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    內(nèi)質(zhì)網(wǎng)跨膜蛋白EVA1A對肝細胞癌Huh7細胞生物學(xué)行為的影響

    2020-08-10 10:04:02楊杰杰徐倩楊玉玲李奕璇王彬侯琳李寧
    精準醫(yī)學(xué)雜志 2020年4期
    關(guān)鍵詞:陽性細胞肝細胞試劑盒

    楊杰杰 徐倩 楊玉玲 李奕璇 王彬 侯琳 李寧

    (1 青島大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生物化學(xué)與分子生物學(xué)系,山東 青島 266071; 2 青島大學(xué)附屬醫(yī)院感染科; 3 青島大學(xué)電子信息學(xué)院)

    肝細胞癌(HCC)是肝臟最常見的原發(fā)性惡性腫瘤[1-2]?,F(xiàn)階段肝癌的臨床首選治療方法仍然是早期手術(shù)切除,但術(shù)后2年復(fù)發(fā)率高達55%[3-5]。近年來,大規(guī)模臨床試驗證實靶向治療可顯著延長晚期肝癌患者的生存期,靶向治療被廣泛推薦為一線治療方法[6-7],但是靶向治療的副作用和耐藥性又顯著降低了其臨床效益[8-10]。因此,尋找新的有效分子靶點已成為HCC靶向治療研究的主要方向。

    內(nèi)質(zhì)網(wǎng)跨膜蛋白EVA1A基因是于2007年通過高通量篩選鑒定出來的一種參與細胞程序性死亡的新基因[11-12],定位于人類2號染色體短臂12區(qū)(2p12),在各種脊椎動物中的表達高度保守。研究發(fā)現(xiàn)EVA1A過表達可誘導(dǎo)細胞自噬和凋亡[13-15]。值得注意的是,與正常組織相比,EVA1A在食管鱗癌、胃腺癌、胰腺癌等人類腫瘤組織中均有明顯的下調(diào)或不表達[16-17],提示其可能參與了這些腫瘤的發(fā)生或進展。目前已有研究發(fā)現(xiàn)EVA1A在人胃癌、神經(jīng)母細胞瘤等腫瘤中具有重要功能[12,18],然而其在HCC中的功能尚未見報道。本研究借助Huh7肝癌細胞模型過表達EVA1A,研究其對Huh7細胞增殖、遷移和凋亡的影響,為進一步探討EVA1A在肝細胞癌發(fā)生發(fā)展中的作用及尋找新的HCC治療靶點奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    選取2019年在青島大學(xué)附屬醫(yī)院確診為HCC行手術(shù)治療的患者20例,所有患者均未接受過放療或化療。于手術(shù)過程中切取HCC患者癌組織及其癌旁正常組織,所有組織樣本均經(jīng)病理組織學(xué)檢查確診為腫瘤組織和正常組織。人正常肝細胞L02與人肝細胞癌細胞系Huh7來自于青島大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生物化學(xué)與分子實驗室。

    1.2 試劑與儀器

    RIPA蛋白提取試劑盒、DAB顯色試劑盒以及MTT試劑(北京索萊寶生物科技有限公司),小鼠抗人EVA1A單克隆抗體及小鼠抗人 GAPDH單克隆抗體(英國Abcam公司),熒光定量PCR試劑盒、RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司),EVA1A、GAPDH引物 (上海生工生物工程有限公司),Trizol RNA提取試劑盒及DAPI試劑(美國Invitrogen公司)。

    1.3 研究方法

    1.3.1實時熒光定量PCR(RT-qPCR)檢測HCC患者癌組織及其癌旁正常組織中EVA1AmRNA表達水平 將HCC患者癌組織和癌旁正常組織碾碎后用Trizol法提取總RNA,測定兩組RNA濃度與純度,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,然后進行RT-qPCR。根據(jù)試劑盒使用說明配制反應(yīng)體系。每個樣品設(shè)3個復(fù)孔,比較HCC患者癌組織和配對癌旁正常組織EVA1AmRNA的相對表達豐度。實驗重復(fù)3次。以2-△△CT表示樣本中mRNA的相對表達量。引物序列見表1。

    表1 RT-qPCR引物序列

    1.3.2免疫組化染色方法測定HCC患者組織中EVA1A蛋白表達 采用自動脫水機對HCC患者癌組織和癌旁正常組織標本進行梯度乙醇脫水,常規(guī)石蠟包埋,5 μm厚切片。從20例HCC患者的癌組織和癌旁正常組織樣本中隨機抽取15例,按照試劑盒說明書進行EVA1A免疫組織化學(xué)染色。免疫組織化學(xué)染色結(jié)果的判斷標準:①按切片中陽性細胞數(shù)量占總細胞數(shù)量的比例進行計分:陰性計0分,陽性細胞比例1%~10%計1分,陽性細胞比例11%~50%計2分,陽性細胞比例51%~75%計3分,陽性細胞比例>75%計4分。②對陽性細胞的染色程度進行計分:不著色計0分,淡黃色計1分,棕黃色計2分,棕褐色計3分。對兩項指標計分相乘,對染色結(jié)果進行判斷:0~2分為陰性(-),3~5分為弱陽性(+),6~8分為陽性(),9~12分為強陽性()。

    1.3.3Western blot方法檢測細胞系中EVA1A的蛋白表達水平 分別培養(yǎng)正常肝細胞L02細胞、肝細胞癌Huh7細胞,待細胞融合度達90%時,棄掉培養(yǎng)基,用PBS洗滌1次,采用RIPA裂解法提取總蛋白;BCA法測定同時調(diào)整蛋白的濃度,加入5×Loading buffer以后加熱5 min使蛋白變性。然后SDS-PAGE電泳、轉(zhuǎn)模,封閉2 h,以1∶1 000稀釋的鼠抗人EVA1A一抗4 ℃孵育過夜。以GAPDH作為內(nèi)參照蛋白,TBST洗膜以后,用對應(yīng)的二抗室溫孵育1 h后,重復(fù)TBST洗膜步驟,ECL發(fā)光顯影,使用 ImageG-Pro Plus 6軟件分析目的蛋白條帶EVA1A和內(nèi)參蛋白條帶GAPDH的灰度值,將目的蛋白條帶的灰度值與內(nèi)參蛋白條帶的灰度值進行比較,得出目的蛋白的相對表達量,結(jié)果以3次重復(fù)實驗的均值表示。

    1.3.4細胞轉(zhuǎn)染并檢測EVA1A過表達水平 將肝癌細胞系Huh7分成2組分別進行轉(zhuǎn)染,對照組轉(zhuǎn)染Myc-tag質(zhì)粒,實驗組轉(zhuǎn)染EVA1A-Myc質(zhì)粒,參照Lipofectamine 2000說明書正常轉(zhuǎn)染24 h后,采用RIPA裂解法分別裂解兩組細胞,提取蛋白,并按照1.3.3中Western blot方法進行EVA1A蛋白表達的檢測,然后進行條帶的灰度值分析,以相對內(nèi)參GAPDH的灰度值代表EVA1A蛋白的相對表達水平,結(jié)果以3次重復(fù)實驗的均值表示。

    1.3.5MTT法檢測Huh7細胞的增殖能力 取轉(zhuǎn)染成功后的實驗組和對照組Huh7細胞,消化后接種于96孔板,每組設(shè)5個復(fù)孔,每孔約4 000個細胞,共鋪4個板,從培養(yǎng)12 h開始計時,每24 h任取一板采用MTT法測細胞活力,共檢測4 d。每個板在距檢測前4 h,每孔加入20 μL質(zhì)量濃度為5 g/L的MTT試劑,4 h以后棄去培養(yǎng)基,每孔再加入DMS0 150 μL,震蕩5 min使甲瓚顆粒完全溶解,然后用酶標儀檢測波長490 nm處各孔的吸光度值,分別制作實驗組和對照組細胞的生長曲線。

    1.3.6細胞劃痕法檢測Huh7細胞遷移能力 取轉(zhuǎn)染成功后的實驗組和對照組Huh7細胞,消化后接種于6孔板,待細胞融合度達到90%時進行劃痕實驗,分別于劃痕第0、48小時時觀察細胞遷移情況并拍照,應(yīng)用ImageG-Pro Plus 6軟件計算劃痕面積,結(jié)果取3次重復(fù)實驗的均值。

    1.3.7DAPI染色法檢測Huh7細胞的凋亡情況取轉(zhuǎn)染成功后的實驗組和對照組Huh7細胞,棄去培養(yǎng)基,使用PBS洗滌1次,加入適量的甲醇固定5 min。棄去固定液后用PBS洗滌1次,加入少量4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染色液,于室溫放置5 min,吸去染色液,用PBS洗滌3次,每次3 min。熒光顯微鏡下觀察并拍照。

    2 結(jié) 果

    2.1 HCC患者癌組織、癌旁正常組織中EVA1A mRNA和蛋白表達

    RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,HCC患者癌組織和癌旁正常組織中EVA1AmRNA平均相對表達量分別為1.099±0.028、0.254±0.034,兩者比較差異具有顯著性(t=33.23,P<0.01)。免疫組化染色結(jié)果顯示,HCC患者癌旁正常組織EVA1A表達為陽性,肝細胞呈棕黃色(圖1A);其癌組織EVA1A表達為陰性,細胞不著色 (圖1B)。15對標本中,HCC患者癌組織中EVA1A表達陰性14例,癌旁正常組織EVA1A的表達弱陽性及以上13例,兩組組織中EVA1A的表達比較差異具有顯著意義(χ2=19.29,P<0.001)。

    A:癌旁正常組織中EVA1A表達為陽性,細胞呈棕褐色;B:癌組織EVA1A表達為陰性,細胞不著色

    2.2 Western blot方法檢測L02以及Huh7細胞中EVA1A蛋白的表達水平

    L02、Huh7細胞中EVA1A蛋白的表達水平分別為1.041±0.085、0.102±0.031,兩者比較差異具有顯著性(t=17.98,P<0.01)。

    2.3 Huh7細胞轉(zhuǎn)染EVA1A-Myc后EVA1A 蛋白的表達水平

    Huh7細胞對照組和實驗組中EVA1A蛋白的表達水平分別為0.154±0.051、1.021±0.109,兩者比較差異具有顯著性(t=12.47,P<0.01)。

    2.4 過表達EVA1A的Huh7細胞增殖能力、遷移能力及細胞凋亡的情況

    MTT法檢測過表達EVA1A后Huh7細胞增殖能力顯示,時間、組別、時間與組別交互作用均對Huh7細胞增殖有顯著影響(F時間=369.41,F(xiàn)組別=260.26,F(xiàn)時間*組別=119.73,P<0.001)。單獨效應(yīng)結(jié)果顯示,與第1天相比,實驗組和對照組第2~4天Huh7細胞增殖水平明顯提高(F=19.63~388.82,P<0.01)。與對照組第3、4天相比,實驗組第3、4天Huh7細胞的增殖水平均明顯降低(F=39.74、44.50,P<0.01)。見表2。細胞劃痕實驗結(jié)果顯示,實驗組和對照組的Huh7細胞劃痕愈合率分別為0.108±0.022、0.389±0.065,兩組比較差異具有顯著性(t=7.09,P<0.05)。見圖2。DAPI染色后,熒光顯微鏡觀察過表達EVA1A后Huh7細胞的凋亡情況,結(jié)果顯示,實驗組中染色質(zhì)固縮、出現(xiàn)顆粒物質(zhì)以及核解體的現(xiàn)象明顯增多,其相對凋亡率為2.104±0.054,對照組為1.017±0.101,兩組比較差異有顯著性(t=-16.43,P<0.05)。見圖3。

    圖3 過表達EVA1A對Huh7細胞凋亡的影響

    圖2 過表達EVA1A對Huh7細胞遷移能力的影響

    表2 過表達EVA1A對Huh7細胞增殖能力的影響

    3 討 論

    近年來肝癌的治療手段取得了顯著進展,但我國肝癌患者的死亡率仍高居癌癥相關(guān)死亡的第3位,復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移是死亡的主要原因[19-21]。研究普遍認為細胞凋亡受阻是腫瘤發(fā)生的原因之一,尋找腫瘤發(fā)生中的凋亡相關(guān)基因并進行靶向治療,已成為肝癌治療研究的新方向[22-23]。

    EVA1A最早于2007年被鑒定為一種參與細胞凋亡的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)蛋白[11],主要表達于內(nèi)分泌組織,尤其是肝臟、胃、食管、腎上腺皮質(zhì)和垂體,提示其在這些器官中具有重要的功能。此外,EVA1A誘導(dǎo)的自噬和凋亡也在腦缺血損傷后的細胞死亡中起重要作用[24-25]。同時EVA1A介導(dǎo)的自噬在胚胎

    神經(jīng)發(fā)生[26]、心臟重塑[27]、急性肝損傷[28]、內(nèi)皮角膜營養(yǎng)不良[29]和控制乙型肝炎病毒的復(fù)制[30]中發(fā)揮重要作用,上述研究提示了其功能的多樣性和復(fù)雜性。最近發(fā)現(xiàn)EVA1A在人胃癌BGC823細胞、人骨肉瘤U2OS細胞、人食管鱗癌KYSE150細胞以及神經(jīng)母細胞瘤細胞中過表達,表現(xiàn)出抑癌作用[12,18],然而EVA1A在HCC中的表達模式、生物學(xué)功能和潛在機制尚不清楚。因此,本研究首先鑒定EVA1A在HCC中的表達情況,再進一步研究其對HCC是否具有抑制作用。首先本研究的RT-qPCR、免疫組化檢測結(jié)果顯示,HCC患者癌組織中EVA1AmRNA和蛋白的表達比癌旁正常組織明顯降低,提示其對HCC可能有抑制作用。Western blot檢測結(jié)果也顯示,EVA1A蛋白在人HCC細胞系Huh7中表達水平顯著低于正常肝細胞L02,與其在組織水平的表達結(jié)果一致。進一步以人HCC細胞系Huh7為細胞模型,通過過表達EVA1A觀察細胞的生物學(xué)行為,即在肝癌細胞Huh7中過表達EVA1A模擬出正常肝細胞的EVA1A水平,通過MTT實驗和細胞劃痕實驗觀察對肝癌細胞增殖和遷移能力的影響,結(jié)果顯示EVA1A過表達導(dǎo)致細胞增殖和遷移能力明顯下降,說明EVA1A在肝細胞癌中發(fā)揮有效的抑癌作用。為了探討EVA1A調(diào)控細胞增殖的分子機制,通過DAPI染色法檢測EVA1A過表達對細胞凋亡的影響,結(jié)果顯示過表達EVA1A使Huh7細胞相對凋亡率明顯上升,提示其抑癌的作用可能是通過誘導(dǎo)細胞凋亡來實現(xiàn)的。有研究顯示EVA1A在膠質(zhì)母細胞瘤U87、U251、SHG44細胞系、非小細胞肺癌H1299細胞系和宮頸癌細胞HeLa細胞中均顯著抑制腫瘤細胞的增殖[11,18,31],表現(xiàn)出較強的抗腫瘤活性,主要機制是誘導(dǎo)細胞凋亡,本研究與此結(jié)論相一致,提示EVA1A是一種有效的廣譜抗癌蛋白。同時本研究首次發(fā)現(xiàn)EVA1A過表達使Huh7細胞的遷移能力也有明顯下降,而上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)對HCC細胞的遷移和侵襲至關(guān)重要[32],因此推測EMT可能是EVA1A參與調(diào)控腫瘤細胞遷移的作用靶點,但還有待進一步研究證實。關(guān)于EVA1A的抗腫瘤機制,本研究主要集中在促凋亡過程,但也不能排除EVA1A調(diào)控自噬的作用,比如在胃癌和膠質(zhì)母細胞瘤中,EVA1A調(diào)控的自噬對其抑癌作用也有重要影響[18,24],自噬是否介導(dǎo)EVA1A在肝癌中的功能也有待于進一步研究。

    綜上所述,本研究結(jié)果顯示,過表達EVA1A抑制了HCC細胞Huh7的增殖和遷移能力。EVA1A作為一種關(guān)鍵的抑癌蛋白,在正常肝臟中具有較高的表達水平,而在HCC中表達異常下調(diào),可能有助于HCC細胞的生長和存活,是HCC發(fā)生發(fā)展的潛在機制。未來將對EVA1A的表達與HCC患者的臨床進展和預(yù)后的相關(guān)性進一步分析,闡明HCC發(fā)生發(fā)展過程中EVA1A表達調(diào)控的機制,為進一步揭示HCC可能的發(fā)病機制和將來利用EVA1A為靶點研發(fā)HCC分子靶向藥物提供支持。

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