王 娜,李 姣,郭 晶,張?jiān)聵?,趙明禮,郝少?gòu)?qiáng),郭春明,王小武*,馬 毅
(1.天津中科博雅生物育種研究有限公司,天津300347;2.全國(guó)畜牧總站,北京100125;3.天津市畜牧獸醫(yī)研究所,天津300381)
胚胎生物技術(shù)是良種肉牛培育及快速擴(kuò)繁的有效技術(shù)手段,其中活體采卵-體外胚胎生產(chǎn)(OPU-IVP)技術(shù)通過(guò)活體采集優(yōu)秀個(gè)體卵母細(xì)胞,經(jīng)體外成熟(IVM)、體外受精(IVF)、胚胎體外培養(yǎng)(IVC)等,在體外條件下可快速獲得大量?jī)?yōu)質(zhì)胚胎。相比體內(nèi)胚胎,其生產(chǎn)效率高達(dá)4~8倍,能有效提升優(yōu)良母畜繁殖潛力[1]。目前,國(guó)外牛OPU-IVP技術(shù)已達(dá)到較高水平[2-4],部分地區(qū)已實(shí)現(xiàn)商業(yè)化應(yīng)用。但我國(guó)在該技術(shù)領(lǐng)域仍處于基礎(chǔ)研究階段,技術(shù)成果分散,且不同培養(yǎng)體系OPU-IVP的生產(chǎn)效率參差不齊,尚不能形成統(tǒng)一、高效、穩(wěn)定的配套體系用于商業(yè)化推廣。影響牛OPU-IVP效率的因素較多,現(xiàn)有研究多集中于通過(guò)在培養(yǎng)液中添加某種物質(zhì)[5-6]或優(yōu)化供體牛激素處理方案等[3,7-9]途徑來(lái)提高培養(yǎng)效率,而且卵母細(xì)胞培養(yǎng)方式主要以混合培養(yǎng)為研究基礎(chǔ)。但對(duì)于OPU來(lái)源的卵母細(xì)胞而言,需要按照牛只單獨(dú)培養(yǎng)以明確系譜。而卵母細(xì)胞培養(yǎng)液種類、單獨(dú)培養(yǎng)時(shí)微滴內(nèi)卵母細(xì)胞數(shù)等因素對(duì)肉牛OPU-IVP效率的影響,目前國(guó)內(nèi)研究較少。因此,有必要探討不同培養(yǎng)液和培養(yǎng)方式對(duì)肉牛體外胚胎生產(chǎn)效率的影響,以期為肉牛OPU-IVP技術(shù)在我國(guó)的產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用提供參考。
1.1.1 卵母細(xì)胞及凍精 肉牛卵巢采自河北大廠屠宰場(chǎng),置于含雙抗的0.9%生理鹽水(30~33 ℃)的保溫桶中,2 h內(nèi)運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室?;铙w采集的卵母細(xì)胞來(lái)自天津中科博雅生物育種研究有限公司良繁場(chǎng)16~18月齡安格斯牛。凍精(牛號(hào):020AN10820;生產(chǎn)日期:20170519)購(gòu)自先馬士商貿(mào)(上海)有限公司。
1.2.1 主要試劑 Ⅰ組培養(yǎng)液(BO系列培養(yǎng)液,包括BO-Hepes-IVM;BO-IVF;BO-IVC等)購(gòu)自英國(guó)IVF bioscience公司,該系列培養(yǎng)液以平衡鹽溶液、磷酸氫鈉、谷氨酰胺、葡萄糖、牛血清白蛋白(BSA)、慶大霉素等為基礎(chǔ)成分,BO-Hepes-IVM另含Hepes緩沖液、促性腺激素;BO-IVF另含肝素、牛磺酸、腎上腺素;BO-IVC另含透明質(zhì)酸鹽、乳酸鹽、維生素、氨基酸、抗氧化劑、生長(zhǎng)激素等。Ⅱ組培養(yǎng)液(包括IVM液[10];IVF液[11];mCR1aa液[12]等)參照文獻(xiàn)進(jìn)行配制;TCM199和胎牛血清(FBS)購(gòu)自Gibco公司;促卵泡素(FSH)注射液購(gòu)自北京畢威克生物技術(shù)有限責(zé)任公司,其余試劑均購(gòu)自Sigma公司。
1.2.2 主要設(shè)備 活體采卵儀(Easi-Scan Micro-Convex)購(gòu)自英國(guó)BCF公司;真空泵(19884/0603)和卵母細(xì)胞保溫運(yùn)輸箱(19180/0010)購(gòu)自美國(guó)MOFA公司。
(1)以屠宰場(chǎng)卵巢為卵母細(xì)胞來(lái)源,對(duì)比Ⅰ組培養(yǎng)液(BO-Hepes-IVM;BO-IVF;BO-IVC等)與Ⅱ組培養(yǎng)液(IVM液;IVF液;mCR1aa液等)對(duì)卵母細(xì)胞成熟、體外受精和IVP效率的影響;(2)以屠宰場(chǎng)卵巢為卵母細(xì)胞來(lái)源,將培養(yǎng)體系分為4組,微滴(100 μL/滴)內(nèi)卵母細(xì)胞數(shù)分別為5、10、15和20枚,探索不同卵母細(xì)胞數(shù)對(duì)胚胎發(fā)育能力的影響;(3)以O(shè)PU為卵母細(xì)胞來(lái)源,將培養(yǎng)體系分為<10枚/滴和≥10枚/滴2組,探索不同卵母細(xì)胞數(shù)對(duì)OPU胚胎發(fā)育能力的影響。
1.4.1 屠宰場(chǎng)卵母細(xì)胞采集和體外成熟 牛卵巢洗滌后抽取表面2~8 mm的卵泡,撿出包裹卵丘細(xì)胞3層及以上的卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體(COCs),洗滌液洗去多余雜質(zhì)后,用成熟液(BO-Hepes-IVM;IVM液:TCM199+0.01 IU/mL LH+0.01 IU/mL FSH+1 μg/mL E2+10% FBS)洗滌2遍,最后放入平衡2 h的成熟液中,置于培養(yǎng)箱中(38.8 ℃,5.5%CO2,飽和濕度)培養(yǎng)22~24 h。成熟的COCs放入0.1%的透明質(zhì)酸酶中,消化1~2 min去除其周圍卵丘細(xì)胞,再加入終止液(TCM199+10%FBS)終止消化作用,最后在體視顯微鏡下觀察,排出第一極體的為成熟卵母細(xì)胞,統(tǒng)計(jì)成熟率。
1.4.2 OPU卵母細(xì)胞采集和體外成熟 FSH遞減注射法進(jìn)行超排處理,B超引導(dǎo)穿刺牛卵巢上直徑為2~8 mm的卵泡,卵泡液回收后撿出卵丘細(xì)胞包裹3層及以上的COCs,放入盛有500 μL BO-Hepes-IVM液的1.5 mL離心管中,置于保溫運(yùn)輸箱(38 ℃)中,2 h內(nèi)運(yùn)回IVP實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)。
1.4.3 體外受精 參考文獻(xiàn)[11]中的方法,將體外培養(yǎng)成熟的COCs經(jīng)受精液(BO-IVF;IVF液:基礎(chǔ)液+20 μg/mL 肝素+20 mg/mL BSA)洗滌2遍后,轉(zhuǎn)移入預(yù)先平衡2 h的受精液中,放入培養(yǎng)箱待用。將凍精從液氮中取出,37 ℃無(wú)菌水中解凍,剪開凍精細(xì)管,使精液流入盛有洗精液的15 mL離心管中,離心機(jī)離心(328×g;1500r/min)2次,每次5 min,棄掉上清液,留離心管底部沉淀,最后加入300 μL受精液重懸精子沉淀。用精子計(jì)數(shù)板計(jì)算其精子濃度,向受精培養(yǎng)液中加入計(jì)算好的精液量,使其最終的受精濃度為1.0~2.0×106個(gè)/mL,在培養(yǎng)箱中(38.8 ℃,5.5%CO2,飽和濕度)精卵共孵育16~18 h。
1.4.4 早期胚胎體外培養(yǎng) 受精卵培養(yǎng)16~18 h后,放入胚胎培養(yǎng)液中(BO-IVC;mCR1aa液:基礎(chǔ)液+6 mg/mL BSA+0.15 mg/mL谷氨酰胺+10 μL/mL 非必需氨基酸+20 μL/mL 必需氨基酸)洗滌,用移液槍反復(fù)輕輕吹打以去除周圍卵丘細(xì)胞和精子,再放入預(yù)先平衡2 h的胚胎培養(yǎng)液中培養(yǎng)。BO-IVC培養(yǎng)過(guò)程中不更換新鮮培養(yǎng)液,培養(yǎng)條件為38.8 ℃,5.5%CO2,6% O2,飽和濕度。mCR1aa在第2 d更換為mCR1aa+10%FBS,以后每隔48 h半量更換培養(yǎng)液,培養(yǎng)條件為38.8 ℃,5.5%CO2,飽和濕度。培養(yǎng)過(guò)程中,第2 d統(tǒng)計(jì)卵裂及8-16細(xì)胞率,第7 d統(tǒng)計(jì)囊胚率。
所有試驗(yàn)均重復(fù)3次及以上,所得數(shù)據(jù)用SAS軟件進(jìn)行分析,對(duì)百分?jǐn)?shù)進(jìn)行比較時(shí)先經(jīng)反正弦轉(zhuǎn)化再采用方差分析,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,以P<0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。
兩種成熟液對(duì)牛COCs成熟的影響如圖1所示,BO-Hepes-IVM液培養(yǎng)的牛COCs卵丘擴(kuò)散及粘連程度高于IVM液,成熟率顯著高于IVM液(P<0.05,見表1)。成熟卵母細(xì)胞經(jīng)體外受精后,兩組培養(yǎng)液在卵裂率方面無(wú)顯著差異(P>0.05),但Ⅰ組培養(yǎng)液的8~16細(xì)胞率及囊胚率顯著高于Ⅱ組培養(yǎng)液(P<0.05)(見表2)。
選用Ⅰ組培養(yǎng)液,微滴培養(yǎng)屠宰場(chǎng)來(lái)源卵母細(xì)胞,各組卵裂率無(wú)顯著差異(P>0.05),5、10、15枚/滴三組的8~16細(xì)胞率也無(wú)顯著差異(P>0.05),但20枚/滴組的8~16細(xì)胞率顯著高于其他3組(P<0.05),就囊胚率而言,20枚/滴組顯著高于5枚/滴組(P<0.05),與10、15枚/滴兩組無(wú)顯著差異(P>0.05)(見表3)。進(jìn)一步分析,微滴內(nèi)卵母細(xì)胞數(shù)≥10枚/滴組的8~16細(xì)胞率及囊胚率顯著高于<10枚/滴組(P<0.05)。
表1 兩種成熟液對(duì)牛COCs成熟率的影響Table 1 Effects of two mature mediums on the maturation rates of bovine COCs %
注:同列數(shù)據(jù)肩標(biāo)不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),相同小寫字母或無(wú)字母表示差異不顯著(P>0.05)。下同。
Note: In the same column, different letter superscripts mean significant differences (P<0.05), the same letter or no letter superscripts mean insignificant difference (P>0.05).The same below.
表2 不同培養(yǎng)液對(duì)牛IVP效率的影響Table 2 Effects of different culture mediums on the bovine IVP rates %
本試驗(yàn)獲得的頭均可用OPU卵母細(xì)胞數(shù)在3~21之間,每頭牛之間單獨(dú)微滴培養(yǎng),結(jié)果表明,兩組卵裂率無(wú)顯著差異(P>0.05),但≥10枚/滴的8~16細(xì)胞率及囊胚率顯著高于<10枚/滴組(P<0.05)(見表4)。
表3 微滴內(nèi)卵母細(xì)胞數(shù)對(duì)牛胚胎生產(chǎn)效率的影響Table 3 Effects of the number of oocytes in droplets on the production efficiency of bovine embryos %
目前我國(guó)肉牛良種覆蓋率低,提高牛OPU-IVP效率對(duì)發(fā)揮優(yōu)良種質(zhì)資源,推進(jìn)我國(guó)牛業(yè)發(fā)展具有重要意義[13]。本研究比較了兩組培養(yǎng)液對(duì)肉牛卵母細(xì)胞成熟及后續(xù)發(fā)育能力的影響,結(jié)果表明BO-Hepes-IVM的成熟率顯著高于配制的IVM液,這可能與BO-Hepes-IVM中添加了少量葡萄糖有關(guān)。已有研究表明,葡萄糖作為唯一的能量來(lái)源,卵母細(xì)胞不能直接利用,需要依賴周圍的卵丘細(xì)胞將其代謝為丙酮酸后,通過(guò)單羧酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)進(jìn)入線粒體并經(jīng)線粒體呼吸鏈代謝支持卵母細(xì)胞核成熟[14],成熟液中添加少量葡萄糖可促進(jìn)牛卵母細(xì)胞恢復(fù)減數(shù)分裂,較快達(dá)到核成熟階段,而高濃度的葡萄糖則會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)的活性氧(ROS)含量升高,使卵母細(xì)胞產(chǎn)生氧化應(yīng)激,損傷細(xì)胞膜、線粒體、核DNA等,造成卵母細(xì)胞發(fā)育能力下降或凋亡[15-16]。
表4 微滴內(nèi)OPU卵母細(xì)胞數(shù)對(duì)牛胚胎生產(chǎn)效率的影響Table 4 Effects of the number of OPU oocytes in droplets on the production efficiency of bovine embryos %
兩組培養(yǎng)體系對(duì)卵母細(xì)胞體外受精后的卵裂率無(wú)顯著影響,這與Somfai等[17]對(duì)比IVD101培養(yǎng)液與CR1aa培養(yǎng)液在卵裂率方面的研究結(jié)果一致;但在8~16細(xì)胞率及囊胚率方面,Ⅰ組培養(yǎng)液顯著高于Ⅱ組培養(yǎng)液,這可能與BO-Hepes-IVM較好的成熟效果和BO-IVC一步式培養(yǎng)所營(yíng)造的全程低氧(6%)氣體條件有關(guān)。一方面卵母細(xì)胞充分成熟是成功受精的前提[18],另一方面胚胎培養(yǎng)過(guò)程中使用的O2濃度是牛體外胚胎產(chǎn)量的重要決定因素[19]?,F(xiàn)階段國(guó)內(nèi)體外胚胎培養(yǎng)體系大多使用20%的O2濃度,而高O2濃度培養(yǎng)會(huì)導(dǎo)致ROS的產(chǎn)生增加,損傷細(xì)胞的線粒體功能,導(dǎo)致胚胎死亡[20]。并且有研究證實(shí)當(dāng)O2濃度從20%降至5%時(shí),可觀察到胚胎發(fā)育率明顯增加[20-22]。而對(duì)于Ⅱ組培養(yǎng)液,使用的是20%的O2濃度,并且在后期培養(yǎng)過(guò)程中需要頻繁更換培養(yǎng)液,增加了對(duì)胚胎發(fā)育的人為干擾,可能是造成該培養(yǎng)體系效率低的主要原因。因此,Ⅰ組培養(yǎng)液更適合OPU卵商業(yè)化推廣使用。
在早期胚胎培養(yǎng)過(guò)程中,胚胎可以產(chǎn)生多種生長(zhǎng)因子(IGF-1,TGF-α,PDGF,EGF等)以自分泌和旁分泌的方式促進(jìn)自身或鄰近的胚胎發(fā)育和分化,另外胚胎體外發(fā)育還具有密度依賴性,在相對(duì)較小的體積內(nèi)有較快的發(fā)育,這可以將自分泌因子的影響作用發(fā)揮到最大化[23-24],因此,增加單位體積內(nèi)胚胎數(shù)量可以提高胚胎發(fā)育率。但較小體積也容易使有害代謝產(chǎn)物堆積,又不利于胚胎發(fā)育[24]。由此可見,一定體積內(nèi)合適的胚胎培養(yǎng)數(shù)量對(duì)提高胚胎發(fā)育效率至關(guān)重要。本研究通過(guò)屠宰場(chǎng)來(lái)源卵母細(xì)胞進(jìn)行微滴培養(yǎng),試驗(yàn)結(jié)果表明5、10、15枚/滴3組之間的卵裂率無(wú)顯著差異,但8~16細(xì)胞率顯著低于20枚/滴,后期培養(yǎng)發(fā)現(xiàn)5枚/滴的囊胚率顯著低于20枚/滴,說(shuō)明5枚/滴組中,胚胎之間的自分泌因子效應(yīng)較弱。而10、15枚/滴的最終囊胚率與20枚/滴無(wú)顯著差異,說(shuō)明10枚及以上的COCs單獨(dú)微滴(100 μL/滴)培養(yǎng)可以獲得較為理想的培養(yǎng)效果,并且以10枚為分界,合并數(shù)據(jù)分析也表明≥10枚/滴組的8~16細(xì)胞率及囊胚率顯著高于<10枚/滴組,這為OPU卵母細(xì)胞單獨(dú)培養(yǎng)提供了實(shí)踐參考。
肉牛OPU卵母細(xì)胞微滴培養(yǎng)結(jié)果表明,滴內(nèi)卵母細(xì)胞數(shù)不會(huì)顯著影響其卵裂率,但培養(yǎng)10枚及以上COCs的8~16細(xì)胞率及囊胚率顯著高于10枚以下組的結(jié)果,這與屠宰場(chǎng)來(lái)源卵母細(xì)胞分組培養(yǎng)結(jié)果一致,但培養(yǎng)效率高于屠宰場(chǎng)來(lái)源的卵母細(xì)胞,與以往早期研究結(jié)論一致[25-26],但與許紅喜等[27]的研究結(jié)論相反,可能是不同技術(shù)人員所用的卵母細(xì)胞質(zhì)量和數(shù)量不同導(dǎo)致的。此外,本研究中的培養(yǎng)效率高于周木清[28]、江明生等[29]在奶牛OPU卵上的培養(yǎng)結(jié)果,也高于和占星等[30]在BMY牛OPU卵上的培養(yǎng)結(jié)果,說(shuō)明本試驗(yàn)所采用的肉牛OPU卵母細(xì)胞培養(yǎng)方式可以為商業(yè)化推廣提供參考。
本研究結(jié)果表明,Ⅰ組培養(yǎng)液操作簡(jiǎn)便,IVC過(guò)程無(wú)需更換培養(yǎng)液且效率穩(wěn)定,有助于牛OPU-IVP技術(shù)的快速產(chǎn)業(yè)化。肉牛OPU卵母細(xì)胞以微滴培養(yǎng)不低于10枚的方式單獨(dú)培養(yǎng),可以獲得較高的囊胚發(fā)育率。