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    鐵氨基黏土-葡萄糖氧化酶納米復(fù)合催化劑的構(gòu)筑及多酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)研究

    2021-03-18 15:10:20孫仕勇GOLUBEVYevgenyAleksandrovich董發(fā)勤KOTOVAOlgaBorisovnaKOTOVAElenaLeonidovna
    關(guān)鍵詞:葡萄糖氧化酶級(jí)聯(lián)催化活性

    李 柳,孫仕勇,呂 瑞,GOLUBEV Yevgeny Aleksandrovich,王 可,董發(fā)勤,段 濤,KOTOVA Olga Borisovna,KOTOVA Elena Leonidovna

    (1.西南科技大學(xué)環(huán)境與資源學(xué)院,綿陽(yáng)621000;2.俄羅斯科學(xué)院烏拉爾分院科米科學(xué)中心尤什金地質(zhì)研究所,瑟克特夫卡爾167982,俄羅斯;3.西南科技大學(xué)國(guó)防科學(xué)技術(shù)學(xué)院,綿陽(yáng)621000;4.圣彼得堡國(guó)立礦業(yè)大學(xué),圣彼得堡199106,俄羅斯)

    酶是一類由活細(xì)胞產(chǎn)生,具有高催化活性和特異性的蛋白質(zhì)或RNA,廣泛參與機(jī)體中的各種代謝反應(yīng)[1,2].由于體內(nèi)的眾多代謝反應(yīng)通常需要多酶協(xié)同/級(jí)聯(lián)催化,因此,體外構(gòu)筑多酶協(xié)同/級(jí)聯(lián)催化體系將有助于深入研究體內(nèi)生化反應(yīng),并為新型生物催化劑的構(gòu)筑提供幫助[3,4].但是,天然酶在體外易受到高溫、極端pH和高離子強(qiáng)度等影響而失活,而且天然酶成本高,使用后難以回收利用[5,6],因此限制了其規(guī)?;瘧?yīng)用.酶固定化技術(shù)是提高其穩(wěn)定性和重復(fù)利用性的有效手段[7~9].將天然酶通過(guò)吸附[10,11]、包埋[12,13]和交聯(lián)[14,15]等方法負(fù)載到載體上,可以提高其在環(huán)境中的耐受性,從而擴(kuò)大其應(yīng)用范圍.Pandey等[16]將葡萄糖氧化酶(GOx)共價(jià)固定在硫醇化的金納米顆粒上,測(cè)試結(jié)果表明,固定后的GOx對(duì)pH和溫度的耐受性均有所提高.Kim等[17]分別通過(guò)吸附和戊二醛交聯(lián)將α-胰凝乳蛋白酶和脂肪酶固定在介孔二氧化硅(HMMS)中,儲(chǔ)存14 d后酶活性無(wú)明顯降低.

    納米酶是一類蘊(yùn)含酶學(xué)特性的納米材料[18,19],與天然酶一樣,能夠在溫和條件下催化底物轉(zhuǎn)化,且比天然酶更加穩(wěn)定,即使在強(qiáng)酸、強(qiáng)堿和高溫等極端環(huán)境下也能保持較高的催化活性[20,21].以納米酶為載體固定天然酶,不僅可以提高天然酶在極端環(huán)境下的穩(wěn)定性,還可以利用納米酶的催化活性與天然酶結(jié)合進(jìn)行級(jí)聯(lián)反應(yīng)[22].近年來(lái),碳基材料[23]、金屬納米粒子[24,25]和金屬氧化物[26,27]等納米材料已被廣泛用于構(gòu)建多酶級(jí)聯(lián)催化體系.Zhong等[28]將葡萄糖氧化酶(GOx)固定在金屬有機(jī)骨架[MOF-545(Fe)]上得到GOx@MOF-545(Fe),構(gòu)建了一種模擬辣根過(guò)氧化物酶-葡萄糖氧化酶(HRP-GOx)的級(jí)聯(lián)反應(yīng)體系,研究發(fā)現(xiàn),該體系不僅表現(xiàn)出了優(yōu)異的催化穩(wěn)定性和重復(fù)使用性,還能作為快速檢測(cè)葡萄糖的比色傳感器,對(duì)葡萄糖的檢測(cè)限低至0.28μmol/L.Jung等[29]將尿酸氧化酶(UOX)與金納米顆粒(AuNP)結(jié)合進(jìn)行級(jí)聯(lián)反應(yīng),該UOX-AuNP級(jí)聯(lián)系統(tǒng)可利用AuNP的過(guò)氧化物酶活性消除具有潛在細(xì)胞毒性的H2O2,并對(duì)尿酸的降解速度比單獨(dú)使用UOX快5倍以上,從而可用于高尿酸血癥的治療.

    氨基黏土是一類人工合成的具有層狀結(jié)構(gòu)的有機(jī)黏土礦物[30],其最大特點(diǎn)是能夠通過(guò)氨基質(zhì)子化在水中自主剝落成單片,而在乙醇等極性較小的溶劑中又可恢復(fù)為堆疊狀態(tài)[30,31].剝落的單片可進(jìn)一步通過(guò)超聲處理獲得納米級(jí)黏土單元,并具有很強(qiáng)的與生物分子(脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和DNA)相互作用的能力,可用于制備高穩(wěn)定性的功能化雜化材料[32,33].由于氨基黏土易于制備且毒性低,目前已廣泛用作載體材料和吸附劑[34,35].Kim等[36]制備了鎂氨基黏土并用于吸附紡織品陰離子染料活性紅120(RR120),結(jié)果表明,其吸附動(dòng)力學(xué)遵循準(zhǔn)二級(jí)Langmuir等溫方程模型,最大吸附量可達(dá)229.9 mg/g,是目前文獻(xiàn)報(bào)道的最高值.Liu等[37]將葡萄糖氧化酶固定在鎂氨基黏土納米片基質(zhì)中得到葡萄糖氧化酶/鎂氨基黏土(GOD/AMP)復(fù)合物,再與納菲薄膜結(jié)合構(gòu)建了葡萄糖生物傳感器,研究結(jié)果表明,固定在AMP中的GOD保持了生物活性,并促進(jìn)了GOD在玻碳電極表面的直接電子轉(zhuǎn)移,GOD/AMP復(fù)合修飾電極對(duì)溶解氧和葡萄糖均表現(xiàn)出靈敏的電催化響應(yīng).2013年,Lee等[38]首次報(bào)道了鐵氨基黏土(FeAC)具有優(yōu)異的類過(guò)氧化物酶活性,其能夠催化過(guò)氧化氫氧化3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB),與天然HRP相比,F(xiàn)eAC在較寬的pH范圍內(nèi)具有更高的催化活性.

    本文以FeAC為載體,通過(guò)固定葡萄糖氧化酶構(gòu)筑了FeAC-GOx納米結(jié)構(gòu)酶.FeAC的存在不僅可以保護(hù)葡萄糖氧化酶的催化活性,而且能利用其本征的類過(guò)氧化物酶活性與葡萄糖氧化酶構(gòu)成級(jí)聯(lián)反應(yīng)體系,從而直接將葡萄糖轉(zhuǎn)化為羥自由基并觸發(fā)顯色反應(yīng).該納米結(jié)構(gòu)酶不僅穩(wěn)定性良好,而且具有優(yōu)異的催化活性和重復(fù)利用性,為新型葡萄糖傳感器的開發(fā)奠定了基礎(chǔ).

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 試劑與儀器

    3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES,純度98%)購(gòu)于上海麥克林生化科技有限公司;六水合三氯化鐵(FeCl3·6H2O,純度99%)、1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺鹽酸鹽(EDC,純度98%)、3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB,純度>99%)和葡萄糖購(gòu)于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;葡萄糖氧化酶(GOx,100 U/mg)和辣根過(guò)氧化物酶(HRP,250 U/mg)購(gòu)于合肥博美生物科技有限責(zé)任公司;考馬斯亮藍(lán)G250(純度>90%)購(gòu)于成都市科龍化工試劑廠;其它試劑均為分析純.

    X′Pert PRO型X射線衍射(XRD)儀,荷蘭帕納科公司;Spectrum One型傅里葉變換紅外光譜(FTIR)儀,美國(guó)PE儀器公司;ULTRA 55型200 kV場(chǎng)發(fā)射掃描電子顯微鏡(SEM),德國(guó)蔡司儀器公司;UV-2800A型紫外-可見(UV-Vis)分光光度計(jì),尤尼柯(上海)儀器有限公司;Zetasizer Nano ZS 90型馬爾文激光粒度儀,英國(guó)馬爾文儀器有限公司,

    1.2 實(shí)驗(yàn)過(guò)程

    1.2.1 FeAC的合成 室溫下,將FeCl3·6H2O(8.4 g,31.08 mmol/L)溶于200 mL乙醇溶液中,超聲分散10 min;逐滴加入13 mL APTES溶液(58.3 mmol/L),APTES與FeCl3·6H2O的摩爾比約為2∶1,形成棕色沉淀漿液;以600 r/min的轉(zhuǎn)速磁力攪拌12 h;反應(yīng)結(jié)束后,以6000 r/min的轉(zhuǎn)速離心5 min,用乙醇溶液清洗2次,除去多余的FeCl3·6H2O,烘干得到FeAC,備用.

    1.2.2 FeAC固定葡萄糖氧化酶 將EDC(25 mg)溶于10 mL磷酸鹽緩沖液(100 mmol/L,pH=7.0)中,配制成EDC溶液(質(zhì)量體積分?jǐn)?shù)0.25%).將0.3 g FeAC加入10 mL EDC溶液中,室溫下置于轉(zhuǎn)速為150 r/min的搖床中活化1 h,離心,用磷酸鹽緩沖液洗滌3次,除去殘余的EDC.

    向活化后的FeAC中加入10 mL葡萄糖氧化酶溶液(3 mg/mL),置于轉(zhuǎn)速為150 r/min的搖床中振蕩反應(yīng)3 h,于6000 r/min轉(zhuǎn)速下離心5 min,所得沉淀用PBS緩沖液清洗3次,除去未結(jié)合或結(jié)合不完全的酶;將制得的FeAC-GOx置于4℃冰箱中冷藏備用.FeAC-GOx的制備過(guò)程如Scheme 1所示.

    Scheme 1 Schematic of the preparation of FeAC-GOx composite

    1.2.3 酶固定化率的測(cè)定 采用Bradford法測(cè)定離心所得上層清液中蛋白質(zhì)的濃度,以牛血清蛋白(BSA)為標(biāo)準(zhǔn)蛋白繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,測(cè)定樣品上層清液中的蛋白含量,按下式計(jì)算酶固定化率E(%).

    式中:m0(mg)為固定化前酶蛋白總含量;m1(mg)為固定化后上層清液中酶蛋白的含量.

    1.2.4 酶活性的測(cè)定 采用H2O2-TMB顯色反應(yīng)測(cè)定FeAC-GOx和游離酶的活性.首先,將TMB(20 mg)溶于10 mL無(wú)水乙醇中,配制TMB溶液(2 mg/mL).將0.2 mL TMB溶液加入到1.8 mL PBS緩沖液(100 mmol/L,pH=7.0)中,再依次加入0.5 mL的葡萄糖溶液(100 mmol/L)和0.5 mL酶溶液(1 mg/mL);將混合物在37℃下溫育1 h,于8000 r/min轉(zhuǎn)速離心3 min,取上層清液用紫外-可見分光光度計(jì)在655 nm測(cè)量吸光度,每個(gè)樣品測(cè)量2~3次,取平均值;將每分鐘氧化1μmol葡萄糖為葡萄糖酸和過(guò)氧化氫的酶量定義為1個(gè)酶活(U/mg)單位.

    1.2.5 pH和溫度穩(wěn)定性測(cè)定 將FeAC-GOx和游離酶體系(GOx+HRP)分別在不同pH的磷酸緩沖液(pH=3.0~9.0,100 mmol/L)中放置5 h測(cè)定酶活性,考察其pH穩(wěn)定性.將FeAC-GOx和游離酶體系(HRP+GOx)在不同溫度(30~90℃)下溫育1 h,測(cè)定其酶活性,考察其溫度穩(wěn)定性.

    2 結(jié)果與討論

    2.1 材料的表征

    2.1.1 XRD及FTIR分析 由FeAC和FeAC-GOx的XRD譜圖[圖1(A)]可知,F(xiàn)eAC在2θ=5.3°[d(001)=1.65 nm]處出現(xiàn)衍射峰,這是層狀有機(jī)黏土結(jié)構(gòu)的典型特征峰;在2θ=26.6°[d(020)=d(110)=0.34 nm],2θ=34.6°[d(020)=d(110)=0.26 nm]處的平面內(nèi)反射寬峰強(qiáng)度很弱,是1∶1層狀硅酸鹽礦物([H2N(CH2)3]4·[Si4Fe6O8(OH)2],由1個(gè)硅氧四面體片和1個(gè)鐵氧八面體片結(jié)合而成)的特征峰[39].固定化GOx后,部分酶蛋白分子進(jìn)入到FeAC的層間,層間距相應(yīng)增加[d(001)=2.13 nm];通過(guò)Bradford法測(cè)得離心所得上層清液中GOx含量為7.6 mg,由式(1)計(jì)算出酶固定化率為76.4%,因此結(jié)合酶固定化率和FTIR表征結(jié)果可以推斷,GOx已固定在FeAC上.

    Fig.1 XRD patterns(A)and FTIR spectra(B)of FeAC(a)and FeAC-GOx(b)

    由FTIR圖[圖1(B)]可知,F(xiàn)eAC的譜線存在特征吸收峰Fe—O(697 cm-1),Si—O—Si(1040 cm-1),Si—O—C(1116 cm-1),—CH2彎曲振動(dòng)峰(1489 cm-1),—NH2彎曲振動(dòng)峰(1611 cm-1),—CH2(3042 cm-1)和—OH(3392 cm-1),與文獻(xiàn)[38]報(bào)道結(jié)果一致.FeAC在水溶液中剝落為單片后,片層上大量的—NH3+會(huì)與GOx上的—COOH基團(tuán)共價(jià)結(jié)合,形成穩(wěn)定的酰胺鍵(—CO—NH—).對(duì)于FeAC-GOx,酰胺Ⅰ鍵位于1653 cm-1處,主要來(lái)自C=O的伸縮振動(dòng),證實(shí)GOx以共價(jià)酰胺鍵負(fù)載到FeAC上[9,40,41].

    2.1.2Zeta電位及納米粒度分析Zeta電位是考察材料分散性與穩(wěn)定性的重要指標(biāo),分散粒子越小,Zeta電位絕對(duì)值越高,體系越穩(wěn)定.當(dāng)pH=7.0時(shí),F(xiàn)eAC,GOx和FeAC-GOx的Zeta電位分別為15.6,-4.23和-31.9,GOx的電位為負(fù)值,而FeAC由于具有高密度帶正電荷的氨基,電位為正值.當(dāng)GOx固定到FeAC上后,F(xiàn)eAC-GOx的電位為負(fù)值,且絕對(duì)值大于FeAC,表明FeAC表面固定了帶負(fù)電的GOx,導(dǎo)致電位發(fā)生變化,并且Zeta電位絕對(duì)值的增大表明FeAC-GOx在水溶液中比游離酶更加穩(wěn)定.以上結(jié)果表明,F(xiàn)eAC-GOx在水溶液中表現(xiàn)出良好的分散性,不易發(fā)生聚集沉淀,有助于其類酶活性的發(fā)揮.由圖2可見,當(dāng)pH=7.0時(shí),F(xiàn)eAC,GOx和FeAC-GOx的平均粒度分別為258.10,162.44和485.06 nm.通過(guò)粒度分析可知,固定GOx以后,F(xiàn)eAC-GOx的平均粒度增大,進(jìn)一步說(shuō)明GOx與FeAC形成了納米結(jié)構(gòu)復(fù)合物.

    Fig.2 Particle size distribution of Fe-aminoclay,GOx and FeAC-GOx dispersed in aqueous solution

    Fig.3 SEM images of FeAC(A)and FeAC-GOx(B)

    2.1.3 形貌分析 圖3示出了FeAC(A)和FeAC-GOx(B)的結(jié)構(gòu)和形貌特征,可見,F(xiàn)eAC表面平滑,具有明顯的片層結(jié)構(gòu)[圖3(A)],固定葡萄糖氧化酶后,F(xiàn)eAC表面變得粗糙[圖3(B)],說(shuō)明其表面均勻負(fù)載了GOx顆粒.

    2.2 FeAC-GOx的酶學(xué)特性

    2.2.1 溫度和pH對(duì)酶活性的影響 首先,考察了30~90℃下FeAC-GOx的催化穩(wěn)定性.由圖4(A)可見,當(dāng)溫度低于60℃時(shí),游離酶(GOx+HRP)活性較高;但隨著溫度的升高,游離酶活性逐漸降低,當(dāng)溫度升高至70℃時(shí),游離酶活性小于20%,而FeAC-GOx在70℃時(shí)仍保留了近60%的活性;當(dāng)溫度升高至90℃時(shí),游離酶已經(jīng)失去活性,而FeAC-GOx依然保持了40%的活性.由此說(shuō)明,F(xiàn)eAC-GOx的熱穩(wěn)定性高于游離酶.由于高溫會(huì)破壞酶的三維結(jié)構(gòu),從而導(dǎo)致酶催化活性降低,而GOx與FeAC共價(jià)結(jié)合后,增加了酶三維結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性,從而使FeAC-GOx的熱穩(wěn)定性提高[42].在30~50℃范圍內(nèi),隨著溫度的升高,底物與酶的碰撞幾率也會(huì)增大,進(jìn)而提高了固定酶的催化活性,但進(jìn)一步升高溫度會(huì)破壞酶蛋白的結(jié)構(gòu),從而導(dǎo)致酶活性降低[40].

    Fig.4 Relative activity at different temperatures(A)and pH(B)for free GOx+HRP and FeAC-GOx

    圖4 (B)示出了游離酶(GOx+HRP)和FeAC-GOx在pH=3.0~9.0范圍內(nèi)的酶活性.與FeAC-GOx相比,游離酶在極酸和極堿條件下的活性均有所下降,尤其在pH=9.0時(shí)游離酶活性下降至20%,而FeAC-GOx在pH=3.0~8.0范圍內(nèi)均保持了較高的活性,即使在pH=9.0時(shí)酶活性也保持在約70%.以上結(jié)果表明,F(xiàn)eAC作為載體顯著降低了環(huán)境pH對(duì)GOx的影響,致使FeAC-GOx表現(xiàn)出更高的pH耐受性[43,44].

    2.2.2 儲(chǔ)存穩(wěn)定性及重復(fù)使用性 從實(shí)用和經(jīng)濟(jì)角度看,酶的儲(chǔ)存穩(wěn)定性和重復(fù)使用性均是其廣泛應(yīng)用的關(guān)鍵,因此,構(gòu)建具有高儲(chǔ)存穩(wěn)定性和重復(fù)利用性的多酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)體系對(duì)于實(shí)際應(yīng)用極為重要[45].實(shí)驗(yàn)測(cè)定了在4℃下儲(chǔ)存7 d后游離酶(GOx+HRP)和固定酶(FeAC-GOx)的催化活性.由圖5(A)可見,在儲(chǔ)存7 d后FeAC-GOx納米復(fù)合物的催化活性大于80%,而游離酶的酶活卻小于40%,說(shuō)明FeAC-GOx具有優(yōu)異的儲(chǔ)存穩(wěn)定性.此外,F(xiàn)eAC-GOx在重復(fù)使用6次以后,催化活性仍大于90%[圖5(B)].

    Fig.5 Storage stability at 4℃of free GOx+HRP and FeAC-GOx(A)and cycle numbers for FeAC-GOx(B)

    以上結(jié)果表明,GOx通過(guò)共價(jià)相互作用固定到FeAC上以后,提高了催化穩(wěn)定性.與游離酶相比,F(xiàn)eAC-GOx在高溫、強(qiáng)酸堿環(huán)境下均有更高的耐受性,并且具有良好的儲(chǔ)存穩(wěn)定性和重復(fù)使用性,在實(shí)際應(yīng)用中具有廣闊的前景.

    2.2.3 酶動(dòng)力學(xué)參數(shù) 酶動(dòng)力學(xué)參數(shù)Vmax(mmol·L-1·min-1)是指最大反應(yīng)速率,即當(dāng)酶的活性位點(diǎn)完全被底物占據(jù)時(shí)的反應(yīng)速率;Km(mmol/L)是指反應(yīng)速率達(dá)Vmax值一半時(shí)所需的底物濃度,表示酶對(duì)底物的親和力,Km值越小,則酶與底物之間的親和力越強(qiáng).Km和Vmax都是酶固有的特性,與其自身性質(zhì)有關(guān),酶固定化前后可能會(huì)發(fā)生動(dòng)力學(xué)參數(shù)的變化.在pH=4.0和37℃條件下,分別以不同濃度的葡萄糖和TMB為底物,測(cè)定了游離酶(GOx+HRP)和FeAC-GOx的動(dòng)力學(xué)參數(shù),以底物濃度倒數(shù)(c-1)橫坐標(biāo),反應(yīng)初速度倒數(shù)(V0-1)為縱坐標(biāo)繪制Lineweaver-Burk曲線(圖6),動(dòng)力學(xué)參數(shù)計(jì)算結(jié)果列于表1.

    Fig.6 Lineweaver-Burk plots of the free GOx+HRP and FeAC-GOx with glucose(A)and TMB(B)as substrate,respectively

    Table 1 Kinetic parameters of the free GOx+HRP and FeAC-GOx

    由表1可知,以葡萄糖或TMB為底物時(shí),F(xiàn)eAC-GOx的Km值均大于游離酶(GOx+HRP),說(shuō)明游離酶與葡萄糖或TMB的親和力要優(yōu)于FeAC-GOx.這是因?yàn)槊概cFeAC的結(jié)合增大了GOx的空間位阻,使酶與底物的親和能力下降.而FeAC-GOx的最大反應(yīng)速率大于游離酶,表明在溫度、pH、葡萄糖和TMB濃度及游離酶和固定酶濃度均相同的情況下,F(xiàn)eAC-GOx具有更高的催化能力,這主要?dú)w因于“納米尺度鄰近效應(yīng)”最小化了中間體的分解[22,46].

    Scheme 2 Schematic of the cascade reaction catalyzed by FeAC-GOx

    2.2.4 催化機(jī)理 FeAC-GOx多級(jí)酶聯(lián)催化體系的催化機(jī)理如Scheme 2所示.葡萄糖通過(guò)GOx的作用被氧化為葡萄糖酸和H2O2,生成的H2O2又在FeAC的催化下生成羥自由基(·OH),從而將無(wú)色的TMB氧化為典型的藍(lán)色氧化態(tài)TMB(ox-TMB).

    3 結(jié) 論

    以鐵氨基黏土為載體,通過(guò)共價(jià)固定葡萄糖氧化酶得到鐵氨基黏土-葡萄糖氧化酶(FeAC-GOx)納米復(fù)合催化劑,整合了納米酶的穩(wěn)定性和天然酶的高催化活性.實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,F(xiàn)eAC-GOx表現(xiàn)出良好的分散性,與游離酶相比,F(xiàn)eAC-GOx不僅具有高催化活性、儲(chǔ)存穩(wěn)定性和可重復(fù)利用性,而且對(duì)溫度、酸和堿都具有更高的耐受性.該研究為新型葡萄糖傳感器的開發(fā)奠定了基礎(chǔ).

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