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      電針對T10脊髓橫斷后神經(jīng)源性膀胱大鼠尿流動力學(xué)及Wnt/β-catenin信號通路的影響

      2020-04-20 05:27:38鄧悅寧周達(dá)岸馬賢德姜亞男
      關(guān)鍵詞:源性電針脊髓

      鄧悅寧,周達(dá)岸,馬賢德,陳 丹, 石 丹, 姜亞男

      (1.錦州醫(yī)科大學(xué)附屬第三醫(yī)院康復(fù)醫(yī)學(xué)科,遼寧 錦州 121000;2.遼寧中醫(yī)藥大學(xué)教學(xué)實驗中心,遼寧 沈陽 110000)

      神經(jīng)源性膀胱是完全性脊髓損傷患者最常見和最嚴(yán)重的并發(fā)癥之一,其發(fā)病率呈逐年增長趨勢。按照損傷平面的不同,脊髓損傷可分為骶髓損傷和骶上脊髓損傷(suprasacral cord injury, SSCI),其中SSCI患者占80%以上。完全性SSCI后出現(xiàn)神經(jīng)源性膀胱的原因是骶髓排尿中樞失去了腦橋排尿中樞的正常抑制,導(dǎo)致膀胱逼尿肌出現(xiàn)無抑制性的反復(fù)收縮,也是誘發(fā)上尿路損害及腎臟衰竭等泌尿系統(tǒng)并發(fā)癥的主要原因,嚴(yán)重者危及生命,最終成為完全性SSCI患者晚期死亡的首位原因[1-4]。針刺治療SSCI由來已久,其臨床治療作用較好[5-6]。電針治療是在傳統(tǒng)針刺的基礎(chǔ)上,進(jìn)行配伍穴位間連接電針儀正負(fù)電極,以適宜強(qiáng)度刺激穴位達(dá)到治病作用的一種療法[7-8]。電針對脊髓損傷后神經(jīng)源性膀胱的療效尤為顯著[9-11]。

      Wnt/β-catenin信號通路是哺乳動物神經(jīng)干細(xì)胞發(fā)育的關(guān)鍵信號通路之一[12],該信號通路在神經(jīng)損傷過程中發(fā)揮調(diào)控細(xì)胞增殖和損傷修復(fù)的作用[13]?;谏鲜鲅芯?,本研究采用T10脊髓橫斷(spinal cord transection,SCT)后神經(jīng)源性膀胱模型大鼠為研究對象,以電針“大椎”和“次髎”穴為干預(yù)手段,通過檢測各組大鼠尿流動力學(xué)和脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA及蛋白表達(dá)水平,探討電針“大椎”和“次髎”穴對T10 SCT后神經(jīng)源性膀胱的治療作用及其機(jī)制,為中國傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)治療神經(jīng)源性膀胱提供理論支持。

      1 材料與方法

      1.1 實驗動物、主要試劑和儀器48只SPF級SD雌性大鼠,體質(zhì)量180~220 g,由遼寧長生生物技術(shù)有限公司提供,動物許可證號:SCXK(遼)2016-0001,實驗動物購入后,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周??筗nt-1(ab85060)、抗β-catenin(ab32572)和抗β-actin(ab8227)抗體(美國Abcam公司),二抗(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司),PCR試劑盒(日本TaKaRa公司),水合氯醛(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑沈陽有限公司)。電泳儀(DYY-6C型,北京六一儀器設(shè)備廠),凝膠成像分析系統(tǒng)(4200SF型,中國天能公司),數(shù)碼顯微鏡(DM2000型,德國徠卡公司),PCR儀(Bio-Rad型,美國伯樂公司),16通道生物機(jī)能實驗系統(tǒng)(BL-420S型,成都泰盟科技有限公司),電針治療儀(SDZ-Ⅲ型)和華佗牌針灸針(蘇州醫(yī)療用品廠有限公司)。

      1.2 實驗分組和模型復(fù)制方法SPF級SD雌性大鼠48只,隨機(jī)分為假手術(shù)組(12只)和模型組(36只)。采用手術(shù)方式建立T10 SCT模型。采用1%戊巴比妥鈉(40 mg·kg-1)腹腔注射麻醉,大鼠俯臥位固定于手術(shù)臺上,背部脊柱胸椎下段備皮,碘伏消毒,根據(jù)解剖定位T10椎體棘突,以其為中心沿背側(cè)正中線切開皮膚,切口長約2 cm,然后向下逐層分離皮下組織,沿椎板切開豎脊肌并向左右鈍性分離,用拉鉤左右拉開肌肉組織,暴露T9、T11胸椎的棘突和椎板。用手術(shù)刀切開T9-T10棘間韌帶,咬骨鉗自T9-T10椎板間隙緊貼椎板平行脊髓進(jìn)鉗,輕輕咬除椎板,直至咬除整個T10椎板及兩側(cè)的關(guān)節(jié)突。咬骨過程中保護(hù)脊髓硬脊膜、血管和神經(jīng)根。以手術(shù)刀柄佩戴尖刀片,于暴露的脊髓上緣橫向切斷脊髓,反復(fù)切割3~5次,以確保完全離斷。此時可見大鼠雙下肢抽搐,尾巴甩動并松馳,提示脊髓完全橫斷。然后,用彎的眼科鑷輕輕挑起脊髓斷端,并從斷端處用顯微外科剪刀剪斷并取出1~2 mm長的脊髓組織,確保脊髓完全離斷。取出后,脊髓發(fā)生內(nèi)縮,形成1個空洞,用明膠海綿充分止血,并填充空洞,逐層縫合肌肉、皮下組織及皮膚。假手術(shù)組僅暴露T9~T11,并用咬骨鉗去除T10棘突,然后逐層縫合。模型組采用脊髓損傷行為學(xué)(Basso Beattie Bresnahan,BBB)評分和尿流動力學(xué)對術(shù)后大鼠進(jìn)行模型評價,造模成功的大鼠再次隨機(jī)分為模型對照組、電針組和電針對照組。

      1.3 模型評價術(shù)后大鼠完全蘇醒后,對各組大鼠脊髓橫斷情況采用BBB評分法進(jìn)行評價[14]。評分標(biāo)準(zhǔn)由0~21分組成,0分為無可見雙后肢運(yùn)動,分?jǐn)?shù)逐漸遞增,雙后肢運(yùn)動功能逐漸改善,21分為持續(xù)狀態(tài)的掌面移動、協(xié)調(diào)步態(tài)、足趾抓地、軀干穩(wěn)定、尾巴翹起,活動過程中身體與主動爪位置始終處于平行狀態(tài)。由3人采用單盲法對評價結(jié)果分別進(jìn)行記錄并整理分析。大鼠T10 SCT后雙后肢呈拖動前行狀態(tài),無任何運(yùn)動,計為0分,表明大鼠脊髓橫斷模型復(fù)制成功。術(shù)后大鼠正常飼養(yǎng),模型組大鼠每日手法排尿,記錄尿量。連續(xù)2周后,大鼠排尿量穩(wěn)定,第15天測定各組大鼠的尿流動力學(xué)指標(biāo),評估T10 SCT后神經(jīng)源性膀胱大鼠的造模情況。

      1.4 各組大鼠干預(yù)措施大鼠正常飼養(yǎng)至第15天,將T10 SCT后神經(jīng)源性膀胱大鼠模型復(fù)制成功后再次隨機(jī)分為模型對照組、電針組和電針對照組。

      假手術(shù)組:再次分組后不做處理,正常飼養(yǎng)1周;模型對照組:再次分組后不做處理,正常飼養(yǎng)1周;電針組:以0.3 mm×25.0 mm毫針直刺,連接電針儀,正極連接“大椎”穴,負(fù)極連接“次髎”穴,電針儀參數(shù)設(shè)定為疏密波,10/50 Hz(疏波10 Hz/9 s,密波 50 Hz/5 s),留針20 min,強(qiáng)度以針刺處出現(xiàn)規(guī)律性收縮抽動為宜,每日1次,連續(xù)1周。參照《實驗針灸學(xué)》大鼠穴位圖譜,準(zhǔn)確定位。“大椎”穴:背部正中第 7 頸椎和第 1 胸椎間,直刺5 mm?!按误s”穴:第2、3骶骨的棘突間隙正中偏上旁開5~10 mm(左右隔日交替進(jìn)行),直刺5~12 mm;電針對照組:針刺點分別選取以“大椎”和“次髎”穴為中心旁開1 cm處(遠(yuǎn)脊柱側(cè))針刺,電針儀參數(shù)同上,留針20 min,每日1次,連續(xù)1周。

      1.5 尿流動力學(xué)檢測末次電針干預(yù)完成后1 h,各組大鼠以1%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉(40 mg·kg-1),麻醉后手法按壓大鼠下腹部進(jìn)行輔助排尿,排空膀胱后將大鼠仰臥位固定在手術(shù)臺上,導(dǎo)管經(jīng)三通管連接測壓通道及微量灌注泵,排空管腔氣體,導(dǎo)管潤滑經(jīng)尿道插入膀胱并固定,此時壓力值為膀胱基礎(chǔ)壓力(cmH2O),隨后以7.5 mL·h-1的速度進(jìn)行溫生理鹽水灌注,觀察隨膀胱灌注量增加其膀胱壓力的變化。尿道口有液體流出時,即膀胱漏尿點壓力(cmH2O)和膀胱最大容量(mL)。漏尿后繼續(xù)灌注至逼尿肌壓力穩(wěn)定,取壓力峰值為膀胱最大壓力(cmH2O),計算得出膀胱順應(yīng)性(mL·cm-1H2O)。膀胱順應(yīng)性=膀胱最大容量/(膀胱最大壓力-膀胱基礎(chǔ)壓力)。

      1.6 脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平檢測末次電針干預(yù)后行尿流動力學(xué),檢測完成后,于各組大鼠中隨機(jī)抽取6只,頸椎脫位處死大鼠,于SCT處,向下截取脊髓殘端5 mm,置于1.5 mL凍存管中,凍存于-80℃冰箱中,用于Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平檢測。

      采用RT-PCR法檢測各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平。Trizol裂解法提取脊髓組織中總RNA,采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,然后再以Wnt-1和β-catenin擴(kuò)增引物為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物在瓊脂糖凝膠中進(jìn)行水平電泳,凝膠成像分析系統(tǒng)中采集電泳圖像,并測定目的基因和內(nèi)參基因擴(kuò)增產(chǎn)物條帶的積分光密度(integrated optical density,IOD)值,以Wnt-1和β-catenin條帶與β-actin條帶灰度值比值表示W(wǎng)nt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平。引物序列見表1。

      表1 Wnt-1和β-catenin引物序列

      1.7 脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平檢測末次電針干預(yù)后行尿流動力學(xué),檢測完成后,于各組大鼠中隨機(jī)抽取6只,頸椎脫位處死大鼠,于SCT處,向上截取脊髓殘端5 mm,浸泡于4%多聚甲醛溶液中,常溫固定24 h以上,用于免疫熒光法檢測Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)。

      常規(guī)制備石蠟切片,切片厚度為8 μm,采用免疫熒光法檢測脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平。石蠟切片經(jīng)二甲苯和梯度乙醇脫蠟至水,抗原修復(fù)后,5% BSA封閉1 h后,滴加一抗工作液(1∶300),4℃冰箱中孵育過夜,次日洗片3次后,滴加FITC標(biāo)記的二抗工作液(1∶500),37℃孵育1 h,洗片3次,滴加DAPI染核10 min,洗片3次,防熒光淬滅封片劑封片,熒光顯微鏡下觀察Wnt-1和β-catenin蛋白陽性表達(dá)情況。隨機(jī)選取5個視野,計數(shù)每個視野中的陽性表達(dá)細(xì)胞數(shù),以其平均數(shù)作為Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平。

      2 結(jié) 果

      2.1 各組大鼠一般情況術(shù)前48只大鼠經(jīng)過適應(yīng)性飼養(yǎng)后,活動度正常,毛色潔白富有光澤。術(shù)后,假手術(shù)組大鼠活動度減少,飲水量減少,其余未見異常;模型組大鼠雙下肢基本無活動,當(dāng)天未出現(xiàn)死亡情況,次日死亡2只,每日手法排尿,至術(shù)后第14天,共計死亡9只,剩余27只。模型評價后將造模組隨機(jī)分為模型對照組、電針組和電針對照組,每組9只。至實驗結(jié)束時,模型對照組剩余6只,電針組剩余8只,電針對照組剩余7只。假手術(shù)組大鼠基本恢復(fù)正常,無行動和排尿障礙出現(xiàn)。電針組大鼠活動度和飲水量等明顯多于模型對照組和電針對照組。

      2.2 2組大鼠 BBB評分與假手術(shù)組(21.000±0.000)比較,模型組大鼠BBB評分(0.417±0.692)明顯降低(P<0.01),證明大鼠SCT模型復(fù)制成功。

      2.3 2組大鼠尿流動力學(xué)指標(biāo)水平與假手術(shù)組比較,模型組大鼠膀胱基礎(chǔ)壓力、最大壓力和漏尿點壓力均明顯升高(P<0.01),大鼠膀胱最大容量和順應(yīng)性明顯降低(P<0.01),證明SCT后神經(jīng)源性膀胱大鼠模型復(fù)制成功。見表2。

      2.4 電針干預(yù)后各組大鼠尿流動力學(xué)指標(biāo)水平與假手術(shù)組比較,模型對照組、電針對照組和電針組大鼠膀胱基礎(chǔ)壓力和最大壓力升高(P<0.05或P<0.01),膀胱最大容量和順應(yīng)性明顯降低(P<0.01);模型對照組和電針對照組大鼠膀胱漏尿點壓力升高(P<0.01)。與模型對照組比較,電針組大鼠膀胱基礎(chǔ)壓力、最大壓力和漏尿點壓力明顯降低(P<0.01),膀胱最大容量和順應(yīng)性升高(P<0.01)。與電針對照組比較,電針組大鼠膀胱基礎(chǔ)壓力、最大壓力和漏尿點壓力降低(P<0.05或P<0.01),膀胱最大容量和順應(yīng)性升高(P<0.05或P<0.01)。見表3。

      表2 假手術(shù)組和模型組大鼠尿流動力學(xué)指標(biāo)水平

      GroupnBladder base pressure(cmH2O)Bladder maxpressure(cmH2O)Bladder leakage point pressure(cmH2O)Bladder max capacity(V/mL)Bladder compliance(mL·cm-1H2O)Sham operation1219.800±1.91438.025±2.71837.325±2.8975.100±1.4210.292±0.062Model 2736.907±2.472?60.344±2.967?53.815±2.721?0.701±0.164?0.044±0.016?

      *P<0.01 compared with sham operation group.

      表3 電針干預(yù)后各組大鼠尿流動力學(xué)指標(biāo)水平

      GroupBladder base pressure(cmH2O)Bladder maxpressure(cmH2O)Bladder leakage point pressure(cmH2O)Bladder max capacity(V/mL)Bladder compliance(mL·cm-1H2O)Sham operation19.833±3.08437.967±2.81936.633±6.5344.800±1.3670.316±0.153Model control 35.850±4.756??58.883±6.030??52.817±6.703??0.593±0.185??0.043±0.030??Electro-acupuncture control 33.883±5.622??53.067±5.183??50.033±7.784??0.653±0.195??0.050±0.023??Electro-acupuncture 26.400±3.166?△##44.267±5.655?△##40.333±7.557△#1.832±0.271??△##0.162±0.074??△#

      *P<0.05,**P<0.01 compared with sham operation group;△P<0.01 compared with model control group;#P<0.05,##P<0.01 compared with electro-acupuncture control group.

      2.5 各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平與假手術(shù)組比較,模型對照組、電針組和電針對照組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平明顯升高(P<0.01)。與模型對照組比較,電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平明顯升高(P<0.01);與電針對照組比較,電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平明顯升高(P<0.01)。見圖1和表4。

      M:250 bp marker;Lane 1:Sham operation group;Lane 2:Model control group;Lane 3:Electro-acupuncture group;Lane 4:Electro-acupuncture control group.

      圖1 各組大鼠脊髓組織Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)電泳圖

      Fig.1 Electrophoregram of expressions of Wnt-1 and β-catenin mRNA in spinal cord tissue of rats in various groups

      表4 各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平

      GroupWnt-1 mRNAβ-catenin mRNASham operation0.210±0.0330.222±0.034Model control0.323±0.037?0.346±0.069?Electro-acupuncture control0.349±0.063?0.328±0.059?Electro-acupuncture 0.491±0.092?△#0.469±0.048?△#

      *P<0.01 compared with sham operation group;△P<0.01 compared with model control group;#P<0.01 compared with electro-acupuncture control group.

      2.6 各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平與假手術(shù)組比較,模型對照組、電針對照組和電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.01)。與模型對照組比較,電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.01);與電針對照組比較,電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.01)。見表5、圖2(插頁一)和圖3(插頁一)。

      3 討 論

      電針治療脊髓損傷后神經(jīng)源性膀胱的療效明確[15-16]。但以往治療中取穴繁多,形成多條電流刺激作用在模型大鼠體內(nèi)。本實驗選取“大椎”和“次髎”兩穴,從西醫(yī)講,完全性SSCI后神經(jīng)源實驗大鼠T10 SCT后,模型組大鼠BBB評分平均為0.417分,明顯低于假手術(shù)組,無可見大鼠雙后肢運(yùn)動,證明SCT模型制備成功;在此基礎(chǔ)上,模型組術(shù)后第15天經(jīng)尿流動力學(xué)檢測形成高容量、低順應(yīng)性神經(jīng)源性膀胱(逼尿肌反射亢進(jìn))模型大鼠。電針干預(yù)后模型大鼠膀胱基礎(chǔ)壓力、最大壓力和漏尿點壓力均較模型對照組明顯降低,膀胱最大容量和順應(yīng)性明顯升高,結(jié)果證明電針干預(yù)SCT后神經(jīng)源性膀胱模型大鼠,其尿流動力學(xué)檢測指標(biāo)明顯改善,形成“低壓儲尿”膀胱,有效改善了T10 SCT后神經(jīng)源性膀胱大鼠的排尿功能。為了探討可能的作用機(jī)制,對各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA及蛋白的表達(dá)水平進(jìn)行了檢測。

      表5 各組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin蛋白表達(dá)水平

      GroupWnt-1 proteinβ-catenin proteinSham operation14.667±3.32715.667±3.141Model control24.333±3.077?24.667±2.944?Electro-acupuncture control24.000±2.449?25.667±2.066?Electro-acupuncture 40.000±6.066?△#44.500±6.348?△#

      *P<0.01 compared with sham operation group;△P<0.01 compared with model control group;#P<0.01 compared with electro-acupuncture control group.

      性膀胱是低級排尿中樞失去了高級排尿中樞的抑制,形成“高壓、低容量、低順應(yīng)性”膀胱,逼尿肌反射亢進(jìn)[17]?!按笞怠毖ㄎ挥诩顾枭隙耍娏鲝脑撗ㄏ蛳聜鲗?dǎo),作用在脊髓損傷處,促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù),改善低級排尿中樞的失控狀態(tài)[18]。“次髎”穴位于第2骶后孔處,其內(nèi)有骶神經(jīng)通過,電針該穴可調(diào)節(jié)逼尿肌的協(xié)調(diào)運(yùn)動,改善模型大鼠的排尿功能[19];從中醫(yī)講,脊髓損傷病在督脈,致腎陽虧虛,膀胱氣化失司,出現(xiàn)“遺溺”等癥狀。電針“大椎”和“次髎”穴,可使經(jīng)絡(luò)通利,陽氣溫煦,恢復(fù)膀胱氣化功能。由此確定主要治療穴位點,并采用尿流動力學(xué)進(jìn)行檢測。

      Wnt信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在神經(jīng)損傷過程中發(fā)揮著重要的調(diào)控細(xì)胞增殖和損傷修復(fù)的作用[20]。目前研究較多的是有β-catenin參與的經(jīng)典Wnt信號通路[21-22]。Wnt-1是經(jīng)典通路的配體,在神經(jīng)發(fā)生的過程中起到非常重要的作用[23]。Wnt-1配體與細(xì)胞膜受體結(jié)合后,β-catenin能夠在胞內(nèi)短暫集聚并移至核內(nèi),具有促進(jìn)受損組織細(xì)胞修復(fù)的功能[24]。本實驗中,模型對照組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平明顯高于假手術(shù)組,表明SCT后Wnt-1/β-catenin信號通路被激活,此結(jié)果與其他研究者[25]的研究結(jié)果一致。電針組大鼠脊髓組織中Wnt-1和β-catenin mRNA表達(dá)水平明顯高于模型對照組,表明電針“大椎”穴和“次髎”穴可強(qiáng)化Wnt-1/β-catenin信號通路的活化作用,進(jìn)一步促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和分化,增強(qiáng)脊髓組織修復(fù)作用[26],恢復(fù)腦干排尿中樞對骶髓排尿中樞的控制作用,從而改善SCT后神經(jīng)源性膀胱大鼠的排尿功能。

      內(nèi)臟運(yùn)動神經(jīng)纖維成分包括交感神經(jīng)和副交感神經(jīng)2種,兩者作用相互拮抗。膀胱逼尿肌亢進(jìn)是由于SCT后副交感神經(jīng)刺激增加和(或)交感神經(jīng)刺激減少所致。胸髓中間外側(cè)核為交感神經(jīng)低級中樞,本實驗選取T10脊髓組織檢測目標(biāo)蛋白。分析尿流動力學(xué)結(jié)果顯示交感神經(jīng)為興奮表現(xiàn)。免疫熒光檢測結(jié)果顯示:Wnt-1表達(dá)于細(xì)胞膜及細(xì)胞漿,β-catenin表達(dá)于細(xì)胞核,陽性表達(dá)細(xì)胞的形態(tài)可能是交感神經(jīng)細(xì)胞,由此推測Wnt-1和β-catenin表達(dá)與交感神經(jīng)的興奮可能具有一定的相關(guān)性。本研究結(jié)果顯示:假手術(shù)組偶見Wnt-1和β-catenin弱陽性表達(dá)細(xì)胞,模型對照組和電針對照組可見少量Wnt-1及β-catenin陽性表達(dá)細(xì)胞,電針組Wnt-1和β-catenin陽性表達(dá)細(xì)胞明顯增多。提示SCT后,機(jī)體應(yīng)激性上調(diào)Wnt-1和β-catenin的表達(dá),以拮抗膀胱副交感神經(jīng)興奮而導(dǎo)致膀胱逼尿肌亢進(jìn);電針能夠明顯上調(diào)Wnt-1和β-catenin蛋白的表達(dá)水平,提示電針的作用機(jī)制與該作用密切相關(guān)。

      綜上所述,電針的作用機(jī)制可能與其上調(diào)Wnt-1和β-catenin蛋白在交感運(yùn)動神經(jīng)細(xì)胞的表達(dá)、增加交感神經(jīng)的興奮密切相關(guān),進(jìn)一步活化Wnt-1/β-catenin信號通路,促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和分化,發(fā)揮調(diào)控逼尿肌收縮功能,從而改善神經(jīng)源性膀胱的臨床癥狀。

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