賴宇堯 徐培光 賈利軍
【摘要】 目的 對比全自動微粒子化學發(fā)光免疫實驗 (CMIA) 與TP-IgM抗體檢測 (TP-ELISA) 在梅毒檢測中的差異。方法 100例TPPA檢測的疑似梅毒患者血清樣本為研究對象, 分別采用CMIA和TP-ELISA進行檢測。以梅毒螺旋體明膠顆粒凝集試驗(TPPA)檢測為診斷金標準, 對比兩種檢測方法的診斷價值差異。結果 TPPA檢測陽性87例, 陰性13例。CMIA檢測陽性82例, 其中真陽性79例, 假陽性3例;陰性18例, 其中真陰性10例, 假陰性8例。TP-ELISA檢測陽性74例, 其中真陽性65例, 假陽性9例;陰性26例, 其中真陰性4例, 假陰性22例。CMIA和TP-ELISA診斷梅毒的敏感度分別為90.80%和74.71%, 特異度分別為76.92%和30.77%, 診斷準確度分別為89.00%和69.00%。CMIA診斷敏感度、特異度以及診斷準確性均顯著高于TP-ELISA, 差別均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。結論 CMIA在梅毒的診斷中具有較好的敏感度、特異度以及診斷準確度, 可以作為梅毒血清學檢測的首選方法。
【關鍵詞】 全自動微粒子化學發(fā)光免疫實驗;TP-IgM抗體檢測;梅毒檢測
DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2020.13.035
梅毒是由梅毒螺旋體引起的慢性、系統(tǒng)性性傳播疾病, 主要通過性接觸傳播, 每年全球約有1200萬新發(fā)梅毒病例, 在我國發(fā)病率約為30/100000~40/100000左右[1]。梅毒的診斷主要依賴于流行病學病史、臨床表現(xiàn)以及實驗室檢查等。梅毒血清學檢查是臨床常用的檢查手段, 包括甲苯胺紅不加熱血清學試驗(TRUST)、TPPA、TP-ELISA等[2]。TPPA是目前血清學檢測的金標準, 但是其操作復雜且依賴肉眼對結果進行判讀, 對操作人員技術要求高[3]。CMIA是近年來梅毒檢測的新技術, 但是其敏感度、特異度和診斷價值等尚未得到公認[4]。因此, 本院對100例確診梅毒的患者分別采用CMIA和TP-ELISA進行檢測, 對比兩種檢測在梅毒診斷中的優(yōu)劣, 現(xiàn)將結果報告如下。
1 資料與方法
1. 1 一般資料 收集2015年4月~2018年6月本院100例采用TPPA檢測的疑似梅毒患者血清樣本為研究對象, 其中男62例, 女38例;平均年齡(31.37±9.39)歲。TPPA檢測陽性87例, 陰性13例。
1. 2 納入與排除標準 納入標準:①流行病學病史、臨床表現(xiàn)懷疑為梅毒患者;②血清樣本保留完好;③取得患者知情同意并通過醫(yī)院倫理委員會審核。排除標準:①血清樣本未保留;②合并其他性傳播疾病;③患者入院前接受抗梅毒治療。
1. 3 儀器與試劑 選擇YL-3000型全自動微粒子化學發(fā)光儀器(亞輝龍)及配套試劑。選擇日本富士梅毒TPPA檢測試劑盒(廣州市宜康生物科技有限公司)以及USCNK TP Elisa試劑盒(上海恒斐生物科技有限公司)。
1. 4 檢測方法 患者入院后取次日清晨空腹靜脈血3 ml, 離心分離血清后均采用TPPA、CMIA以及TP-ELISA技術檢測, 具體操作步驟參照說明書。TPPA陽性判定以反應孔細胞沉積為主要判斷對象, 以不規(guī)則沉積和凝集為陽性, 以光滑紐扣狀為陰性。CMIA操作及結果判讀均由設備完成, 以S/CO>1.0為陽性。TP-ELISA結果由酶標儀判讀。對于所有弱陽性均進行再次檢測。
1. 5 統(tǒng)計學方法 采用SPSS19.0統(tǒng)計學軟件處理數(shù)據(jù)。計數(shù)資料以率(%)表示, 采用χ2檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。
2 結果
2. 1 CMIA與TPPA檢測結果 CMIA檢測陽性82例, 其中真陽性79例, 假陽性3例;陰性18例, 其中真陰性10例, 假陰性8例。見表1。
2. 2 TP-ELISA與TPPA檢測結果 TP-ELISA檢測陽性74例, 其中真陽性65例, 假陽性9例;陰性26例, 其中真陰性4例, 假陰性22例。見表2。
2. 3 CMIA和TP-ELISA診斷效能對比 CMIA和TP-ELISA診斷梅毒的敏感度分別為90.80%和74.71%, 特異度分別為76.92%和30.77%, 診斷準確度分別為89.00%和69.00%。CMIA診斷敏感度、特異度以及診斷準確性均顯著高于TP-ELISA, 差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表3。
3 討論
梅毒是由梅毒螺旋體引起的一種慢性、系統(tǒng)性性傳播疾病, 傳播速度快、累及器官多、臨床表現(xiàn)多樣、潛伏期及病程長等, 梅毒的臨床診斷存在很大的困
難[5]。同時, 人類對梅毒尚無先天免疫, 也無法通過接種疫苗獲得免疫, 僅可通過感染后獲得感染性免疫, 且有再次感染的風險[6]。因此, 對梅毒早期診斷和治療對患者自身和臨床輸血工作的開展十分重要。
梅毒感染后產(chǎn)生的抗體主要包括特異性抗體免疫球蛋白M(IgM)、免疫球蛋白G(IgG)以及非特異性抗體反應素[7]。人體首先產(chǎn)生特異性抗體IgM, 可在感染2周后測出, 治療后可轉陰, 再發(fā)感染后又為陽性, 因此, IgM是活動性梅毒的表現(xiàn)[8]。在感染4周后產(chǎn)生特異性抗體IgG, 治療后在血清中維持很長一段時間, 甚至終生可在血清中測出[9]。反應素一般在感染5~7周后產(chǎn)生, 為梅毒螺旋體破壞組織后釋放的一種抗原心磷脂刺激產(chǎn)生的非特異性抗體[10]。
梅毒血清學實驗主要包括熒光螺旋體抗體吸收試驗、梅毒螺旋體血球凝集、梅毒螺旋體明膠凝集試驗、梅毒螺旋體酶聯(lián)免疫吸附試驗以及梅毒螺旋體快速診斷實驗[11]。
TPPA是梅毒血清學檢測的金標準, 使用明膠將梅毒特異性抗原進行包被, 然后與血清中特異性抗體產(chǎn)生凝集反應, 通過肉眼對結果進行觀察和判定[12]。TPPA法診斷梅毒的敏感度和特異度均較高, 但具有是操作復雜、耗時長、容易受檢測者主觀影響等缺點。因此, 選擇一種新的梅毒檢測方法顯得尤為重要。
本院以TPPA為金標準, 對比了TP-ELISA和CMIA在梅毒檢測中的價值, 結果顯示, CMIA檢測的敏感度、特異度及準確度均顯著高于TP-ELISA, 差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。TP-ELISA與TPPA檢測原理相似, 可批量進行檢測、周期短、結果穩(wěn)定性高, 但是容易受到其他非梅毒密螺旋體感染、抗體滴度等因素影響, 且不同廠家試劑盒制作工藝差異較大, 在臨床應用中存在一定的局限性。CMIA是梅毒螺旋體檢測的新技術, 通過將重組的梅毒螺旋體特異性抗原(Tpn15、17和47)為固相抗原, 包裹與稀釋后加入樣本[13]??乖涣W訒c樣本中梅毒螺旋體結合, 并與加入的預觸發(fā)液和觸發(fā)液反應出現(xiàn)化學發(fā)光, 檢測的精確度和準確度較高。同時, CMIA采用機器檢測, 排除了人為因素的影響, 其檢測速度和穩(wěn)定性均高于傳統(tǒng)檢測方法。
綜上所述, CMIA在梅毒的檢測中敏感度、特異度和準確度顯著高于TP-ELISA, 可以替代TP-ELISA成為血清學檢測的首選方法。
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[收稿日期:2020-01-16]