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      福爾馬林固定石蠟包埋標本二代測序終文庫去除引物二聚體的方法

      2021-04-25 03:24:28張科平林丹義朱小蘭駱新蘭
      臨床與實驗病理學雜志 2021年3期
      關鍵詞:建庫文庫石蠟

      許 潔,張科平,林丹義,陳 潔,朱小蘭,駱新蘭

      二代測序(next generation sequencing, NGS)技術能夠同時對上百萬乃至數(shù)十億個DNA分子進行測序,相較于傳統(tǒng)測序技術,其速度較快、一次可檢測大量靶基因,因而廣泛應用于染色體非整倍體無創(chuàng)產(chǎn)前篩查、腫瘤靶向治療基因突變檢測、遺傳性腫瘤檢測、病原微生物及宏基因組檢測等領域。影響NGS結(jié)果的限制性因素包括:平臺類別、靶區(qū)域富集方法、文庫構建及擴增效率、測序數(shù)據(jù)量、生物信息學分析流程等。NGS流程主要包括3個部分:文庫制備、測序和數(shù)據(jù)分析,建庫是NGS實驗第一步,終文庫質(zhì)量的好壞直接影響后續(xù)測序儀上機實驗及數(shù)據(jù)分析。目前常用的建庫方法有雜交捕獲和擴增子建庫,無論哪種建庫方法都會運用PCR方法,引物二聚體是PCR實驗過程中引物的3′端間相互錯配擴增形成的,若終文庫引物二聚體含量高,占用測序數(shù)據(jù)量,直接影響測序數(shù)據(jù)質(zhì)量。如何有效去除引物二聚體,同時不影響終文庫質(zhì)量,是眾多實驗者考慮的問題,本實驗應用AMPureXP beads對福爾馬林固定石蠟包埋標本終文庫引物二聚體進行純化,得到較滿意的結(jié)果,現(xiàn)介紹如下。

      1 材料與方法

      1.1 主要儀器與試劑石蠟標本DNA提取試劑盒QIAamp DNA FFPE Tissue Kit(德國,Qiagen,56404),人多基因突變檢測通用試劑盒(燃石醫(yī)學,RS03F-12),人多基因突變檢測捕獲探針-朗克(燃石醫(yī)學,RS010-12,V3),人多基因突變檢測捕獲探針-凱康(燃石醫(yī)學,RS032-12,V2),DNA 1000 Reagents(Agilent,5067-1504),QUBIT dsDNA HS Assay(Life,Q32856),AMPureXP beads(Beckman,A63882),人類EGFR基因突變檢測試劑盒(廈門艾德生物公司,8.0120201 W012B),人類KRAS基因突變檢測試劑盒(廈門艾德生物公司,8.0120102W006B);高通量測序儀(美國,Illumina,MiSeqDx),生物分析儀(美國,Agilent,2100),核酸定量儀(美國,Life,Qubit 4.0),熒光定量PCR儀(美國,Roche,LightCycler480)。

      1.2 標本來源選取廣東省人民醫(yī)院病理科2019年9~11月存檔的41例福爾馬林固定石蠟包埋標本,均為手術大標本,其中24例結(jié)直腸癌,17例肺癌,男性24例,女性17例,平均年齡(54.83±10.51)歲。

      1.3 方法

      1.3.1DNA提取 10 μm厚組織切片8張,切片貼于干凈的玻片上。二甲苯脫蠟至水后,按照HE染色片所選取的腫瘤區(qū)域,小心用無菌刀片將腫瘤組織刮入1.5 mL EP管中。應用石蠟組織DNA抽提試劑盒QIAamp DNA FFPE Tissue Kit提取DNA。

      1.3.2NGS建庫實驗 應用人多基因突變檢測通用試劑盒建庫,根據(jù)不同癌種選擇不同探針建庫(肺癌選用朗克,結(jié)直腸癌選用凱康)。最后得到20 μL終文庫,對其進行質(zhì)控:使用核酸定量儀(美國,Life,Qubit 4.0)對其濃度進行定量,使用生物分析儀(美國,Agilent,2100)對其片段進行評估,此建庫方法加接頭文庫FFPE DNA的片段主要分布在300~500 bp。

      1.3.3終文庫引物二聚體去除 挑取其中12例引物二聚體峰高度超過主峰1/3高度的終文庫,使用AMPureXP beads(Beckman,A63882)對其進行純化:加入1.8倍終文庫體積的XP磁珠,將文庫DNA片段與磁珠結(jié)合,用70%的乙醇洗2次磁珠(吸附DNA片段),去除污染物,最后加入初始體積一半的溶解緩沖液(elution buffer, EB)即 10 μL 溶解純化后的文庫,對該純化后的終文庫進行質(zhì)控:使用核酸定量儀對其濃度進行定量,使用生物分析儀對其片段進行評估。

      1.3.4NGS上機 根據(jù)MiSeqDx高通量測序儀標準操作流程操作,對下機數(shù)據(jù)進行質(zhì)控。

      1.3.5運用突變擴增阻滯系統(tǒng)(amplificationrefractorymutationsystem,ARMS)-PCR驗證 使用廈門艾德生物公司的EGFR及KRAS突變檢測試劑盒對12例終文庫使用AMPure XP beads純化的標本進行驗證,ARMS-PCR實驗嚴格按試劑說明書操作。

      1.4 統(tǒng)計學分析所有數(shù)據(jù)應用SPSS 18.0軟件進行統(tǒng)計學分析,兩組間比較采用χ2檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果

      12例終文庫經(jīng)過純化,2100生物分析儀結(jié)果顯示,均有效去除引物二聚體,且主峰位置、主峰熒光響應值變化不大,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05,表1,圖1),核酸定量儀對其濃度進行定量,均在可實驗范圍內(nèi),差異無統(tǒng)計學意義(χ2=2.420,P=0.120,P>0.05,表1),上機數(shù)據(jù)質(zhì)控通過,使用ARMS-PCR法對EGFR基因和KRAS基因常見突變進行驗證,結(jié)果相符。

      表1 終文庫二次純化前、后濃度及主峰位置、熒光響應值對比,主要質(zhì)控參數(shù)及測序結(jié)果

      圖1 (例9)樣本終文庫純化前后生物分析儀2100電泳結(jié)果圖:A.純化前;B.純化后

      3 討論

      NGS可以利用少量樣本獲得多基因、多位點的突變信息,并利用這些突變信息為患者選擇合適的靶向治療,同時發(fā)現(xiàn)更多未經(jīng)報道的新的基因突變類型,為新的靶向藥物研發(fā)提供依據(jù)[1]。通過多基因檢測可以實現(xiàn)在病程早期接受特異的針對性治療,減少毒副作用,提高治療效果,對臨床加快有效篩選目標人群有重要意義[2]。影響NGS實驗結(jié)果的因素很多,本實驗采用國家藥品監(jiān)督管理局(NMPA)批準的建庫試劑盒,遵照相關技術規(guī)范,使得樣本預處理至文庫構建、測序、質(zhì)控的技術標準化,形成一套NGS技術可行性SOP。測序文庫的質(zhì)控是標準化流程的第一步,如果文庫質(zhì)控數(shù)據(jù)差,應及早終止實驗。在常規(guī)病理診斷中,腫瘤標本通常以福爾馬林固定石蠟包埋形式加以保存,其會引起DNA的片段化以及交聯(lián)反應[3]?;谑灲M織本身的特性,在建庫過程中難免會形成引物二聚體,影響終文庫質(zhì)量,如何有效去除引物二聚體,保證有效測序數(shù)據(jù)量的產(chǎn)出是福爾馬林固定石蠟包埋樣本建庫必須考慮的問題之一。作者發(fā)現(xiàn)引物二聚體峰一般出現(xiàn)在100 bp以內(nèi),采用AMPureXP法可以提取大于100 bp PCR產(chǎn)物,去除小于50 bp的引物,故而本實驗選用AMPureXP試劑,根據(jù)說明書建議,加入1.8倍終文庫體積的XP磁珠,考慮到實驗過程中會有損耗,使用初始體積一半量的EB溶解純化后的文庫,生物分析儀電泳結(jié)果圖顯示,該方法可以很好地去除終文庫引物二聚體,核酸定量儀測定純化后與純化前的文庫濃度差異無統(tǒng)計學意義。由于有效數(shù)據(jù)量及數(shù)據(jù)比對情況對分析結(jié)果準確性影響較大,所以在數(shù)據(jù)分析之前,需要對數(shù)據(jù)產(chǎn)出量、比對情況、測序深度、覆蓋度及測序均一性等指標進行統(tǒng)計,以確定數(shù)據(jù)的質(zhì)量及分析結(jié)果的可靠性[4]。序列回貼比率是指成功比對回到參考基因組的序列數(shù)目占比,可以反映數(shù)據(jù)的比對情況,12例文庫的序列回貼比率均達到100%;測序深度是指目標基因每個堿基被測到的次數(shù),是評價測序質(zhì)量的指標之一,有效測序深度是指去除PCR重復讀取之后的深度,80%以上的目標捕獲區(qū)域應達到這個深度,中國腫瘤驅(qū)動基因分析聯(lián)盟(CAGC)建議,臨床腫瘤組織樣本的NGS檢測數(shù)據(jù)中測序有效深度應達500倍以上[5],本實驗12例文庫的測序有效深度在508~1 171倍,滿足實驗要求;插入片段長度是指DNA文庫插入片段長度的中位數(shù),體現(xiàn)了原始DNA片段的長度分布,組織樣本如果<170 bp則提示DNA存在降解,可能會引入由于DNA損傷造成的假陽性,12例純化后的終文庫插入片段長度在179~262 bp,在可實驗范圍內(nèi)。綜上所述,本組12例采用AMPureXP磁珠進行純化的文庫相應的測序數(shù)據(jù)質(zhì)控均通過,從側(cè)面證明該純化方法的可行性。利用ARMS-PCR法對12例經(jīng)過純化處理的終文庫EGFR、KRAS基因常見突變進行驗證,結(jié)果幾乎完全符合,僅1例由于ARMS試劑將19種EGFR的19號外顯子缺失類型混合在1個孔進行檢測,僅能檢出19號外顯子缺失而無法區(qū)分具體的缺失類型。

      總之,本實驗應用AMPureXP beads對福爾馬林固定石蠟包埋標本終文庫進行純化,既可以很好地去除引物二聚體,又幾乎不影響測序質(zhì)量,筆者認為可以在臨床推廣,提高NGS實驗的成功率,避免重復實驗,縮短報告時間,節(jié)約測序費用,使得更多的患者受益。

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