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    酸法提取火龍果果皮中果膠

    2020-06-15 06:26余杰王曉紅劉麗邵文麗代麗娜姚娜
    赤峰學院學報·自然科學版 2020年5期
    關鍵詞:果膠

    余杰 王曉紅 劉麗 邵文麗 代麗娜 姚娜

    摘 要:以新鮮火龍果果皮為原料,用酸水解法提取果膠,通過單因素實驗,確定果膠提取的最佳適宜條件,并分析了果膠酯化度.實驗表明,提取果膠最佳適宜條件為:提取酸為硫酸,浸提時間140min,料液比1:10(g/mL),提取溫度95℃,提取pH值3.5.該工藝條件下果膠的得率為2.6%,酯化度為28.34%,為低酯果膠.

    關鍵詞:火龍果果皮;果膠;酸法

    中圖分類號:TS209? 文獻標識碼:A? 文章編號:1673-260X(2020)05-0024-03

    火龍果[1]又名紅龍果、青龍果、玉龍果等,被譽為“水果之王”,是近年來在我國新興的一種果用栽培品種,具有相當可觀的產(chǎn)量,但火龍果果皮被大量遺棄,造成了資源浪費.果膠是細胞壁的主要成分,主要存在于植物的莖和果實中,果膠是膳食纖維的主要成分,被廣泛應用于食品[2]、化妝品[3]、醫(yī)藥工業(yè)等[4],在食品中可用作膠凝劑、懸浮劑、增稠劑,果膠還具有降低血糖、降膽固醇、防紫外線輻射、重金屬離子吸附、通便和抗癌等作用.火龍果皮中果膠[5,6]的含量較高,通過實驗方法將果膠提取出來,可以使火龍果的應用價值更大化.本文以白肉紅皮火龍果皮為原料通過酸水解提取法[7]進行果膠的提取.

    1 實驗材料與方法

    1.1 材料與儀器

    1.1.1 材料

    成熟的白肉火龍果果皮.

    1.1.2 實驗試劑

    氨水、酚酞、95%乙醇、濃鹽酸、氫氧化鈉、濃硫酸、異丙醇、硝酸銀,所用試劑均為分析純.

    1.1.3 實驗儀器

    PHS-25型pH計(江蘇省金壇市金祥龍電子有限公司)、SY-601型超級恒溫水浴鍋(天津歐諾儀器儀表有限公司)、JJ224BC電子分析天平(上?;ǔ彪娖饔邢薰荆G101-2A電熱鼓風干燥箱(南京紅龍儀器設備廠).

    2 實驗方法

    2.1 工藝流程

    原料預處理→酸水解提取→脫色→沉淀→過濾→酒精反復洗滌→紗布過濾→烘干(濾液進行濃縮處理,回收乙醇)→產(chǎn)品.

    2.2 提取方法

    將火龍果皮用清水反復沖洗.把洗凈的果皮切碎,并放到燒杯250ml中,加入蒸餾水,其液面要沒過果皮上表面.用恒溫電熱套(設置溫度為90℃)加熱并保持溫度5~10min,使果皮中的酶失活,然后過濾,得到果皮.稱取50g果皮放入大燒杯中,加入酸并把溶液的pH值調(diào)3到4之間,在實驗所需溫度的恒溫水浴箱中放置,待時間達到實驗所需時間,用雙層紗布進行趁熱過濾得到濾液.為了脫除果皮的顏色和異味,可在濾液中加入適量的活性炭,在70℃的溫度下恒溫10min,趁熱過濾,冷卻至室溫,將pH值用稀氨水調(diào)到4,在攪拌情況下加入95%的乙醇.加入1.3倍的乙醇溶液,直至乙醇濃度達到50%~60%,其濃度可以用酒精計測量.測定完成后靜置10min.用紗布多次折疊后代替濾網(wǎng)進行過濾,除去固體雜質(zhì).濾液用95%的乙醇進行三次洗滌,回收所有液體.濾液中的乙醇可以用蒸餾的方式回收.把濃縮后的粘稠狀液體放到干燥箱(設置溫度為70℃)中干燥2h,既得果膠產(chǎn)品,計算得率.

    2.3 果膠酯化度的測定

    實驗選用堿液滴定法[8]測定果膠的酯化度.具體的測定步驟為:第一步在電子天平上稱量0.5000g烘干后的果膠置于50mL干凈、干燥的燒杯中,加入15mL(5mL濃鹽酸溶于100mL60%的異丙醇后混合的)溶液,充分攪拌15分鐘,然后移入干燥的長頸漏斗中進行過濾,用混合后的溶液洗滌5次,大概每次20mL,接著再用60%的異丙醇洗滌,濾液中加入硝酸銀溶液檢測其是否有氯化物,不出現(xiàn)白色絮狀物時停止洗滌;再用60%的異丙醇洗滌,異丙醇大約為20mL,洗滌完將溶液移至100℃的電熱鼓風干燥箱中烘干90分鐘,冷卻并且稱重.第二步稱取冷卻后的物質(zhì)大約0.05g于250mL的錐形瓶中,量取2mL95%的無水乙醇加入,再加入100mL無二氧化碳的水(以防止二氧化碳與堿液反應,影響滴定的結果,會使結果偏大),為使樣品能夠全部溶解,要將瓶塞塞緊并且不停地振蕩錐形瓶.在樣品溶液中滴加酚酞指示劑2滴,然后用氫氧化鈉標準溶液開始滴定,標準溶液的摩爾濃度為0.02mol/L,滴定至溶液變成微紅色時即可,記錄下氫氧化鈉所使用的量(記為V1),即是果膠溶液的原始滴定度.在樣品中繼續(xù)加入摩爾濃度為0.5mol/L,20mL標準的氫氧化鈉溶液,強烈震蕩15分鐘,再加入等摩爾濃度鹽酸的標準溶液(0.5mol/L),此時溶液呈現(xiàn)為紅色,劇烈振搖,使反應能充分進行,振動后溶液變成無色,再加入酚酞指示劑3滴.接著再用標準的氫氧化鈉溶液滴定,摩爾濃度仍為0.02mol/L,滴定至溶液變?yōu)闇\粉色并在30秒內(nèi)不變色時為止,記錄氫氧化鈉溶液的用量(記為V2),V2是皂化滴定度.

    果膠的計算方法:

    果膠酯化度(%)=V2/(V1+V2)×100%

    在上式中,V1為果膠的原始滴定度(mL);V2為果膠溶液的皂化滴定度(mL).

    3 結果與討論

    3.1 酸種類對果膠得率的影響

    在酸性環(huán)境條件下,可以有效提高果膠的得率.本實驗選用工業(yè)中常見的濃度為0.05mol/L的三種無機酸,分別是鹽酸、硫酸、醋酸.提取結果見表1.

    由表1可知:在酸濃度相同的情況下,以硫酸為提取酸的火龍果皮果膠得率要高于其他兩種酸,其得率為1.94%.所以選擇硫酸作為提取酸.

    3.2 提取溫度對果膠得率的影響

    以硫酸為提取果膠所用酸,料液比為1:6,pH為4,提取時間為90min,提取溫度分別設置為75℃、80℃、85℃、90℃、95℃、100℃,經(jīng)過濾、沉淀、洗滌、烘干后得到果膠產(chǎn)品.對得到的果膠產(chǎn)品進行稱重,計算火龍果皮果膠得率.結果見圖2.

    由圖1可以看出,果膠得率隨著溫度的升高而不斷增加,但當溫度升高到95℃以后,得率緩慢降低.其原因可是果膠在95℃以后上的高溫狀態(tài)下易發(fā)生水解,所以果膠得率降低.所以最佳提取溫度為95℃.

    3.3 料液比對果膠得率的影響

    以硫酸為提取果膠所用酸,pH為4,提取時間為90min,提取溫度為95℃,料液比分別為1:6、1:8、1:10、1:12、1:14,經(jīng)過濾、沉淀、洗滌、烘干后得到果膠產(chǎn)品.對得到的果膠產(chǎn)品進行稱重,計算火龍果皮果膠得率.結果見圖2.

    由圖2可知,當料液比為1:10時,火龍果皮果膠得率最高.隨著料液比的增加,果膠得率呈現(xiàn)先增加后趨于幾乎不變的趨勢,可能是由于隨著料液比的增加,果膠在溶液中的溶解逐漸減緩到幾乎不變.

    3.4 提取時間對果膠得率的影響

    以硫酸為提取果膠所用酸,pH為4,提取溫度為95℃,料液比為1:10,提取時間分別為80min、100min、120min、140min、160min,經(jīng)過濾、沉淀、洗滌、烘干后得到果膠產(chǎn)品.對得到的果膠產(chǎn)品進行稱重,計算火龍果皮果膠得率.結果見圖3.

    由圖3可知,火龍果皮果膠隨著時間的增加,呈現(xiàn)逐步增大的趨勢,但再達到140min后開始逐漸減小.其原因可能是隨著提取時間的增長,火果皮中果膠被酸分解成低分子量糖類,從而降低火龍果皮果膠得率.

    3.5 浸取pH對果膠得率的影響

    以硫酸為提取果膠所用酸,提取時間為140min,提取溫度為95℃,料液比為1:10,pH分別為2、2.5、3、3.5、4、4.5,經(jīng)過濾、沉淀、洗滌、烘干后得到果膠產(chǎn)品.對得到的果膠產(chǎn)品進行稱重,計算火龍果皮果膠得率.結果見圖4.

    結果如圖4所示.在實驗pH范圍內(nèi),火龍果皮果膠得率呈先升高后降低的趨勢,得率最高時,pH值為3.5.

    3.6 果膠酯化度的標準與計算

    根據(jù)甲氧基的酯化程度,果膠通常分成兩類:一類是高脂果膠,其酯化度(DE值)>50%;而另外一類是低脂果膠,其酯化度(DE值)<50%[9].實驗測得,果膠溶液的原始滴定度V1為7.94mL,皂化滴定度V2為3.14mL.

    果膠的酯化度(%)=V1/(V1+V2)×100%

    =3.14/(7.94+3.14)×100%

    =28.34%

    本實驗所測得的火龍果果皮中果膠的酯化度為28.34%,小于50%,屬于低脂果膠.

    4 結論

    實驗以濃度為0.05mol/L的硫酸溶液作為提取酸,紅皮白肉火龍果果皮作為原材料,用酸提取其中的果膠并探索了最佳提取條件.通過探索不同提取時間、不同提取溫度、不同提取料液比、不同提取pH下的提取效果,得到最佳提取條件為提取溫度95℃,提取時間為140min,提取料液比為1:10,提取pH為3.5.在最佳條件下,火龍果皮果膠最佳得率為2.6%.實驗所得果膠產(chǎn)品碾碎后為白色粉末狀固體,測得酯化度為28.34%,屬于低酯果膠.

    ——————————

    參考文獻:

    〔1〕鄧仁菊,范建新,蔡永強.國內(nèi)外火龍果研究進展及產(chǎn)業(yè)發(fā)展現(xiàn)狀[J].貴州農(nóng)業(yè)科學,2011,39(6):188-192.

    〔2〕劉新新,劉鐘棟.低酯果膠的提取與制備技術研究進展[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2019,45(24):278-284.

    〔3〕劉敬然,華霄,譚婧,等.超高甲氧基果膠在食品乳液中的應用[J].食品安全質(zhì)量檢測學報,2019,10(02):277-283.

    〔4〕趙姍.果膠鈣微球的制備及其在固定化肝腫瘤細胞中的應用[D].大連理工大學,2018.

    〔5〕但德苗,余俠,胡珊珊,等.超聲波輔助法提取火龍果果皮多糖工藝優(yōu)化及其抗氧化活性研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2018(12):32-36.

    〔6〕岳珍珍,邢穎,岳艷霞,等.火龍果果皮加工利用現(xiàn)狀[J].現(xiàn)代食品,2019(07):17-19,22.

    〔7〕王鴻飛,李和生,謝果凰,等.桔皮中果膠提取技術的實驗分析[J].農(nóng)業(yè)機械學報,2005,36(3):82-85.

    〔8〕應珊珊.火龍果皮中果膠提取及改性研究[D].浙江大學,2014.20-22.

    〔9〕李夢.果膠酯化度的測定及凝膠流變性與分子結構關系研究[D].暨南大學,2017.17-19.

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