叢龍玲,姚嘉茵,呂永慧△,胡邦,詹原泉
1 廣州醫(yī)科大學(xué)附屬中醫(yī)醫(yī)院脾胃科 廣東廣州 510130
2 中山大學(xué)附屬第六醫(yī)院消化內(nèi)科 廣東廣州 510655
3 中山大學(xué)附屬第六醫(yī)院肛腸外科 廣東廣州 510655
克羅恩?。–rohn’s disease,CD)是一種可以累及全消化道的腸道慢性炎癥,具有緩解期與活動(dòng)期交替反復(fù)發(fā)作的特點(diǎn)。慢性炎癥不斷進(jìn)展會(huì)導(dǎo)致穿孔、腸瘺、腹腔膿腫及腸梗阻等并發(fā)癥,37%~61%的CD患者在確診后10年內(nèi)因?yàn)槌霈F(xiàn)并發(fā)癥而需要接受一次或以上的手術(shù)治療[1]。目前,CD的發(fā)病機(jī)制不明確,有觀點(diǎn)認(rèn)為CD是在易感人群遺傳背景下發(fā)生的與感染密切相關(guān)的腸道免疫功能紊亂[2],缺乏有效治療藥物。近期對(duì)CD的研究[3]更關(guān)注于飲食以及腸道微生態(tài)菌群在CD發(fā)病機(jī)制中的作用。作者團(tuán)隊(duì)既往研究已證實(shí),n-3多不飽和脂肪酸(n-3 polyunsaturated fatty acid,n-3PUFA)要素飲食可有效改善三硝基苯磺酸(trinitrobenzenesulfonic acid,TNBS)誘導(dǎo)的CD大鼠模型的腸組織病理學(xué)改變,下調(diào)血清炎性因子表達(dá)水平,對(duì)CD大鼠有確切的治療作用[4],但關(guān)于n-3PUFA對(duì)大鼠動(dòng)物模型腸道微生態(tài)菌群的影響尚未明確。因此,本研究擬使用HLAB27轉(zhuǎn)基因大鼠(以下簡(jiǎn)稱B27大鼠)作為CD動(dòng)物模型,HLA-B7轉(zhuǎn)基因大鼠作為對(duì)照組,采用n-3PUFA作為干預(yù)治療,探討n-3PUFA飲食對(duì)CD腸道微生態(tài)的影響,以及與CD疾病活動(dòng)和炎性因子表達(dá)變化的關(guān)系,以期為研發(fā)有效且低毒副作用的CD治療用藥提供一定的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)依據(jù),現(xiàn)報(bào)告如下。
本研究采用HLA-B7轉(zhuǎn)基因大鼠(B7大鼠,n=8)以及HLA-B27轉(zhuǎn)基因大鼠(B27大鼠,n=16),所有轉(zhuǎn)基因大鼠均購(gòu)自中山大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,體重180~220 g。飼養(yǎng)在25℃室溫,相對(duì)濕度55%±10%,晝夜12 h/12 h環(huán)境下,所有大鼠自由攝水。B27大鼠表達(dá)人主要組織相容性復(fù)合體Ⅰ類HLAB27基因及相關(guān)的人β2-微球蛋白基因,出現(xiàn)全胃腸道炎癥,作為模型大鼠。B7大鼠不出現(xiàn)腸道炎癥,作為對(duì)照。B27大鼠隨機(jī)分為模型組與治療組,故大鼠分組如下:空白對(duì)照組(B7,n=8);模型組(B27,n=8)以及治療組(B27+n-3PUFA,n=8)。治療組通過(guò)灌胃方式給予n-3PUFA飲食干預(yù),干預(yù)時(shí)間為2周,每天灌胃一次。根據(jù)公式:大鼠有效干預(yù)劑量=(X mg/kg×70 kg×0.018)/0.2 kg,即6.3X mg/kg,其中X代表人的有效干預(yù)劑量,換算大鼠干預(yù)劑量得20 mg/(kg· d)[5]。
每日記錄各組大鼠的一般資料,包括大便情況、體重變化。根據(jù)疾病活動(dòng)指數(shù)(disease activity index,DAI)[6]評(píng)估各組大鼠腸炎疾病活動(dòng)度。體重下降(分值:無(wú)=0;1%~5%=1;6%~10%=2;11%~15%=3;>15%=4)、糞便性狀(分值:正常=0;半稀便=2;稀便=4)、大便隱血(分值:陰性=0;陽(yáng)性=2;肉眼血便=4)三項(xiàng)評(píng)分相加為DAI評(píng)分,評(píng)分越高提示疾病活動(dòng)度越高。
實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),麻醉大鼠后處死,取新鮮結(jié)腸組織,觀察大體損傷情況,評(píng)估結(jié)腸組織大體形態(tài)損傷指數(shù) (colon macroscopic damage index,CMDI),分值如下[5]:正常=0;局部黏膜充血水腫=1;線性潰瘍=2;線性潰瘍+黏膜炎癥=3;2個(gè)以上部位出現(xiàn)線性潰瘍=4;縱型潰瘍長(zhǎng)度>1 cm=5;潰瘍長(zhǎng)度>2 cm=6~8。
結(jié)腸組織經(jīng)過(guò)固定、包埋、切片、HE染色后顯微鏡下觀察,評(píng)估組織學(xué)損傷指數(shù)(tissue damage index,TDI)[6],分值如下:無(wú)損傷=0;黏膜及黏膜下炎癥浸潤(rùn)/輕度糜爛=1;1分基礎(chǔ)上病變范圍>50%=2;潰瘍延伸至黏膜下層和黏膜肌層=3;3分基礎(chǔ)上病變范圍>50%=4;細(xì)胞壞死達(dá)黏膜固有基層=5;5分基礎(chǔ)上病變范圍>50%=6。
實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),大鼠麻醉后心臟穿刺取血(2~3 mL),離心(2 000 r/min×5 min)后得血清,進(jìn)行ELISA(試劑盒購(gòu)自美國(guó)invitrogen公司)檢測(cè)。實(shí)驗(yàn)過(guò)程按照試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。檢測(cè)的因子包括促炎因子(IL-17、IL-2)以及抑炎因子(IL-10、IL-4)。
留取新鮮糞便,均勻混勻后取樣,置于滅菌離心管中(樣品>20 g/樣),液氮速凍,-80℃存放。使用2-250-bp末端配對(duì)reads對(duì)16S rRNA基因的V4區(qū)域進(jìn)行擴(kuò)增和測(cè)序(MiSeq,Illumina,Essex,UK)。利用UPARSE在97%相似度下進(jìn)行聚類,得到OTU(operational taxonomic units,操作分類單元)的代表序列;使用usearch_global方法將所有Tags比對(duì)回OTU代表序列,得到每個(gè)樣品在每個(gè)OTU的豐度統(tǒng)計(jì)表,通過(guò)RDP classifer(v2.2)軟件將OTU代表序列與數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)進(jìn)行物種注釋,置信度閾值設(shè)置為0.8,完成OTU的物種分類。本研究采用Chao指數(shù)和Shannon指數(shù)進(jìn)行α多樣性(Alpha diversity)分析。采用Bray-Curtis指數(shù)進(jìn)行β多樣性(Beta diversity)分析,應(yīng)用基于Bray-Curtis進(jìn)行非度量多維尺度法(nonmetric multidimensional scaling,NMDS)對(duì)比樣本組之間差異。
應(yīng)用SPSS 22.0(IBM公司,美國(guó))軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料采用(±s)表示,多組間比較采用方差分析,兩兩組間比較采用Bonferroni檢驗(yàn);符合偏態(tài)分布的計(jì)量資料采用M(QL,QU)表示,多組間比較采用Kruskal-Wallis非參數(shù)檢驗(yàn),兩兩組間比較采用Kruskal-Wallis Oneway ANOVA(k samples)檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
B27大鼠的DAI評(píng)分高于B7大鼠(P<0.05),采用n-3PUFA干預(yù)后,B27大鼠DAI評(píng)分有下降趨勢(shì)。進(jìn)一步采用量表評(píng)估大體組織損傷程度以及鏡下病變程度,結(jié)果提示B27大鼠存在明顯的腸組織器官損傷(P<0.05),采用n-3PUFA干預(yù)后,鏡下?lián)p傷得以改善(P<0.05)。見表1、圖1。
表1 各組DAI、CMDI以及TDI評(píng)分 分,M(QL,QU)
圖1 各組大鼠結(jié)腸病理學(xué)所見(HE)
與B7組大鼠比較,B27組大鼠促炎因子(IL-17、IL-2)表達(dá)升高,抑炎因子(IL-10、IL-4)表達(dá)下降(均P<0.05),提示B27大鼠存在炎性因子的表達(dá)失衡。采用n-3PUFA干預(yù)后,可抑制B27大鼠促炎因子的表達(dá),促進(jìn)抑炎因子的表達(dá)(均P<0.05)。見表2。
表2 各組炎性因子的表達(dá)水平 pg/mL,±s
表2 各組炎性因子的表達(dá)水平 pg/mL,±s
*與B7組比較,P<0.05;#與B27組比較,P<0.05。
指標(biāo)IL-17 IL-2 IL-10 IL-4 B7 32.6±11.4 13.9±8.6 22.4±7.1 71.8±11.0 B27 73.5±11.2*42.4±17.5*11.9±7.7*30.3±6.4*B27+n-3PUFA 39.3±16.7#18.0±8.0#21.8±3.2#46.6±8.8#*
已知B27大鼠腸道微生物菌群的表型與CD相似,采用n-3PUFA干預(yù)B27大鼠模型,在干預(yù)前后留取大鼠新鮮糞便,行16S rRNA測(cè)序,并進(jìn)一步完成α多樣性(Chao指數(shù)和Shannon指數(shù),圖2A、圖2B)分析以及β多樣性(基于Bray-Curtis進(jìn)行NMDS分析,圖2C)分析,結(jié)果提示n-3PUFA治療后B27大鼠糞便菌群的豐富性以及多樣性增加。
圖2 n-3PUFA干預(yù)前后對(duì)HLA-B27大鼠糞便微生態(tài)菌群的影響
HLA-B27大鼠是一種自發(fā)出現(xiàn)包括回腸在內(nèi)的全消化道慢性炎癥動(dòng)物模型,其腸道微生態(tài)菌群的改變類似CD患者的改變[7]。因此,該動(dòng)物模型目前主要用于腸道微生態(tài)菌群研究。本研究中使用HLAB27大鼠作為CD模型大鼠,鑒于HLA-B7大鼠不會(huì)出現(xiàn)腸道炎癥[8],故作為對(duì)照組。
要素飲食是治療CD的重要手段。臨床上對(duì)于合并腸瘺、腸梗阻等并發(fā)癥的CD、難治性CD或者兒童CD患者,使用全腸內(nèi)營(yíng)養(yǎng)支持治療(exclusive enteral nutrition,EEN),可以有效促進(jìn)黏膜愈合,降低手術(shù)率[9]。其機(jī)理可能與減少飲食攝入的食物抗原,從而減輕腸道免疫反應(yīng)相關(guān)。脂肪酸是人體重要的必需營(yíng)養(yǎng)素,其中n-3PUFA被報(bào)道具有抗炎、抗氧化的作用。我們前期研究已證實(shí)n-3PUFA可有效治療TNBS誘導(dǎo)的CD大鼠[4],但是n-3PUFA對(duì)B27大鼠的干預(yù)作用和對(duì)微生物生態(tài)群落的影響卻未知。本研究結(jié)果提示,n-3PUFA可有效改善B27大鼠結(jié)腸組織學(xué)病理,但對(duì)大體病變及臨床活動(dòng)度的治療作用不明顯,這可能和飲食干預(yù)時(shí)間有限相關(guān)。
免疫紊亂一直是CD致病機(jī)制研究中的焦點(diǎn),炎性指標(biāo)的表達(dá)可以反映免疫反應(yīng)水平。在免疫相關(guān)性疾?。ū热鐝?qiáng)直性脊柱炎[10]和系統(tǒng)性紅斑狼瘡[11]等)中炎性指標(biāo)出現(xiàn)表達(dá)失衡,表現(xiàn)為促炎因子表達(dá)增加,抑炎因子表達(dá)減少。本研究結(jié)果提示B27大鼠血清中促炎因子(IL-17、IL-2)表達(dá)增加,抑炎因子(IL-10、IL-4)表達(dá)減少,腸道慢性炎癥持續(xù)反應(yīng)導(dǎo)致器官損傷。n-3PUFA干預(yù)后有效糾正炎性因子失衡,提示n-3PUFA一定程度上可減輕腸道免疫反應(yīng)。
腸道微生態(tài)中包括1 000~1 150種細(xì)菌,1014個(gè)總細(xì)胞數(shù),占據(jù)人體總微生物的78%,由此認(rèn)為腸道微生態(tài)本身就是一個(gè)復(fù)雜的微生物系統(tǒng),甚至是一個(gè)具有多種功能的微器官[12]。腸道微生態(tài)與人類多種疾病息息相關(guān),比如肥胖癥等代謝性疾病、CD等免疫性疾病等[13]。2016年Ianiro等[14]在Gut雜志報(bào)道,CD患者腸道菌群多樣性下降,各細(xì)菌菌屬豐度改變,包括變形菌門(Proteobacteria)增加,厚壁菌門(Fir?micutes)減少,擬桿菌屬(Bacteroides)、優(yōu)桿菌屬(Eubacterium)和乳桿菌屬(Lactobacillus)等有益菌群顯著減少,機(jī)會(huì)致病菌屬增加。2017年Halfvarson等[15]發(fā)現(xiàn)不同IBD亞型的腸道微生物組特點(diǎn)不同,均與健康人群有顯著差異,此外,CD相關(guān)的遺傳風(fēng)險(xiǎn)變異將影響腸道微生物菌群。糞菌移植(fecal micro?biota transplantation,F(xiàn)MT)通過(guò)改變腸微生態(tài)菌群可以安全有效治療CD患者的復(fù)發(fā)性艱難梭菌感染[16-17]。因此,微生態(tài)菌群在CD致病中起重要作用,致力于研究并且阻斷CD致病中的微生態(tài)改變,有可能成為治療CD的有效手段。本研究結(jié)果提示,n-3PUFA可以增加B27大鼠腸道微生態(tài)的豐富性以及多樣性,這可能是n-3PUFA治療克羅恩病大鼠的機(jī)制之一。
本研究驗(yàn)證了n-3PUFA飲食對(duì)B27大鼠的治療作用,這可能與維持炎性因子平衡、保護(hù)腸微生態(tài)豐富性與多樣性相關(guān)。往后需要更多的研究進(jìn)一步明確是否有特定的微生態(tài)菌屬在CD致病中起作用,以及從細(xì)胞層面深入研究要素飲食、免疫及微生態(tài)之間的密切聯(lián)系。