升有降，離心前后差異無統(tǒng)計學(xué)意義（P＞0.05）；試劑A的結(jié)果下降，較離心前平均降低8.31%；原因可能與試劑A抗體包被的微粒子顆粒的大小有關(guān)，或與外源性乳糜顆粒和內(nèi)源性乳糜微粒的成分及顆粒大小不同有關(guān)。

1.4 樣本性狀的識別與應(yīng)對策略

目前，對樣本性狀的識別方法主要為肉眼識別或儀器自動檢測血清指數(shù)。肉眼識別的方式依賴實驗室檢測人員的主觀判斷，不能定量，樣本量較大時易疏漏，因此有較大缺陷。若采用血清指數(shù)方式識別樣本性狀，應(yīng)關(guān)注血清警告指數(shù)的設(shè)置。儀器和試劑廠商也應(yīng)在試劑說明書中提供更多關(guān)于血清指數(shù)和警告指數(shù)的信息來幫助臨床[11]。表1中列舉了15項常用的免疫透射比濁法項目（均為儀器配套試劑）在AU5800和cobas c701/c702全自動生化分析儀（簡稱cobas c701/c702，瑞士羅氏公司）上血清指數(shù)的警告指數(shù)設(shè)置，對于開放檢測系統(tǒng)，各實驗室應(yīng)進行干擾實驗來自行設(shè)置相關(guān)參數(shù)。

表1 15項免疫透射比濁法項目在2種檢測系統(tǒng)上的血清性狀警告指數(shù)的設(shè)置

溶血是臨床不合格樣本最常見的類型。實驗室可以通過設(shè)置適當(dāng)?shù)母辈ㄩL或采用Hb單克隆抗體處理樣本來降低干擾，但此方法臨床較少應(yīng)用。如果用公式對結(jié)果進行校正，可能會引入新的誤差，所以一般不推薦采用公式校正[1，12]。重新采血可能會因患者采血困難等因素而無法實現(xiàn)，重新檢測也會造成結(jié)果報告時間的延遲。比較有效的方式可能是檢驗科與臨床溝通，結(jié)合溶血指數(shù)、患者的狀態(tài)、檢驗的目的、受影響的項目在臨床決策中的地位來決定暫時采用這個受影響的結(jié)果，擇期重新采血還是立即采血復(fù)查[1，13]。

對于黃疸引起的干擾，臨床實驗室?？赏ㄟ^設(shè)置合適的副波長，或?qū)颖具M行預(yù)稀釋來減少黃疸對檢驗結(jié)果的干擾。

目前常見的去除乳糜的方法有：血清稀釋法、生理鹽水稀釋法、高速離心法、磷鎢酸-鎂法、聚乙二醇法、乙醚萃取法、脂質(zhì)清除劑法等[14]。HUNSAKER等[15]在3種測定銅藍蛋白的檢測系統(tǒng)上評價了高速離心法、脂質(zhì)清除劑法和去離子水1∶5稀釋法3種方法去除乳糜的效果，結(jié)果顯示，高速離心法去除乳糜的效果最優(yōu)；脂質(zhì)清除劑法效果居中，但有脂質(zhì)清除不完全的情況；稀釋法效果稍差，尤其對于低值樣本，稀釋后可能低于分析下限，但操作最簡便。HUNSAKER等[16]提示廠商提供的脂血指數(shù)是采用大豆來源的脂肪乳作為乳糜添加劑，由于人類脂蛋白種類的多樣性，內(nèi)源性的乳糜對應(yīng)的脂血指數(shù)與廠商提供的脂血指數(shù)不一致，因此在采用廠商提供的脂血指數(shù)作為警告指數(shù)時應(yīng)引起注意。

針對溶血、黃疸和脂血的干擾，實驗室應(yīng)因地制宜，選擇可行的方案來糾正干擾。

2 內(nèi)源性干擾

內(nèi)源性干擾對免疫檢測的干擾常被忽視和低估，尤其是在使用全自動生化分析儀或免疫分析儀進行檢測時，檢測量非常大，很難被識別，往往在臨床醫(yī)生反饋檢測結(jié)果與臨床表現(xiàn)不符時才會被發(fā)現(xiàn)。有患者因RF干擾導(dǎo)致促甲狀腺激素假性升高，被誤診為甲狀腺功能減低，進行了數(shù)年的治療[17]。目前研究較多的內(nèi)源性干擾物質(zhì)有RF、嗜異性抗體、人抗動物抗體、自身抗體、M蛋白等。

2.1 RF

RF是目前常見的干擾免疫透射比濁法的內(nèi)源性干擾物質(zhì)。RF是1種抗人或動物IgG分子Fc片段抗原決定簇的抗體，是以變性IgG為靶抗原的自身抗體，也可認為是一種廣義的嗜異性抗體。70%～80%的類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎患者、一些其他結(jié)締組織病患者[18]、5%的健康人均可出現(xiàn)RF水平升高[19]。RF主要為IgM型，但也有IgG、IgA、IgD和IgE型。RF對雙抗體夾心法的干擾比較常見，可干擾多種免疫檢測項目，如激素[17]、心肌標志物[20]、腫瘤標志物[21]、病原標志物[22]、藥物[23]等。

RF對免疫透射比濁法的干擾機制主要為RF與試劑2中包被抗體的膠乳顆粒發(fā)生非特異聚集反應(yīng)，造成反應(yīng)體系的濁度增加。OHTAKE等[24]的研究結(jié)果顯示，RF對血清CRP檢測有正干擾?；|(zhì)金屬蛋白酶3（matrix metalloproteinase-3，MMP-3）是類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎的一個標志物。KITAAKI等[25]的研究結(jié)果顯示，患者樣本中的RF、M蛋白、嗜異性抗體會干擾MMP-3的檢測。黃佳芝等[26]報道了1例RF干擾Cys C測定的病例，該患者尿素、肌酐結(jié)果均在參考區(qū)間內(nèi)，Cys C異常升高；RF的檢測結(jié)果為2 690 IU/mL（試劑說明書提示RF≤1 200 IU/mL對檢測結(jié)果無明顯干擾）；采用試劑A檢測時，Cys C結(jié)果為負值，0.9%氯化鈉溶液4倍稀釋后Cys C結(jié)果仍異常升高（16.6 mg/L），而試劑B的Cys C檢測結(jié)果為0.70 mg/L，4倍稀釋后結(jié)果為0.76 mg/L，未受到RF干擾。因此，試劑中是否添加足夠的抗RF抗體直接影響其抗RF干擾的能力。

2.2 嗜異性抗體

嗜異性抗體是由已知或未知抗原刺激人體產(chǎn)生的一類具有足夠滴度、能與多個物種的Ig發(fā)生相對弱結(jié)合的多重特異性Ig。采用免疫學(xué)方法的檢測試劑使用的抗體大多為動物來源，嗜異性抗體可與多種動物Ig的Fc或Fab表位非特異性結(jié)合。嗜異性抗體干擾免疫學(xué)檢測的機制為：（1）嗜異性抗體可同時結(jié)合標記抗體和捕獲抗體，使檢測結(jié)果假性升高；（2）嗜異性抗體分別結(jié)合捕獲抗體或標記抗體，干擾反應(yīng)中抗原的識別，使檢測結(jié)果假性降低[27]。嗜異性抗體可影響所有類型的免疫測定方法。在免疫透射比濁法試劑中，一般在試劑2中含有包被檢測抗體的膠乳顆粒，嗜異性抗體可結(jié)合該檢測抗體，發(fā)生聚集反應(yīng)，使?jié)岫壬?，對檢測造成正干擾。

2.3 人抗動物抗體

人抗動物抗體是一種高親和力的特異性多克隆抗體，一般具有明確的動物血清接觸史或是使用了動物來源的生物制劑等，包括人抗鼠抗體、人抗兔抗體等，主要為IgG或IgM型。人抗動物抗體可視為一種廣義的嗜異性抗體。通常所指的嗜異性抗體針對的抗原不確定，并且與抗原結(jié)合較弱，而人抗動物抗體針對特定的動物抗原，并且與靶抗原親和力較高。人抗動物抗體對于免疫學(xué)檢測方法的干擾機制與嗜異性抗體基本相同。當(dāng)試劑中抗體的動物來源與患者血清中人抗動物抗體針對的動物來源一致時，這種干擾更為明顯，如在心肌肌鈣蛋白的檢測中，人抗小鼠抗體是一個重要的干擾來源[28]。有研究結(jié)果顯示，在用酶聯(lián)免疫吸附試驗和免疫濁度法檢測患者D-二聚體時，酶聯(lián)免疫吸附試驗的檢測結(jié)果低于診斷臨界值，而免疫濁度法的檢測結(jié)果高于診斷臨界值，原因是患者血清中存在人抗鼠抗體，干擾了免疫濁度法的檢測，造成假陽性的結(jié)果[29]。

2.4 自身抗體

自身抗體主要干擾對應(yīng)的自身抗原的檢測，如抗胰島素抗體可干擾胰島素的檢測[30]，抗心肌肌鈣蛋白I（cardiac troponin I，cTnI）抗體可干擾cTnI的檢測[31]。這些項目大多采用化學(xué)發(fā)光法，尚無免疫透射比濁法檢測試劑，因此相關(guān)的干擾報道較少見。RF是一種自身抗體，也可視為一種廣義的嗜異性抗體，其造成的干擾在前文已提及。

2.5 M蛋白

M蛋白是由漿細胞或B淋巴細胞單克隆惡性增殖產(chǎn)生的一種異常Ig。M蛋白可在特定條件下形成沉淀，干擾分光光度比色法、比濁法和免疫學(xué)檢測方法。M蛋白可對血糖、γ-谷氨?；D(zhuǎn)移酶、總膽紅素、高密度脂蛋白膽固醇、CRP、Ig等項目[30-33]以及凝血功能實驗[34]、藥物檢測[35]等產(chǎn)生明顯干擾。

沈敏娜等[33]評價了M蛋白對24種常規(guī)生化項目的干擾，提示M蛋白對CRP的干擾程度與M蛋白濃度無關(guān)，而CRP濃度越高，負干擾越嚴重。M蛋白干擾出現(xiàn)的頻率與M蛋白濃度和類型相關(guān)，干擾常見于lgG λ和κ型，且M蛋白濃度越高，出現(xiàn)干擾的頻率越高。干化學(xué)分析儀檢測不受M蛋白的干擾，可作為復(fù)檢的選擇，也可用0.9%氯化鈉溶液稀釋的方法去除M蛋白干擾。SMOGORZEWSKA等[32]發(fā)現(xiàn)M蛋白干擾主要發(fā)生在反應(yīng)的第1步，即試劑1與含M蛋白的血清樣本發(fā)生沉淀反應(yīng)，形成濁度，造成終點法的A值升高，產(chǎn)生正干擾（如總膽紅素），或造成兩點法的本底過高，產(chǎn)生負干擾（如高密度脂蛋白膽固醇）；而用稀釋的方式只能部分糾正M蛋白對反應(yīng)的干擾，因此嘗試在膽紅素反應(yīng)曲線的第12和14點設(shè)置A值報警提示參數(shù)，如果此2點的A值＞0.035則報警提示[32]。該思路也可用于免疫透射比濁法，但常規(guī)實驗室自行設(shè)置參數(shù)有一定難度，如果儀器或試劑廠商能提供這樣的參數(shù)將有助于臨床實驗室識別M蛋白的干擾。某些試劑廠商也嘗試調(diào)節(jié)試劑pH值和離子強度來減少蛋白沉淀，或添加表面活性劑來促進蛋白質(zhì)溶解[36]，但并不能完全消除M蛋白的影響。有研究結(jié)果顯示，相對于免疫散射比濁法，免疫透射比濁法受M蛋白干擾更明顯，其原因可能是免疫散射比濁法在檢測前先對樣本進行預(yù)稀釋，降低了M蛋白的干擾[37]。

2.6 內(nèi)源性干擾的識別與應(yīng)對策略

內(nèi)源性抗體或Ig干擾可導(dǎo)致多種生化、免疫項目出現(xiàn)錯誤結(jié)果，為臨床的診斷、治療提供錯誤信息，因此實驗室應(yīng)關(guān)注文獻報道過的受干擾項目或方法，注重與臨床的溝通，同時在下列情況中應(yīng)考慮是否有內(nèi)源性抗體或Ig的干擾：（1）臨床反饋患者的檢測結(jié)果與臨床表現(xiàn)不符合；（2）同時檢測的臨床意義相似的幾個指標，結(jié)果不符合，如肌酐、尿素正常，Cys C明顯升高；（3）患者近期有接受單克隆抗體藥物治療、輸血等；（4）患者有自身免疫性疾病史等。

當(dāng)懷疑有內(nèi)源性干擾時，可以采取以下措施進行確認和糾正：（1）0.9%氯化鈉溶液倍比稀釋，觀察待測物濃度是否呈線性。但即使稀釋后結(jié)果呈線性，也不能完全排除內(nèi)源性抗體或Ig的干擾[38]；（2）采用不同檢測系統(tǒng)進行復(fù)檢，但當(dāng)檢測結(jié)果一致時，也不能完全排除，有可能都受到干擾；（3）直接檢測可能產(chǎn)生干擾的內(nèi)源性Ig，如RF、M蛋白等；（4）在樣本中加入待測物，進行回收實驗；（5）采用相應(yīng)的抗體阻斷劑，如檢測前在樣本中加入動物血清、動物源Ig或商品化封閉劑[20]等；（6）采用聚乙二醇對樣本進行前處理，去除沉淀后再進行檢測[39]。

臨床實驗室應(yīng)注意以上措施并不能完全消除內(nèi)源性干擾。隨著技術(shù)的進步，檢測系統(tǒng)的改進也是一個重要的趨勢。免疫透射比濁法試劑可通過調(diào)整試劑1的pH值至3～4，或添加1～40 g/L N-羥基琥珀酰亞胺來降低RF的干擾，有的廠商在試劑1中添加抗RF抗體來結(jié)合RF，以降低干擾。試劑生產(chǎn)廠商應(yīng)在試劑說明書中標明可能造成干擾的內(nèi)源性干擾因素及抗干擾能力，以便給臨床實驗室更多的提示。另外，方法學(xué)的改進也是一個重要的方向，如質(zhì)譜法的檢測特異性高，受交叉反應(yīng)的干擾較小，但不適合高通量檢測的需求。

3 檢測中的鉤狀效應(yīng)

3.1 鉤狀效應(yīng)

在抗體量恒定的溶液中加入抗原，免疫復(fù)合物的生成量隨著抗原量的增加而增加，當(dāng)達到峰值之后，則隨著抗原量的增加而減少，這一現(xiàn)象被稱為鉤狀效應(yīng)，通常將抗體過量現(xiàn)象稱為前帶現(xiàn)象，抗原過量則稱為后帶現(xiàn)象。當(dāng)待測物濃度過高時，免疫散射比濁法和免疫透射比濁法均可能出現(xiàn)檢測結(jié)果假性降低。鉤狀效應(yīng)是影響其結(jié)果準確性的一個重要因素。楊杰等[40]分析了13個免疫散射比濁項目和14個免疫透射比濁項目，其中RF、心型脂肪酸結(jié)合蛋白、高敏C反應(yīng)蛋白（high-sensitivity C-reactive protein，hs-CRP）、CRP的臨床可見最高值可超出參考區(qū)間上限的100倍，β2-微球蛋白、RF、視黃醇結(jié)合蛋白（retinol-binding protein，RBP）、脂蛋白（a）濃度常超出分析測量范圍上限，因此這些項目具有較高的發(fā)生鉤狀效應(yīng)的風(fēng)險，需引起關(guān)注。尿微量白蛋白（microalbumin，mAlb）濃度也經(jīng)常超出分析測量上限[41]。楊杰等[42]對ASO、mAlb、hs-CRP、β2-微球蛋白、RBP和Cys C 6個項目分別用5種免疫透射比濁法試劑盒進行檢測，結(jié)果顯示，不同試劑盒的抗原過量安全范圍差異很大，部分試劑盒受鉤狀效應(yīng)影響嚴重。試劑盒的性能與添加抗體的濃度有關(guān)，抗體濃度越高，所能檢出的抗原濃度越高，提高試劑配方中的抗體濃度是減少鉤狀效應(yīng)的方案之一，但會增加試劑成本。

3.2 鉤狀效應(yīng)的識別與應(yīng)對策略

目前，針對鉤狀效應(yīng)常用的解決方案一般有3種。（1）樣本預(yù)稀釋：如瑞士羅氏公司、德國西門子公司的檢測系統(tǒng)中有部分項目采用此方法，將樣本進行10～21倍預(yù)稀釋，該對高濃度樣本可有效減少鉤狀效應(yīng)，但稀釋會引入更多的分析前變異，對于低濃度樣本，稀釋會影響結(jié)果的準確性[40]；（2）抗原或抗體的二次添加：即在反應(yīng)過程中再次加入一定量的試劑（抗體）或樣本（抗原），隨著反應(yīng)的進行，根據(jù)時間-反應(yīng)進程曲線是否發(fā)生改變、拐點的上升或下降來判斷是否存在抗原過量[40]，如有過量，再進行稀釋?？乖渭尤敕ㄏ鄬^常用，瑞士羅氏公司的檢測系統(tǒng)檢測mAlb即采用此方法。但此方法會相對增加試劑成本，也會降低反應(yīng)速度；（3）反應(yīng)曲線特征識別和報警：根據(jù)不同項目的抗原-抗體反應(yīng)動力學(xué)特征，在反應(yīng)曲線的特定時間點監(jiān)測生成的免疫復(fù)合物的A值，計算反應(yīng)不同時段的A值變化的比值，與預(yù)設(shè)的參數(shù)進行比較，自動識別鉤狀效應(yīng)。瑞士羅氏公司、美國貝克曼庫爾特公司、深圳邁瑞公司的封閉檢測系統(tǒng)部分項目均可提供參數(shù)采用此方式進行報警，對于開放檢測系統(tǒng)，臨床實驗室可通過預(yù)實驗結(jié)果在生化分析儀上自行設(shè)置參數(shù)來對鉤狀效應(yīng)進行識別和報警[40-44]。

4 其他干擾因素

其他可能影響免疫透射比濁法的因素包括攜帶污染、藥物等。另外，隨著生物制劑應(yīng)用的增多，一些單抗類藥物可能直接對免疫學(xué)檢測方法產(chǎn)生影響，或使人體產(chǎn)生嗜異性抗體，干擾免疫學(xué)檢測方法。

5 總結(jié)

樣本性狀、內(nèi)源性干擾、鉤狀效應(yīng)以及藥物等各種干擾因素是影響免疫透射比濁法檢測結(jié)果準確性的重要因素之一。從臨床實驗室的角度來說，檢驗人員應(yīng)關(guān)注和了解這些因素，重視與臨床的溝通。從試劑生產(chǎn)廠商的角度來說，應(yīng)在試劑說明書中提示該項目可能存在的干擾因素并提供解決方案。隨著檢測技術(shù)的進步，抗干擾試劑盒的開發(fā)，檢測方法的更新?lián)Q代，臨床檢測中的干擾問題會逐步得到解決。