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    橫紋肌肉瘤中融合基因陽性和陰性細(xì)胞功能學(xué)及差異miRNA生物信息學(xué)分析

    2021-01-18 11:44:40王曉萌李真真張???/span>黨鴻蔚劉春霞
    關(guān)鍵詞:細(xì)胞系陰性陽性

    王曉萌,李真真*,孟 蓮,張海俊,黨鴻蔚,李 鋒,劉春霞

    橫紋肌肉瘤(rhabdomyosarcoma, RMS)好發(fā)于兒童及青少年[1],常見亞型為胚胎性橫紋肌肉瘤(embryonal RMS,ERMS)、腺泡型橫紋肌肉瘤(alveolar RMS,ARMS),ERMS發(fā)病率約60%,ARMS發(fā)病率約20%;由于ARMS中存在PAX3/PAX7-FOXO1融合基因,其惡性程度高,致死率更高[2]。已在成肌細(xì)胞模型中發(fā)現(xiàn)PAX3-FOXO1的表達(dá)可以促進(jìn)RMS的發(fā)展[3]。因此,全面探索融合基因在RMS細(xì)胞中發(fā)揮的作用就顯得尤為重要。

    miRNA作為一種非編碼RNA,對癌癥的抑制或表達(dá)發(fā)揮重要作用。miR-27a等不同miRNA可以促進(jìn)RMS侵襲、遷移等生物學(xué)行為[4],但尚未見在RMS細(xì)胞中比較融合基因陽性和陰性的生物學(xué)行為的研究,融合基因和miRNA的相關(guān)研究較少。因此,該文將比較RMS細(xì)胞融合基因陽性和陰性的生物學(xué)行為并結(jié)合生物信息學(xué)分析差異miRNA,為后續(xù)基因及信號通路的研究提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞系和細(xì)胞培養(yǎng)人RD和PLA-802細(xì)胞系購自中國科學(xué)院細(xì)胞庫; RH30細(xì)胞系購自上海復(fù)翔生物技術(shù)有限公司;PLA-802、RH30和RD細(xì)胞的培養(yǎng)基為含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基(美國賽默飛公司),在37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2 主要試劑Cell Counting Kit-8購自上海東仁化學(xué)技術(shù)有限公司;Total RNA Kit、miScript II RT Kit、miScript SYBR Green PCR Kit均購自德國QIAGEN公司;Ultra SYBR Mixture(Low ROX)購自北京康為世紀(jì)公司;TIAN Script RT Kit購自北京天根生物科技公司;Transwell小室購自美國Corning Coster公司;Annexin V-FITC/PI雙染細(xì)胞凋亡檢測試劑盒購自南京凱基生物有限公司;miRNA引物購自上海生工生物工程有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1CCK-8試驗 在96孔板中(3×103個/孔)接種RMS細(xì)胞,分別在0、24、48和72 h,向RMS細(xì)胞中加入CCK-8試劑(10 μl/孔),并在37 ℃、5%CO2的潮濕培養(yǎng)箱中孵育2 h。避光使用Biotek酶標(biāo)儀(美國Bio-Rad)記錄450 nm的吸光度(optical density, OD)值。

    1.3.2Transwell試驗 收集RMS細(xì)胞(200 μl,25 000個/孔)。侵襲試驗需提前2 h在小室內(nèi)加入基質(zhì)膠,隨后更換DMEM培養(yǎng)基水化30 min,無血清培養(yǎng)基重懸RMS細(xì)胞后置于小室內(nèi),將小室置于20%FBS的600 μl DMEM培養(yǎng)基的24孔板中孵育2 d,小室用4%多聚甲醛固定20 min后晾干,用0.1%結(jié)晶紫染色15 min后用棉球輕輕擦拭上層,在顯微鏡下拍照記錄。遷移試驗則無需鋪基質(zhì)膠,在37 ℃下孵育24 h后,后續(xù)實驗步驟同遷移試驗。利用Image J軟件計數(shù)和SPSS統(tǒng)計分析。

    1.3.3流式細(xì)胞術(shù) 將細(xì)胞鋪到6孔板(1×104個/孔)中,2 d后,消化收集RMS細(xì)胞,用預(yù)冷PBS洗滌2次,以1×106個/ml的濃度重懸于500 μl Binding Buffer中。向RMS細(xì)胞懸液中加入Annexin VAPC/PI雙染試劑各5 μl。雙染后1 h之內(nèi)利用流式細(xì)胞儀檢測凋亡細(xì)胞的百分比,并記錄凋亡率。

    1.3.4差異miRNA分析 利用GEO(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)數(shù)據(jù)庫中GSE97553數(shù)據(jù)集,包含患者的PAX3-FOXO1融合基因陰性細(xì)胞(3株:RD、RH2、RH18)和PAX3-FOXO1融合基因陽性細(xì)胞(5株:RH3、RH4、RH30、RH28、RH41)的miRNA芯片表達(dá)譜,運用在線軟件GEO2R分析融合基因陽性和陰性細(xì)胞的差異miRNA, SangerBox分析差異miRNA繪制火山圖, |log2FC| >3,P<0.05,設(shè)定篩選差異miRNA為有意義的閾值。

    1.3.5qRT-PCR檢測篩選miRNA RMS細(xì)胞鋪到12孔板培養(yǎng)2 d后消化離心,棄上清液,加入700 μl QIAzol 裂解試劑混勻靜置5 min,加入140 μl三氯甲烷混勻,室溫靜置15 min后離心,吸上清液加入1.5倍體積的無水乙醇混勻后,吸700 μl液體加入柱子上離心10 000 r/min,15 s,4 ℃。利用Total RNA Kit試劑盒提取總RNA,將提取miRNA測濃度后,試劑盒miScript II RT Kit進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,聯(lián)合SYBR Green PCR Kit試劑盒上樣后利用7500實時PCR進(jìn)行檢測,統(tǒng)計分析結(jié)果。

    2 結(jié)果

    2.1 融合基因陽性RH30細(xì)胞的遷移、侵襲能力最強(qiáng)RMS細(xì)胞培養(yǎng)24 h后,統(tǒng)計RH30細(xì)胞、RD細(xì)胞和PLA-802細(xì)胞的穿孔數(shù)量,結(jié)果顯示RH30細(xì)胞的遷移能力高于RD細(xì)胞和PLA-802細(xì)胞(F=226.514,P均=0.000)。RMS細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,統(tǒng)計RH30細(xì)胞和RD細(xì)胞、PLA-802細(xì)胞的穿孔數(shù)量,結(jié)果顯示RH30細(xì)胞的侵襲能力高于RD細(xì)胞和PLA-802細(xì)胞(F= 90.917,P均=0.000)。 見圖1。

    2.2 融合基因陰性RD細(xì)胞的增殖能力最強(qiáng)分析3株RMS細(xì)胞在0、24、48和72 h的OD值,并繪制OD曲線。0 h時RD、RH30和PLA-802細(xì)胞的OD值曲線結(jié)果顯示各組之間無差異(F=0.293,P>0.05)。在24、48、72 h時,RD細(xì)胞的增殖能力高于RH30和PLA-802細(xì)胞的增殖能力(F=29.16,PRH30=0.004,PPLA-802=0.000;F=109.726,PRH30=0.000,PPLA-802=0.000;F=56.646,PRH30=0.001,PPLA-802=0.000)(P<0.05)。此外,RH30細(xì)胞的增殖能力高于PLA-802細(xì)胞的增殖能力。所有結(jié)果差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖2。

    圖1 3株RMS細(xì)胞系的遷移和侵襲能力

    圖2 3株細(xì)胞系的細(xì)胞增殖能力

    2.3 融合基因陽性RH30細(xì)胞的抗凋亡能力最強(qiáng)在RMS細(xì)胞中加入Annexin V-APC / PI試劑后檢測其凋亡能力,結(jié)果顯示RH30細(xì)胞的凋亡率低于RD細(xì)胞和PLA-802細(xì)胞(F=7.415,PRD=0.015,PPLA-802=0.016)。PLA-802細(xì)胞與RD細(xì)胞之間的凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(t=-0.040,P=0.97)。3株RMS細(xì)胞中,RH30的抗凋亡能力高于RD和PLA-802。見圖3。

    2.4 篩選差異miRNAGEO2R分析RMS中融合基因陽性細(xì)胞和融合基因陰性細(xì)胞中差異miRNA,利用sangerbox中火山圖分析差異miRNA,紅色代表上調(diào)miRNA,綠色代表下調(diào)miRNA(圖4)。根據(jù)|log2FC|>3,P<0.05,篩選得到12個差異miRNA,其中上調(diào)miRNA有3個,分別為miR-1、let-7d-5p和let-7b-5p,下調(diào)miRNA有9個,分別為miR-196a-5p、miR-455-3p、miR-21-5p、miR-193a-3p、miR-29b-3p、miR-29a-3p、miR-100-5p、miR-222-3p和miR-221-3p(表1)。

    表1 篩選差異miRNA

    2.5 qRT-PCR驗證差異miRNA在RH30細(xì)胞、PLA-802細(xì)胞、RD細(xì)胞中利用qRT-PCR檢測篩選出的12個差異miRNA,結(jié)果顯示miR-1(F=28.908,PRD=0.001,PPLA-802=0.000),let-7d-5p(F=187.469,PRD=0.000,PPLA-802=0.000)和let-7b-5p(F=2920.115,PRD=0.000,PPLA-802=0.000)在融合基因陽性RH30細(xì)胞中表達(dá)高于融合基因陰性PLA-802細(xì)胞和RD細(xì)胞(圖5);miR-196a-5p(F=98.196,PRD=0.000,PPLA-802=0.001),miR-455-3p(F=8.773,PRD=0.006,PPLA-802=0.040),miR-21-5p(F=187.469,PRD=0.000,PPLA-802=0.000),miR-193a-3p(F=87.856,PRD=0.000,PPLA-802=0.002),miR-29b-3p (F=16.142,PRD=0.001,PPLA-802=0.044),miR-29a-3p(F=16.573,PRD=0.006,PPLA-802=0.002),miR-100-5p(F=13.040,PRD=0.002,PPLA-802=0.038),miR-222-3p(F=53.234,

    圖3 3株細(xì)胞系的抗凋亡能力

    圖4 火山圖分析差異miRNA

    PRD=0.000,PPLA-802=0.003)和miR-221-3p(F=48.550,PRD=0.000,PPLA-802=0.003)在融合基因陰性RD細(xì)胞和PLA-802細(xì)胞中表達(dá)高于融合基因陽性RH30細(xì)胞(圖5)。上述結(jié)果與生物信息學(xué)分析結(jié)果一致。

    圖5 qRT-PCR分析篩選差異miRNA的mRNA表達(dá)

    3 討論

    ARMS中75%~80%存在t(2;13)(q36;q14)/PAX3-FOXO1或t(1; 13)(p36; q14)/PAX7-FOXO1易位,對RMS的發(fā)生發(fā)展起重要作用[5]。Williamson et al[6]在210位RMS患者中運用Kaplan-Meier分析無病生存率和總體生存率,結(jié)果顯示融合基因陽性RMS患者的轉(zhuǎn)移比例高于融合基因陰性的RMS患者,融合基因陽性患者比融合基因陰性患者預(yù)后差。本文在RMS細(xì)胞學(xué)水平證實,融合基因陽性RH30細(xì)胞的侵襲、遷移和抗凋亡能力高于融合基因陰性PLA-802細(xì)胞和RD細(xì)胞,而CCK-8檢測結(jié)果顯示RD 的增殖能力高于RH30和PLA-802,融合基因可能對RMS細(xì)胞的侵襲、遷移及抗凋亡能力起主要作用,對RMS細(xì)胞的增殖能力影響較小,可做進(jìn)一步研究,為RMS的分子信號通路研究提供參考。

    miRNA不僅參與正常的細(xì)胞生物進(jìn)程,在腫瘤中同樣發(fā)揮重要的作用。在乳腺癌細(xì)胞中過表達(dá)miRNA-144抑制CEP55的表達(dá),抑制乳腺癌細(xì)胞的增殖、侵襲和遷移[7]。在RMS中,融合基因不僅影響腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)功能,對miRNA同樣發(fā)揮重要作用,過表達(dá)PAX3-FOXO1激活促進(jìn)miR-486-5p的表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)ARMS的發(fā)展[8]。

    本研究利用生物信息學(xué)分析miRNA芯片表達(dá)譜篩選RMS融合基因陽性和陰性的差異miRNA并利用qRT-PCR證實miR-196a-5p、miR-455-3p、miR-193a-3p、miR-100-5p、miR-222-3p和miR-221-3p等在RMS融合基因陽性中的表達(dá)低于融合基因陰性的RMS,在RMS融合基因陽性中可能發(fā)揮抑制作用。

    Zhan et al[9]發(fā)現(xiàn)在胰腺癌中miR-455-3p表達(dá)降低,PDZ結(jié)合基序(TAZ)為Hippo途徑的關(guān)鍵因子,過表達(dá)miR-455-3p靶向抑制TAZ表達(dá)抑制胰腺癌細(xì)胞的增殖。Mohamed et al[10]研究表明在RMS中TAZ促進(jìn)RD(ERMS)細(xì)胞的增殖及成肌細(xì)胞轉(zhuǎn)化。Lu et al[11]發(fā)現(xiàn)在耐西妥昔單抗的大腸癌中miR-100過表達(dá),lncRNA MIR100HG可以驅(qū)動miR-100和miR-125b協(xié)調(diào)抑制Wnt信號通路的負(fù)調(diào)控因子,增強(qiáng)Wnt信號表達(dá)導(dǎo)致耐藥,不利于腫瘤的治療。Singh et al[12]在p53和c-fos雙突變表達(dá)降低的小鼠模型體內(nèi)發(fā)現(xiàn),與正常成肌細(xì)胞相比,ERMS中的Wnt信號通路被下調(diào)。Xu et al[13]研究表明miR-196a-5p是唯一連接LOC134466和TAC1的miRNA,過表達(dá)LOC134466可抑制miR-196a-5p,促進(jìn)TAC1的表達(dá),抑制子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞的增殖。Wang et al[14]在肝癌中利用生物信息學(xué)分析及實驗證實miR-221-3p/miR-222-3p高表達(dá),其預(yù)測靶基因CBFB、UBE2N在肝癌預(yù)后預(yù)測表現(xiàn)良好,可能是肝癌預(yù)后的指標(biāo)。本研究miR-221-3p/miR-222-3p等miRNA在RMS融合基因陰性的表達(dá)高于融合基因陽性,上述研究為RMS中研究差異miRNA提供參考,可利用miRNA做進(jìn)一步研究。

    綜上,融合基因陽性的RMS細(xì)胞侵襲、遷移和抗凋亡能力高于融合基因陰性RMS細(xì)胞,融合基因?qū)Σ町恗iRNA的表達(dá)可能起重要作用,這為深入研究融合基因在RMS的分子作用機(jī)制及靶向藥物的研究奠定基礎(chǔ)。

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