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      新型三苯胺-卟啉鋅復(fù)合物與DNA的結(jié)合模式及單線態(tài)氧能力研究

      2020-09-11 01:38:22汪澤江劉丹姜軍王凱
      關(guān)鍵詞:單線光敏劑光敏

      汪澤江,劉丹,姜軍,王凱,

      (1.武漢工程大學(xué)化工與制藥學(xué)院,湖北 武漢 430074;2.湖北大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,湖北 武漢 430026)

      0 引言

      卟啉及其衍生物廣泛存在于自然界中,并在生命活動中扮演著重要的角色[1-3].現(xiàn)代研究表明,卟啉在生物醫(yī)藥、材料、催化以及光化領(lǐng)域都有著重要的地位[4].卟啉作為一種重要的光敏劑,是光動力治療中的重要環(huán)節(jié).光動力療法(photodynamic therapy, PDT)包括3個(gè)不可或缺的部分:光敏劑、光、氧氣,主要是通過光敏劑吸收能量后的光敏反應(yīng)產(chǎn)生高毒性的活性氧(reactive oxygen species,ROS),特別是單線態(tài)氧(1O2)來破壞腫瘤細(xì)胞和誘導(dǎo)癌細(xì)胞凋亡[5-7].隨著對卟啉作為光敏劑治療腫瘤的深入研究,卟啉類光敏劑與DNA的相互作用研究也尤為重要[8-9].隨著對生命的研究日益加深,科學(xué)家們發(fā)現(xiàn),以脫氧核糖核酸為單元組成的DNA是一種長鏈聚合物[10].它所攜帶的遺傳信息是生命體的重要基石,控制的蛋白質(zhì)的合成[11].多種疾病與DNA有關(guān),因此研究DNA的結(jié)合位點(diǎn),篩選新型藥物放入作用靶點(diǎn),在基因水平上進(jìn)行疾病的診斷和治療,對防病抗病的健康研究十分重要.大部分卟啉化合物能可逆的與DNA結(jié)合,并且卟啉的主要是以DNA-卟啉復(fù)合物的方式進(jìn)行的,所以研究卟啉與DNA的相互作用在生物活性研究方面有重大意義[12].目前主要運(yùn)用光譜學(xué)原理研究卟啉化合物與DNA的相互作用模式[13].

      卟啉的近紅外區(qū)吸收較弱,這導(dǎo)致卟啉的光熱效應(yīng)較小及組織穿透深度較低,導(dǎo)致對深部癌細(xì)胞的療效降低[14].共軛體系的增加有助于提升卟啉化合物的紅外吸收以及單線態(tài)氧的量子產(chǎn)率[15].此外,有機(jī)卟啉類化合物存在水溶性差、生物利用度低、腫瘤選擇性不高等需要克服的主要障礙.

      因此,我們設(shè)計(jì)并合成了一種新的三苯胺-鋅卟啉(ZnTPor),其是將三苯胺共軛修飾到卟啉環(huán)上再與低細(xì)胞毒性的鋅(Zn(II))配位,形成典型的供體-受體-供體(D-A-D)結(jié)構(gòu).同時(shí)為了提高有機(jī)物的親水性,在共軛結(jié)構(gòu)上引入聚乙二醇(PEG)鏈,具體見Scheme I.以有機(jī)小分子聚乙二醇-卟啉(PPor)作為參照,借助于紫外可見吸收光譜、熒光發(fā)射光譜,考察ZnTPor與DNA結(jié)合模式,同時(shí),以2′,7′-二氯熒光黃雙乙酸鹽(DCFH-DA)作為標(biāo)記物,對其單線態(tài)氧能力進(jìn)行了評價(jià).

      Scheme I PPor 和ZnTPor的合成路線

      1 材料和方法

      1.1 實(shí)驗(yàn)儀器及試劑Cary UV-100紫外-可見光譜儀;Fluoromax-4c-L熒光光譜儀(HoRIBA Scientific);Varian Mercury-VX400(400 MHz) 核磁共振儀;Bruker Auto MALDI-TOF 質(zhì)譜儀;ct-DNA購于Sigma-Aldrich 公司,其他試劑由國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司提供,未進(jìn)一步純化.水為純化水.PPor、TPor的制備方法參照文獻(xiàn)[16].

      1.2 ZnTPor的制備稱取50 mg(0.038 5 mmol)TPor溶解在50 mL二氯甲烷中,85 mg(0.46 mmol)乙酸鋅溶于5 mL甲醇后加入,室溫避光攪拌12 h.減壓濃縮除去溶劑后用二氯甲烷萃取,水及飽和食鹽水洗滌,無水硫酸鈉干燥,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀除去溶劑后柱層層析分離提純,洗脫劑為二氯甲烷∶甲醇=100∶1(V/V),得到紫色固體ZnTPor.1H NMR (400 MHz, DMSO)δ為8.91 (d,J=7.0 Hz, 4H), 8.80 (d,J=4.5 Hz, 2H), 8.76 (s, 2H), 8.04 (t,J=8.4 Hz, 8H), 4.32 (s, 4H), 3.88 (s, 4H), 3.67 (d,J=4.7 Hz, 4H), 3.61 (d,J=4.7 Hz, 4H), 3.56 (d,J=4.9 Hz, 4H), 3.50 (d,J=4.6 Hz, 4H), 3.47~3.42 (m, 4H), 1.10 (t,J=7.0 Hz, 6H). MS (Maldi-TOF):m/z=1 364.5 [M+1]+.

      1.3 溶液的配置

      1.3.1 Tris-HCl緩沖溶液的配制 將0.1 mol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris)與0.1 mol/L鹽酸溶液混合,配制成pH=7.4的Tris-HCl緩沖溶液,濃度為0.05 mol/L,其中含0.1 mol/L NaCl[17].

      1.3.2ct-DNA儲備液的配制 根據(jù)朗伯-比爾定律即A=εlc,可計(jì)算得到DNA濃度.其中A表示吸光度;ε為摩爾吸光系數(shù);l為比色皿厚度;c為吸光物質(zhì)濃度[18].

      稱取5 mgct-DNA溶于50 mL Tris-HCl緩沖溶液中,利用紫光-可見光譜儀測得其在260 nm和280 nm處的吸光度值.現(xiàn)已知ct-DNA在260 nm處的摩爾吸光系數(shù)為6 600 L· mol-1· cm-1,根據(jù)A=εlc計(jì)算得到ct-DNA濃度為1.33×10-4mol/L.并且A260 nm∶A280 nm=0.88∶0.486=1.81>1.8,所以該ct-DNA蛋白質(zhì)的含量滿足測試要求.

      1.3.3 卟啉儲備液的配制 溶解卟啉化合物于DMSO中,配制成濃度為1 mmol/L的溶液備用,再根據(jù)測試需要用Tris-HCl緩沖溶液稀釋至所需濃度即可.

      1.4 DNA相互作用

      1.4.1 紫外可見光譜測試 量取10 μL 濃度為1 mmol/L 卟啉儲備液于比色皿中,然后加入3 mL Tris-HCl緩沖溶液稀釋至3 μmol/L.以不同濃度的ct-DNA溶液滴定,檢測其在350~500 nm范圍內(nèi)吸光度的變化.每次加入ct-DNA后充分混合5 min,樣品池厚度為1 cm.本次共測試11個(gè)ct-DNA濃度,分別為0、0.09、0.13、0.22、0.44、0.66、0.88、1.75、2.61、3.45、4.29 μmol/L.

      1.4.2 熒光發(fā)射光譜測試 量取10 μL 1 mmol/L 卟啉儲備液于比色皿中,然后加入3 mL Tris-HCl緩沖溶液稀釋至3 μmol/L.以不同濃度的ct-DNA溶液滴定,檢測其在600~750 nm范圍內(nèi)熒光強(qiáng)度的變化.每次加入ct-DNA后充分混合5 min,樣品池厚度為1 cm.ZnTPor和PPor的激發(fā)波長分別是432和421 nm,激發(fā)狹縫2 nm,發(fā)射狹縫2 nm,掃描速度240 nm/min.本次共測試6個(gè)ct-DNA濃度,分別為0、0.66、0.88、1.75、2.61、3.45 μmol/L.

      1.5 單線態(tài)氧產(chǎn)生量取1 mmol/L的卟啉儲備液300 μL于1.2 mL DMSO,然后加入PBS緩沖溶液定容至10 mL,稀釋濃度至30 μmol/L.從中取100 μL置于比色皿,然后加入0.5 μmol/L濃度的DCFH溶液2.9 mL,卟啉濃度變?yōu)? μmol/L.每組用氙燈照射兩分鐘,共測試8組,激發(fā)波長為488 nm,以DCFH的PBS溶液為空白對照,檢測500~600 nm范圍內(nèi)熒光強(qiáng)度的變化.

      2 結(jié)果與討論

      2.1 與DNA結(jié)合模式

      2.1.1 紫外-可見光譜法 在紫外-可見吸收光譜中,以不同濃度的ct-DNA滴定卟啉化合物,觀察卟啉Soret帶的吸收變化.如圖1所示,隨著ct-DNA濃度的增加(0~4.29 μmol/L),卟啉化合物在Soret帶的吸光度均有不同程度的減弱并伴隨著紅移.這是因?yàn)檫策拇蟓h(huán)π*共軛體系與DNA堿基對發(fā)生π電子堆積,卟啉π*空軌道與堿基對的π電子軌道發(fā)生耦合導(dǎo)致能級降低,π→π*躍遷能級減小,從而出現(xiàn)了紅移.另一方面,耦合作用使π*軌道部分充滿電子,π→π*躍遷幾率減小,因此出現(xiàn)減色效應(yīng)[12,19].由表1和圖2-1的減色(Hypochromicity)和紅移(Bathochromic shift)數(shù)據(jù)可以看出,ZnTPor沒有出現(xiàn)較大的紅移(<5 nm)但出現(xiàn)了較大程度的減色(>50%),初步推斷卟啉ZnTPor與DNA的結(jié)合模式為嵌插結(jié)合模式.PPor出現(xiàn)了一定程度的紅移(5 nm)的減色程度很小(<30%),這表明PPor與DNA可能以嵌插或外部鍵合兩種模式結(jié)合.

      結(jié)合常數(shù)K可用來表示卟啉化合物與DNA結(jié)合能力,表現(xiàn)為插入模式K值在106~107,表現(xiàn)為外部鍵合模式的K值在105左右[12].其方程可表示為:

      圖1 ZnTPor (A)和 PPor (B)的ct-DNA滴定紫外-可見吸收光譜

      表1 ct-DNA滴定法測定PPor和ZnTPor的紫外-可見吸收光譜、熒光發(fā)射、結(jié)合常數(shù)

      D/Δεap=D/Δε+1/(ΔεK)

      (1)

      其中D表示DNA的濃度,單位為mol/L;Δεap=|εA-εF|;Δε=|εB-εF|;εA=Aobs/ [Porphyrin];εB和εF分別表示DNA-卟啉復(fù)合物的消光系數(shù)和未與DNA結(jié)合的自由卟啉的消光系數(shù).D/Δεap和D之間具有一定的線性關(guān)系可線性擬合得出方程.線性擬合后將斜率1/Δε與截距1/(ΔεK)相除可計(jì)算得到K值(如圖2),計(jì)算結(jié)果列于表1中.從表1中數(shù)據(jù)可以看出,PPor結(jié)合常數(shù)較小,結(jié)合紫外吸收可表明與DNA結(jié)合模式為外部鍵合.ZnTPor結(jié)合常數(shù)K大于106,與DNA結(jié)合能力較強(qiáng).

      圖2 ZnTPor(A) 和 (B) PPor 的D/Δεap與D之間的關(guān)系

      2.1.2 熒光發(fā)射光譜法 以不同濃度ct-DNA滴定卟啉,測得熒光發(fā)射光譜如圖3所示.由表1和圖3的數(shù)據(jù)不難看出,兩種卟啉化合物均未出現(xiàn)較大位移(<5 nm),其中ZnTPor隨著ct-DNA濃度增加,熒光強(qiáng)度有明顯的降低,這是因?yàn)檫策迦氲紻NA后,與DNA之間發(fā)生了能量傳遞導(dǎo)致熒光強(qiáng)度的降低.PPor的熒光強(qiáng)度減弱程度低,再次驗(yàn)證了ZnTPor的DNA結(jié)合能力較強(qiáng).ZnTPor發(fā)生一定程度的藍(lán)移,可能是因?yàn)檫策h(huán)中配位了金屬鋅離子,使得卟啉本身電子云密度降低,也可能與金屬鋅的軸向配位有關(guān).同時(shí),ZnTPor與DNA相互作用后的紅移和增強(qiáng)的熒光表明它可能是插入DNA的J聚集體[18].

      圖3 ZnTPor (A)和PPor (B)的ct-DNA滴定熒光發(fā)射光譜

      圖4 DCFH的PBS緩沖溶液(A)在不同光照時(shí)間后的熒光發(fā)射光譜、(B) ZnTPor+DCFH和(C) PPor+DCFH的不同光照時(shí)間后的熒光發(fā)射光譜、(D) ZnTPor+DCFH和PPor+DCFH混合液 分別在523 nm處熒光強(qiáng)度與光照時(shí)間之間的變化曲線

      2.2 單線態(tài)氧產(chǎn)生能力DCFH-DA(2′,7′-二氯熒光黃雙乙酸鹽)是非標(biāo)記性的氧化敏感的熒光探針,本身沒有熒光,進(jìn)入細(xì)胞后,可以被細(xì)胞內(nèi)的酯酶水解生成DCFH,細(xì)胞內(nèi)的活性氧可以氧化無熒光的DCFH生成有熒光的DCF[20].所以可以根據(jù)檢測DCF的熒光間接判定細(xì)胞內(nèi)活性氧的水平.因?yàn)镈CFH-DA易氧化的酚羥基形成乙酸酯后相對于DCFH的抗氧化能力增強(qiáng).所以根據(jù)文獻(xiàn)方法對DCFH-DA進(jìn)行預(yù)處理,使其水解成為DCFH后使用.

      如圖4(A)所示,在DCFH的PBS溶液空白對照組中,光照后熒光強(qiáng)度變化不大,因此空氣氧化DCFH產(chǎn)生熒光對實(shí)驗(yàn)的影響可忽略不計(jì).圖4(B)和(C)中可以觀察到ZnTPor和PPor光照時(shí)間不同熒光強(qiáng)度的變化.在圖4(D)中通過對比可觀察到,隨著光照時(shí)間的延長,在兩種卟啉的存在下,DCF的熒光強(qiáng)度不斷增強(qiáng).說明卟啉樣品在光照后產(chǎn)生了單線態(tài)氧,氧化DCFH使其成為具有綠色熒光的DCF.熒光強(qiáng)度越強(qiáng),越快趨于飽和,說明單線態(tài)氧產(chǎn)生速率越快,即單線態(tài)氧產(chǎn)生效率ZnTPor>PPor.

      對比兩種卟啉化合物的單線態(tài)氧產(chǎn)生效率:ZnTPor>PPor,這可能是TPA作為供電子基團(tuán)增加了卟啉的光敏活性,同時(shí)增大了共軛體系使得化合物光敏性增強(qiáng),再加上卟啉與金屬鋅配位后,鋅卟啉具有的高三重態(tài)量子產(chǎn)率[20],使得卟啉化合物自身的光敏性增強(qiáng),具有更好的單線態(tài)氧產(chǎn)生能力.

      3 結(jié)論

      本研究通過紫外可見吸收光譜和熒光發(fā)射光譜數(shù)據(jù)進(jìn)行線性擬合,計(jì)算DNA與卟啉的結(jié)合常數(shù)K值,研究卟啉化合物與ct-DNA的結(jié)合模式,這對生物活性的研究十分重要.發(fā)現(xiàn)兩種卟啉化合物ZnTPor和PPor均能與DNA有較好結(jié)合,PPor為外部結(jié)合模式,ZnTPor和為嵌插模式.同時(shí)本研究還測試了化合物的單線態(tài)氧產(chǎn)生情況,以DCFH為活性氧探針,通過間接法測得單線態(tài)氧產(chǎn)生能力:ZnTPor>PPor.再次驗(yàn)證了ZnTPor的優(yōu)良光學(xué)性能,具有D-A-D結(jié)構(gòu)三苯胺卟啉復(fù)合物,有利于電子的轉(zhuǎn)移, 增加卟啉的光敏活性,同時(shí)三苯胺連在卟啉環(huán)上增大了共軛體系使得化合物光敏性增強(qiáng),與金屬鋅配位,也可增強(qiáng)卟啉的光敏性,使其具有更好的單線態(tài)氧產(chǎn)生能力.

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