呂秋冰,羅 霜,楊 恒,王 敏,馮友君
(1.四川旅游學(xué)院 食品學(xué)院,成都 610100; 2.四川旅游學(xué)院 信息與工程學(xué)院,成都 610100)
冬瓜(BenincasahispidaCogn)屬葫蘆科一年生草本植物,全國各地均有栽培[1]。冬瓜籽來源豐富,且其中含有維生素B1、皂苷、瓜氨酸、組氨酸、蛇麻脂醇、甘露醇等活性物質(zhì),冬瓜籽僅少數(shù)用于醫(yī)藥,大部分被丟棄,使冬瓜加工的經(jīng)濟效益降低。冬瓜籽的油脂含量高達32%[2],冬瓜籽油以不飽和脂肪酸為主,其中亞油酸含量高達48.55%[3],具有極高的利用價值。
油脂的提取方法主要有超聲波法[3]、物理壓榨法[4]、溶劑浸出法[5]、水酶法等[6]。壓榨法出油率較低[7];溶劑浸出法存在化學(xué)溶劑殘留[7-8];超聲波法因投入成本大,生產(chǎn)能力受限[9]。目前,冬瓜籽油的提取工藝研究主要集中在超聲波輔助提取法[3,10-11]上,利用水酶法提取冬瓜籽油尚未有報道。水酶法是通過生物破壁方式提取油脂,條件溫和,有利于保留活性物質(zhì),且操作和設(shè)備要求簡單,具有高效、綠色、安全的特點。
本研究運用響應(yīng)面設(shè)計優(yōu)化水酶法提取冬瓜籽油工藝,并對冬瓜籽油進行體外抗氧化活性研究,為冬瓜籽油的綜合應(yīng)用提供理論依據(jù)。
冬瓜籽,市售,粉碎后備用;α-淀粉酶、葡聚糖酶、纖維素酶、果膠酶、酸性蛋白酶、中性蛋白酶、堿性蛋白酶,購于河南慶飛食品配料有限公司;鹽酸、氫氧化鈉、VC、鐵氰化鉀、三氯化鐵、三氯乙酸、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、過氧化氫(H2O2)、七水合硫酸亞鐵、水楊酸、無水乙醇、1,1-二苯基-2-苦肼基(DPPH),均為分析純。
DF-101S電熱恒溫磁力攪拌器;DFY-C-400粉碎機;H2050R高速離心機;starter3C ST2100 pH計;DGX-9243B-1恒溫干燥箱;FA1104N電子分析天平;UABluestarA紫外可見分光光度計。
1.2.1 冬瓜籽油的提取
準確稱取冬瓜籽粉10.0 g,按一定料液比加入蒸餾水,用1.0 mol/L的HCl溶液或1.0 mol/L的NaOH溶液調(diào)節(jié)pH,加入酶制劑,在一定溫度下酶解一定時間,100℃加熱30 min滅酶,8 500 r/min離心20 min,吸取上層清油,稱重,按下式計算提取率。
提取率=W2/W1×100%
式中:W1為冬瓜籽中油的質(zhì)量;W2為酶解獲得冬瓜籽油的質(zhì)量。
1.2.2 冬瓜籽油體外抗氧化活性研究
1.2.2.1 DPPH自由基清除能力的測定
參照文獻[12]進行冬瓜籽油DPPH自由基清除能力的測定。按下式計算DPPH自由基清除率。
DPPH自由基清除率=[1-(A1-A2)/A0]×100%
式中:A1為樣品溶液+DPPH溶液吸光度;A2為樣品溶液+無水乙醇吸光度;A0為DPPH溶液+樣品溶劑吸光度。
1.2.2.2 羥基自由基清除能力的測定
參照文獻[12]進行冬瓜籽油羥基自由基清除能力的測定。按下式計算羥基自由基清除率。
羥基自由基清除率=[1-(A1-A2)/A0]×100%
式中:A1為樣品溶液+FeSO4溶液+H2O2溶液+水楊酸吸光度;A2為樣品溶液+FeSO4溶液+蒸餾水+水楊酸吸光度;A0為樣品溶劑+FeSO4溶液+H2O2溶液+水楊酸吸光度。
1.2.2.3 總還原力的測定
參照文獻[12]進行冬瓜籽油總還原力的測定。以吸光度表示鐵離子還原力大小。
2.1.1 酶種類對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,按料液比1∶6加蒸餾水,調(diào)節(jié)pH至各酶的最適pH,分別加入3% (以冬瓜籽粉質(zhì)量計,下同)α-淀粉酶、葡聚糖酶、纖維素酶、果膠酶、酸性蛋白酶、中性蛋白酶、堿性蛋白酶,在各自最適溫度和最適pH[10](表1)下酶解6 h。酶種類對冬瓜籽油提取率的影響見圖1。
表1 各酶最適溫度及pH
注:1.纖維素酶;2.中性蛋白酶;3.酸性蛋白酶;4.果膠酶;5.堿性蛋白酶;6.α-淀粉酶;7.葡聚糖酶。
圖1 酶種類對冬瓜籽油提取率的影響
由圖1可看出,不同酶對于冬瓜籽油提取率都有一定的影響,其中葡聚糖酶對冬瓜籽油提取率的影響最大,其次是果膠酶和α-淀粉酶,纖維素酶對冬瓜籽油提取的效果甚微。分析原因可能是葡聚糖酶可以使冬瓜籽胚乳細胞壁中的β-葡聚糖分解,細胞壁破裂,使油脂分子很好地被釋放出來。因此,以葡聚糖酶作為后續(xù)試驗用酶。
2.1.2 葡聚糖酶添加量對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,在料液比1∶6、pH 4.2下,分別加入1%、2%、3%、4%、5%葡聚糖酶,在60℃下酶解6 h,考察葡聚糖酶添加量對冬瓜籽油提取率的影響,結(jié)果見圖2。
圖2 葡聚糖酶添加量對冬瓜籽油提取率的影響
由圖2可看出,葡聚糖酶添加量小于3%時,隨著葡聚糖酶添加量的增加,冬瓜籽油提取率呈明顯上升趨勢,在葡聚糖酶添加量為3%時冬瓜籽油提取率達到最高,為89%,之后隨葡聚糖酶添加量增大,冬瓜籽油提取率下降,可能是由于酶用量過多,使酶本身發(fā)生自溶反應(yīng)。因此,最適的葡聚糖酶添加量為3%。
2.1.3 料液比對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,分別在料液比1∶4、1∶5、1∶6、1∶7、1∶8,pH 4.2下,加入3%葡聚糖酶,在60℃下酶解6 h,考察料液比對冬瓜籽油提取率的影響,結(jié)果見圖3。
圖3 料液比對冬瓜籽油提取率的影響
由圖3可看出,隨著料液比的增加,冬瓜籽油提取率呈現(xiàn)升高趨勢,當料液比為1∶6時冬瓜籽油提取率最高,之后隨料液比增加,冬瓜籽油提取率降低。料液比較低時,體系黏度大,酶與底物不能完全接觸,反應(yīng)不充分,冬瓜籽油提取率較低;料液比較高時,底物濃度降低,反應(yīng)接觸面積雖有增大,但是酶與底物相互作用的機會降低,使酶的作用效果下降,所以在冬瓜籽油提取過程中料液比為1∶6較適宜。
2.1.4 酶解時間對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,在料液比1∶6、pH 4.2下加入3%葡聚糖酶,在60℃下分別酶解2、4、6、8 h,考察酶解時間對冬瓜籽油提取率的影響,結(jié)果見圖4。
圖4 酶解時間對冬瓜籽油提取率的影響
由圖4可看出,隨著酶解時間的延長,冬瓜籽油提取率先增大后降低。酶解時間較短,葡聚糖酶與底物接觸時間較短,未能充分反應(yīng),導(dǎo)致冬瓜籽油提取率較低;隨著酶解時間的延長,酶對冬瓜籽細胞壁成分逐步分解破壞,使油脂分子團充分暴露在環(huán)境中,進而有利于油脂的釋放,所以冬瓜籽油提取率有所提高。但酶解時間過長,葡聚糖酶在長時間反應(yīng)過程中活性降低,水與油脂形成的乳化現(xiàn)象也更加明顯,導(dǎo)致冬瓜籽油提取率反而下降。因此,酶解時間選擇6 h較好。
2.1.5 pH對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,料液比1∶6,分別調(diào)節(jié)pH為3.2、4.2、5.2、6.2,加入3%葡聚糖酶,在60℃下酶解6 h,考察pH對冬瓜籽油提取率的影響,結(jié)果見圖5。
圖5 pH對冬瓜籽油提取率的影響
由圖5可知,隨pH增大,冬瓜籽油提取率增大,在pH為4.2時,冬瓜籽油提取率最高,之后隨pH增大,冬瓜籽油提取率降低。由于葡聚糖酶的最適反應(yīng)pH為4.2,此時酶處在高活力狀態(tài),反應(yīng)速度較快,冬瓜籽油提取率最大。因此,pH選擇4.2為宜。
2.1.6 酶解溫度對冬瓜籽油提取率的影響
稱取10.0 g冬瓜籽粉,在料液比1∶6、pH 4.2下,加入3%葡聚糖酶,分別在40、50、60、70℃下酶解6 h,考察酶解溫度對冬瓜籽油提取率的影響,結(jié)果見圖6。
圖6 酶解溫度對冬瓜籽油提取率的影響
由圖6可知:隨酶解溫度的升高,冬瓜籽油提取率呈現(xiàn)逐漸上升的趨勢,60℃時,冬瓜籽油提取率最大,這是由于葡聚糖酶的最適酶解溫度為60℃左右,酶處在高活力狀態(tài),反應(yīng)速度提高,冬瓜籽油提取率升高;當酶解溫度超過60℃后葡聚糖酶的活性降低,反應(yīng)速率減弱,導(dǎo)致冬瓜籽油提取率下降。因此,酶解溫度選擇60℃為宜。
在單因素試驗研究基礎(chǔ)上,固定料液比1∶6,葡聚糖酶添加量3%,以pH(A)、酶解時間(B)、酶解溫度(C)為影響因素,冬瓜籽油提取率(Y)為響應(yīng)值,以Box-Behnken設(shè)計三因素三水平共17個試驗點的響應(yīng)面試驗,優(yōu)化水酶法提取冬瓜籽油的工藝條件,響應(yīng)面試驗因素水平見表2,響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果見表3,方差分析見表4。
表2 響應(yīng)面試驗因素水平
表3 響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果
續(xù)表3
試驗號ABC提取率/%1401-170.34151-1072.161600091.3817-10-164.43
用Design-Expert 8.0.3對表3 中的試驗數(shù)據(jù)進行回歸分析后得到響應(yīng)面模型方程:Y=91.09+0.35A+0.47B+0.45C+0.42AB+0.12AC-0.020BC-11.92A2-6.50B2-14.19C2。
表4 響應(yīng)面試驗方差分析
注:**表示P<0.01,差異極顯著;*表示P≤0.05,差異顯著。
通過Design-Expert 8.0.3計算出該模型下理論冬瓜籽油提取率為91.10%,其理論試驗條件為pH 4.22、酶解時間6.07 h、酶解溫度60.15℃。因理論試驗條件不易操控,故修正試驗條件為pH 4.22、酶解時間6.1 h、酶解溫度60℃,在此條件下進行驗證試驗,得到冬瓜籽油提取率為90.67%,驗證值與預(yù)測值相對誤差為0.47%,二者非常接近,說明試驗得到的回歸模型適用于冬瓜籽油水酶法提取條件的預(yù)測。
2.3.1 DPPH自由基的清除能力
DPPH自由基較為穩(wěn)定,當DPPH自由基與抗氧化劑反應(yīng)時呈現(xiàn)顏色變化,其濃度與顏色深淺成正比,并在波長517 nm處有較好的吸收峰。自由基清除劑可與DPPH自由基的單電子配對,導(dǎo)致其在最大吸收波長處顏色變淺,吸光度也隨之減小。DPPH 自由基清除率越高,表明該物質(zhì)抗氧化能力越大[13]。冬瓜籽油及VC對DPPH自由基的清除能力分別見圖7、圖8。
圖7 冬瓜籽油對DPPH自由基的清除能力
圖8 VC對DPPH自由基的清除能力
由圖7可知,冬瓜籽油有一定的清除DPPH自由基的能力,且隨冬瓜籽油質(zhì)量濃度增大,其對DPPH 自由基清除率增大,但低于VC的(見圖8)。當冬瓜籽油質(zhì)量濃度為10 mg/mL時,其對DPPH自由基清除率僅有49.95%,而VC質(zhì)量濃度為1 mg/mL時,其對DPPH自由基清除率已達93.81%。通過SPSS 22.0計算出冬瓜籽油清除DPPH自由基的IC50為10.23 mg/mL。
2.3.2 羥基自由基的清除能力
在人體中,羥基自由基由于有極強的氧化能力,所以在羥基自由基過量的情況下,額外的羥基自由基首先會對人體細胞中糖類、氨基酸、蛋白質(zhì)等大分子造成傷害,從而使細胞出現(xiàn)死亡或突變的現(xiàn)象,進一步會導(dǎo)致人體出現(xiàn)衰老、產(chǎn)生一系列惡性疾病的狀況,羥基自由基與還原劑反應(yīng)后可在波長510 nm處呈現(xiàn)最高波峰。以VC為對照,冬瓜籽油對羥基自由基的清除能力見圖9。
圖9 VC與冬瓜籽油對羥基自由基的清除能力
由圖9可知,冬瓜籽油對羥基自由基清除能力隨其質(zhì)量濃度的增加而增大,在質(zhì)量濃度小于1.0 mg/mL時,冬瓜籽油對羥基自由基清除率低VC,但在冬瓜籽油質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL時,其對羥基自由基清除率達到了98.84%,接近于相同質(zhì)量濃度下VC的。通過SPSS 22.0計算出冬瓜籽油清除羥基自由基的IC50為0.39 mg/mL。比較冬瓜籽油對DPPH自由基與羥基自由基的IC50可以看到,冬瓜籽油對氧化性更強的羥基自由基有更好的清除效果。
2.3.3 總還原力(見圖10、圖11)
圖10 冬瓜籽油總還原力
圖11 VC總還原力
由圖10可知,冬瓜籽油總還原力隨冬瓜籽油質(zhì)量濃度的增加而增大,但低于VC(見圖11)。
采用單因素試驗和響應(yīng)面試驗對水酶法提取冬瓜籽油工藝進行優(yōu)化,得到最佳的工藝條件為:料液比1∶6,酶解時間6.1 h,葡聚糖酶添加量3%,酶解溫度60℃,pH 4.22。在最佳條件下,冬瓜籽油提取率為90.67%。體外抗氧化活性結(jié)果表明:水酶法提取的冬瓜籽油對DPPH自由基和羥基自由基具有較強的清除能力,對應(yīng)的IC50分別為10.23 mg/mL和0.39 mg/mL,當冬瓜籽油的質(zhì)量濃度達到1.0 mg/mL時,對羥基自由基清除率達到98.84%,清除效果相當于相同質(zhì)量濃度的VC,對Fe3+有一定的還原能力,且還原能力隨冬瓜籽油質(zhì)量濃度增大而增強。