蔡路昀 史 航 曹愛玲 周小敏 張宇昊 趙元暉 勵建榮*
(1 生鮮農(nóng)產(chǎn)品貯藏加工及安全控制技術(shù)國家地方聯(lián)合工程研究中心渤海大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院 遼寧錦州121013 2 杭州海關(guān) 杭州311208 3 浙江興業(yè)集團(tuán)有限公司 浙江舟山316101 4 西南大學(xué)食品學(xué)院 重慶400715 5 中國海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院 山東青島266100)
膠原蛋白(collagen)在動物體內(nèi)含量多、分布廣,約占哺乳動物總蛋白的25%~30%,構(gòu)成了全身大部分的結(jié)締組織,肌腱、眼球、血管、骨骼也含有大量的膠原蛋白。膠原蛋白具有低免疫原性、相容性、可降解性、凝血性等生物特性,其優(yōu)良的性質(zhì)已被應(yīng)用到生物醫(yī)學(xué)材料、組織工程、燒傷、美容、食品等領(lǐng)域并占有重要地位。目前已發(fā)現(xiàn)28種膠原蛋白,最為常見的是纖維狀的Ⅰ型膠原蛋白[1]。研究發(fā)現(xiàn),水產(chǎn)動物體內(nèi)膠原蛋白含量高于陸生動物,且種類較少,主要由分布在鱗、鰾、肌肉、皮、骨等處的Ⅰ型、脊索和軟骨的Ⅱ型、Ⅺ型以及肌肉的V 型組成,其中Ⅰ型膠原蛋白富含丙氨酸和糖結(jié)合型的羥賴氨酸[2]。
鰈魚(Pleuronichthys coconuts)又稱比目魚,是溫帶海域重要的經(jīng)濟(jì)魚類。鰈魚含有豐富的多不飽和脂肪酸,易被人體吸收,有助于降低血液中膽固醇濃度[3]。目前國內(nèi)外對鰈魚的研究主要側(cè)重于養(yǎng)殖育種方面。隨著養(yǎng)殖技術(shù)的提高,鰈魚產(chǎn)量穩(wěn)步上升。然而目前我國海水魚加工科技含量低,加工過程中會產(chǎn)生大量的下腳料如魚皮、魚骨等,尤其是鰈魚魚骨,其質(zhì)量約占整魚的40%,這些下腳料常常被丟棄或以低價賣給魚粉廠,簡單做成魚粉和肥料等低附加值產(chǎn)品,資源和副產(chǎn)物的利用程度低,造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失,嚴(yán)重制約著海水漁業(yè)的可持續(xù)發(fā)展。
本文以鰈魚加工副產(chǎn)物魚骨為材料,采用酸法和酶法對鰈魚骨膠原蛋白進(jìn)行提取純化,對其結(jié)構(gòu)性質(zhì)與流變學(xué)特性進(jìn)行分析,以期為鰈魚骨膠原蛋白的開發(fā)利用及工業(yè)化應(yīng)用提供科學(xué)依據(jù)。
鰈魚魚骨,由大連天寶綠色食品股份有限公司提供;胃蛋白酶(50 萬U/g),吉寶(青島)生物科技有限公司;丙烯酰胺 (Acr)、四甲基乙二胺(TEMED)、三羥甲基氨基甲烷(Tris)、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、考馬斯亮藍(lán)R-250(優(yōu)級純)、標(biāo)準(zhǔn)蛋白(分子質(zhì)量6.5~200 ku),上海索萊寶公司;NaOH、異丙醇、冰乙酸、KBr、NaCl、EDTA-2Na,錦州國藥器化玻有限公司。
Biofuge stratos 臺式高速冷凍離心機,美國Thermo 公司;DHR-1 流變儀,美國TA 公司;DF-101S 集熱式恒溫加熱磁力攪拌器,鄭州長城科工貿(mào)有限公司;Free Zone 2.5 真空冷凍干燥機,美國Labconco 公司;UV-2550 型紫外可見分光光度計,尤尼柯(上海)儀器有限公司;Scimitar2000 傅里葉變換紅外光譜儀,美國Agilent 公司;S-4800場發(fā)射掃描電子顯微鏡,日本日立公司;Milli-Q超純水系統(tǒng),美國Millipore 公司;Mini Protean 3凝膠電泳儀,美國Bio-Rad 公司;ZD-9556 脫色搖床,常州市凱航儀器有限公司;GS-800 拍照系統(tǒng),美國Bio-Rad 公司;HTC-100 恒溫恒濕培養(yǎng)箱,上海三騰儀器有限公司;DHR-1 流變儀,美國TA 公司;SZ-1 快速混勻器,江蘇金壇市金城國勝實驗儀器廠;DSC-Q2000 差示掃描量熱儀,美國TA 公司。
首先將魚骨用去離子水清洗剔除干凈后放入4 ℃冰箱備用。以下提取純化操作均在4 ℃下進(jìn)行。參考Somasundaram 等[4]方法稍作修改,稱取一定質(zhì)量魚骨并將其均勻剪切至2~3 mm,加入其質(zhì)量20 倍的0.1 mol/L NaOH 溶液以去除雜蛋白,低速攪拌浸泡,每2 h 換一次溶液,6 h 后加入其質(zhì)量30 倍的10%異丙醇溶液以去除脂肪,每12 h 換一次溶液浸泡一天,再加入其質(zhì)量5 倍的0.5 mol/L EDTA-2Na 溶液,每12 h 換一次溶液,更換5 次。魚骨每換一種溶液均用去離子水反復(fù)沖洗至中性,充分瀝干。將魚骨冷凍干燥后密封放入-20 ℃冰箱待用。
參考Zhang 等[5]方法稍作修改,稱取預(yù)處理后的魚骨,加入其質(zhì)量20 倍的0.5 mol/L 冰乙酸溶液,在4 ℃下低速攪拌12 h 后以10 000 r/min 離心20 min,收集上清液放于4 ℃冰箱。之后將未提取徹底的魚骨進(jìn)行以上相同處理,如此反復(fù)3 次,合并混合上清液得酸法膠原蛋白粗提液。
參考Chen 等[6]方法稍作修改,稱取預(yù)處理后的魚骨加入其質(zhì)量10 倍的超純水,用0.5 mol/L的冰乙酸將溶液的pH 調(diào)至1.9 左右,加入原魚骨質(zhì)量2%的胃蛋白酶,后續(xù)方法同酸法處理,如此反復(fù)兩次,合并收集上清液得酶法膠原蛋白粗提液。
參考Somasundaram 等[4]方法稍作修改,酶法膠原蛋白粗提液先用高濃度NaOH 溶液將pH 調(diào)至8.0 以上進(jìn)行滅酶,然后均勻慢速加入NaCl 固體粉末至其濃度達(dá)到0.9 mol/L,使粉末充分溶解并保證無大塊固體沉積。酸法膠原蛋白粗提液的處理同上,但無需調(diào)pH。將以上處理好的溶液放置4 ℃冰箱過夜后,以12 000 r/min 在4 ℃下離心30 min 得鹽析沉淀。分別將兩種沉淀復(fù)溶于0.5 mol/L 冰乙酸中,依次用0.1 mol/L 冰乙酸、超純水進(jìn)行透析直至溶液中無氯離子檢出,最后將透析過后的溶液進(jìn)行冷凍干燥即得到樣品酸溶性膠原蛋白(ASC)和酶溶性膠原蛋白(PSC)。
1.7.1 紫外光譜分析 參考Caputo 等[7]方法稍作修改,準(zhǔn)確稱取2 mg 凍干的膠原蛋白樣品,充分溶解于10 mL 的0.5 mol/L 冰乙酸溶液中,以0.5 mol/L 冰乙酸作空白對照,常溫下用紫外可見分光光度計在190~400 nm 波長范圍內(nèi)中速掃描,波長間隔2 nm。
1.7.2 紅外光譜掃描分析 參考Jeong 等[8]方法稍作修改,通過傅里葉紅外光譜儀對膠原蛋白二級結(jié)構(gòu)的組成進(jìn)行分析。分別取凍干的膠原蛋白樣品(1 mg)與干燥的KBr(100 mg)置于瑪瑙研缽中研磨成均勻粉末,裝樣壓片,放入樣品室掃描。波數(shù)范圍4 000~500 cm-1,分辨率為2 cm-1。
1.7.3 SDS-PAGE 分析 參考Lowry 等[9]方法并稍作修改,分別取2 mg ASC 或PSC 凍干樣品溶于10% SDS 中,加熱至85 ℃保持1 h 后,按1 ∶1的比例與上樣緩沖液混合后,沸水浴3~5 min,冷卻后取10 μL 上樣。采用5%的濃縮膠,12%的分離膠制膠。采用直壓恒流電源,濃縮膠80 V,分離膠120 V,結(jié)束后,用考馬斯亮藍(lán)R-250 染色40 min,脫色后觀察分析。
1.7.4 DSC 分析 參考溫慧芳等[10]方法稍作修改,利用差式掃描量熱儀測量鰈魚骨膠原蛋白的熱收縮溫度。稱取7 mg 凍干樣品于DSC 坩堝中,加蓋壓片密封后,以空坩堝作對照,在20 ℃保持1 min,從20 ℃加熱至80 ℃,升溫速度為5 ℃/min。
1.7.5 SEM 掃描分析 參考Palka 等[11]方法稍作修改,利用掃描電鏡觀察鰈魚骨膠原蛋白的微觀結(jié)構(gòu)。取適量凍干的形狀規(guī)則的膠原蛋白樣品經(jīng)離子濺射鍍金,在3.0 kV 電壓下放大1 000 倍觀察膠原蛋白的表面結(jié)構(gòu)。
取適量凍干的膠原蛋白樣品溶解于0.5 mol/L的冰乙酸中并充分混合均勻,配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的膠原蛋白溶液。使用40 mm、2°的椎板,在20℃條件下進(jìn)行測試。在振蕩模式下,采用頻率掃描的數(shù)據(jù)獲取模式,頻率掃描范圍為0.1~10 Hz,變量掃描為對數(shù)模式,采集33 個變量點,控制變量為形變率(30%)。研究膠原蛋白溶液的儲能模量(彈性模量)G′、損耗模量(黏性模量)G″隨著振蕩頻率變化的規(guī)律[12]。
圖1 鰈魚骨ASC 和PSC 的紫外吸收光譜圖Fig.1 UV spectrum of ASC and PSC from flounder bone
膠原蛋白分子結(jié)構(gòu)的肽鏈和側(cè)鏈?zhǔn)钱a(chǎn)生紫外吸收的主要原因。如圖1所示,在210 nm 波長以下產(chǎn)生的吸收峰是由于膠原蛋白分子中存在的肽鍵及相關(guān)構(gòu)象[13];在226 nm 和227 nm 處分別產(chǎn)生鰈魚骨PSC 和ASC 的最大吸收峰,是由于肽鍵C=O 的n→π* 躍遷所致,符合Ⅰ型膠原蛋白三股螺旋結(jié)構(gòu)的紫外吸收特征[14];而Ⅰ型膠原蛋白的一級結(jié)構(gòu)中缺乏如酪氨酸、苯丙氨酸等具有共軛雙鍵的芳香族氨基酸,因此沒有出現(xiàn)大多數(shù)蛋白質(zhì)在280 nm 處的吸收峰[15]。而這與其它魚膠原蛋白的研究結(jié)果相似[16]。由膠原蛋白的紫外光譜掃描可以看出ASC 與PSC 具有相似的吸收峰,故此推斷鰈魚骨ASC 與PSC 具有一定相似程度的一級結(jié)構(gòu)。
如圖2和表1所示ASC 和PSC 均具有膠原蛋白紅外光譜特征吸收峰,包括酰胺Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ及A 和B 帶。ASC 和PSC 的酰胺A 帶的吸收峰波長均小于3 400 cm-1,是吸收峰由于NH 基團(tuán)與氫鍵締合后發(fā)生了藍(lán)移現(xiàn)象[17]。酰胺B 帶是由于-CH2-產(chǎn)生的不對稱伸縮振動。
酰胺Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ帶是反映蛋白質(zhì)肽鏈骨架結(jié)構(gòu)最重要的吸收峰,與膠原蛋白分子結(jié)構(gòu)有關(guān)[18]。酰胺Ⅰ帶為蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)變化的敏銳區(qū)域,酰胺Ⅱ帶為α-螺旋、β-折疊、轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲的扭轉(zhuǎn)振動峰;酰胺Ⅰ和Ⅱ反映了肽鏈之間的交聯(lián)程度,肽鏈結(jié)合越緊密振動頻率越大,由圖2顯示PSC 的3 條α 肽鏈比ASC 結(jié)合緊密[19]。酰胺Ⅲ帶反應(yīng)了膠原蛋白是否保持了完整的三螺旋結(jié)構(gòu),是甘氨酸和脯氨酸殘基的-CH2-特征振動峰[20],由此可以說明ASC 和PSC 均具有完整的三螺旋結(jié)構(gòu)。
由圖3電泳圖譜可以看出,膠原蛋白的相對分子質(zhì)量大,1 個膠原分子相對分子質(zhì)量為300 ku,即膠原的每條多肽鏈相對分子質(zhì)量可達(dá)100 ku[21]。在高于200 ku 處ASC 出現(xiàn)的可能是Ⅰ型膠原蛋白α 鏈的三聚體γ 鏈,在200 ku 附近均出現(xiàn)的1 條泳帶是β 鏈,在100 ku 附近ASC 與PSC 分別出現(xiàn)的2 條泳帶分別是α1 鏈和α2 鏈,表明ASC 與PSC 主要含有Ⅰ型膠原蛋白,并且具有較完整的三螺旋結(jié)構(gòu)[22]。相對于PSC 來說ASC 在66.4 ku 以下的部分出現(xiàn)較淺甚至難以分辨的條帶,是因為PSC 在提取過程中胃蛋白酶使其分解成其它小分子,由此也可以看出ASC 比PSC 相對更純、更完整。
表1 鰈魚骨ASC 和PSC 紅外光譜出峰位置及圖譜解析Table 1 Peak position and analysis of ASC and PSC from flounder bone
圖2 鰈魚骨ASC 和PSC 的紅外吸收光譜圖Fig.2 The infrared spectra of ASC and PSC from flounder bone
差示掃描量熱法 (differential scanning calorimetry,DSC)對于膠原蛋白來說,是一種分辨率高、試樣用量少的熱分析方法。三螺旋和形成膠原分子周圍的水合網(wǎng)絡(luò)的氫鍵之間的斷裂是膠原蛋白產(chǎn)生高焓的原因[23],DSC 圖譜反映ASC 的熱焊值為7.314 J/g,高于PSC 的熱焊值2.429 J/g,說明ACS 具有的交聯(lián)鍵比PSC 的多。聚合物熱穩(wěn)定性是由變性溫度(Td)這一重要指標(biāo)反映出來的,而Td 是膠原蛋白三螺旋分解成無規(guī)則結(jié)構(gòu)的溫度值[24],Td 從伸展和三螺旋結(jié)構(gòu)有序卷曲到隨機結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)變伴隨著分子質(zhì)量的損失和物理化學(xué)性質(zhì)的改變??梢酝ㄟ^圖4直觀地看出鰈魚骨膠原蛋白的峰值溫度分別是ASC 為52.24 ℃,PSC 為49.65 ℃。由于膠原蛋白的熱穩(wěn)定性主要與脯氨酸和羥脯氨酸的吡咯烷環(huán)相連,部分與羥脯氨酸羥基的氫鍵結(jié)合[25]。胃蛋白酶對端肽的去除可能不利于通過氫鍵穩(wěn)定三螺旋結(jié)構(gòu),從而導(dǎo)致鰈魚骨PSC 的Td 降低。一般情況下,生活在寒冷地區(qū)鰈魚的膠原蛋白羥脯氨酸濃度較低,導(dǎo)致熱穩(wěn)定性低于生活在溫暖棲息地的鰈魚[26]。
圖3 鰈魚骨膠原蛋白SDS-PAGE 電泳圖譜Fig.3 SDS-PAGE electrophoresis pattern of collagen from flounder bone
圖4 鰈魚骨ASC 與PSC 的DSC 圖譜Fig.4 DSC thermogram of ASC and PSC from flounder bone
凍干后的鰈魚骨ASC 與PSC 樣品呈現(xiàn)柔軟白色海綿狀,肉眼可觀察到疏松多絲狀,且ASC顏色呈現(xiàn)純白無雜質(zhì),PSC 則呈現(xiàn)白色微黃。通過在電鏡放大1 000 倍掃描,如圖5(a,b)顯示出纖維狀的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。ASC 相對PSC 較光滑,結(jié)構(gòu)較均勻,PSC 比ASC 多孔且孔徑較多分布不均勻,這是由于凍干前兩種膠原濃度不同所致[27]。以上特征與Zhang 等[28]研究一致。說明胃蛋白酶對膠原蛋白有結(jié)構(gòu)上的改變,但整體還是網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),酸法提取出的膠原蛋白較好地保持了自身結(jié)構(gòu)。兩種膠原蛋白均比較適合作為藥物載體,能夠很好地應(yīng)用到食品、化妝品等領(lǐng)域[29]。
圖5 鰈魚骨PSC(a)與ASC(b)掃描電鏡圖Fig.5 Scanning electron micrographs of PSC (a)and ASC (b)from flounder bone
圖6 鰈魚骨ASC 和PSC 膠原蛋白溶液的流變學(xué)曲線Fig.6 Rheological characteristics of collagen solutions of ASC and PSC from flounder bone
鰈魚骨膠原蛋白溶液可通過振蕩模型測定其粘彈性,即對膠原蛋白分子施加一個扭擺力矩,使其在此力矩下發(fā)生運動[30]。根據(jù)扭擺力矩頻率從低到高的變化,分子鏈的運動發(fā)生相應(yīng)的改變并測定粘彈性[31]。G′表示膠原蛋白分子隨外力的改變發(fā)生形變的能力,G″表示膠原蛋白分子在外力作用發(fā)生改變,分子鏈內(nèi)部或分子間拉伸導(dǎo)致的能量損耗[32]。如圖6所示,振蕩頻率在0.1~4 Hz時,隨著振蕩頻率的升高,ASC 與PSC 的儲能模量升高且相差不多;在4~10 Hz 振蕩頻率時,PSC 儲能模量增量顯著高于ASC。如圖7所示,振蕩頻率在0.1~5.5 Hz 時,兩種膠原蛋白分子損耗模量隨振蕩頻率升高而升高且相差不多;在5.5~10 Hz時,PSC 的損耗模量增量微高于ASC。說明ASC與PSC 的流變學(xué)特性不同,且隨著振蕩頻率的增大,ASC 與PSC 溶液主要表現(xiàn)出彈性特征。PSC 的G′和G″斜率均大于ASC,說明在0.1~10 Hz 的頻率下具有較高的凝膠穩(wěn)定性[33]。
本文用鰈魚骨以酸法與酶法提取制備膠原蛋白并研究了其結(jié)構(gòu)及流變學(xué)特性。結(jié)果表明:鰈魚骨ASC 與PSC 在紫外吸收上均在227nm 附近出現(xiàn)最大吸收峰,是典型的Ⅰ型膠原蛋白;紅外光譜與SDS-PAGE 電泳均顯示ASC 與PSC 具有較為完整的三螺旋結(jié)構(gòu),是Ⅰ型膠原蛋白;通過DSC測出ASC 與PSC 的熱變性溫度分別為52.24 ℃與49.65 ℃,可能是由于兩種方法提取的兩種膠原蛋白存在構(gòu)型差異;通過電鏡掃描顯示ASC 與PSC 都呈現(xiàn)交織狀纖維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),ASC 分布相對更均勻,可作為很好的醫(yī)用材料;流變學(xué)特性顯示在0.1~10 Hz 的振蕩頻率下,ASC 與PSC 的儲能模量與損耗模量都隨著頻率的升高而增大,兩者的溶液主要表現(xiàn)為彈性特征,但PSC 的儲能模量和損耗模量的斜率均大于ASC,因而具有較高的凝膠穩(wěn)定性。綜上,ASC 與PSC 因提取方法不同而存在一些差異,但均適用于食品、保健品、化妝品和藥品等行業(yè),可根據(jù)實際要求對其進(jìn)行應(yīng)用,本研究可為鰈魚加工主要副產(chǎn)物魚骨的綜合利用和開發(fā)提供一定的數(shù)據(jù)支持和理論基礎(chǔ)。