陳桂柳,盧超銳,劉雪萍,吳長力,林夢哲,陳穎琪,張宏梅
(廣東工業(yè)大學(xué) 生物工程系,廣州 510006)
廣式臘腸具有非常悠久的歷史,深受廣大消費者的喜愛。但傳統(tǒng)臘腸的制作以作坊形式為主,具有規(guī)模小、產(chǎn)品性質(zhì)不穩(wěn)定的特征,同時也存在產(chǎn)品的安全性問題。發(fā)酵肉制品中的亞硝酸鹽殘留問題是食品安全領(lǐng)域中非常重要的內(nèi)容[1,2]。因為亞硝酸鹽具有優(yōu)異的發(fā)色和抑菌能力,所以它是一種在食品生產(chǎn)中特別是在肉制品制造業(yè)中常用的食品添加劑,但它卻有致畸、致癌、致甲狀腺腫大等危害[3,4]。因此,急需找到一種能夠降解發(fā)酵肉制品中亞硝酸鹽的辦法。
目前亞硝酸鹽的降解辦法主要有物理法、化學(xué)法和微生物法3種,微生物法基于其經(jīng)濟、高效等特點得到廣泛的重視,其主要是通過菌株如硝化細菌中的假單胞菌(Pseudomonassp.)、芽孢桿菌(Bacillussp.)或發(fā)酵中用到的乳酸菌(Lactobacillussp.)等對亞硝酸鹽進行降解。解決發(fā)酵食品中亞硝酸鹽安全問題的最為理想的途徑之一,就是從具有代表性的發(fā)酵食品中篩選出高效降解亞硝酸鹽的乳酸菌菌株作為發(fā)酵劑,添加到發(fā)酵肉制品中,在改善產(chǎn)品性能的同時提高產(chǎn)品的安全性[5-9]。
本研究以前期在泡菜中分離的兩株植物乳桿菌為研究對象,分析其耐氯化鈉和耐亞硝酸鈉的特征以及降解亞硝酸鹽的能力,并將其中一株植物乳桿菌應(yīng)用到廣式臘腸發(fā)酵中,通過檢測其理化性質(zhì)和微生物學(xué)特征,以探討其作為廣式臘腸發(fā)酵劑的可行性。
實驗菌株:實驗所用的菌株分別是LactobacillusplantarumH1和LactobacillusplantarumL1。由本實驗室前期從潮汕泡菜中分離得到,并經(jīng)過革蘭氏染色、產(chǎn)乳酸分析、過氧化氫酶分析等生化實驗和16S rDNA序列分析鑒定為植物乳桿菌,并于-20 ℃添加20%甘油保護劑低溫保存。
培養(yǎng)基:MRS肉湯、PALCAM瓊脂、木糖賴氨酸脫氧膽鹽(XLD)瓊脂、GYP培養(yǎng)基、孟加拉紅培養(yǎng)基等,均購自青島海博生物技術(shù)有限公司。
配制50 mL的MRS培養(yǎng)基,經(jīng)118 ℃高壓滅菌15 min,備用。從-20 ℃冰箱中取出菌株,待培養(yǎng)基冷卻至室溫時,分別吸取50 μL菌液于培養(yǎng)基中,并將培養(yǎng)基移至恒溫搖床中,30 ℃培養(yǎng)48 h。
在GYP培養(yǎng)基中,加入2.0%的氯化鈉或 300 mg/kg的亞硝酸鈉,以不加任何其他物質(zhì)作為空白對照,平行3個樣本。移取乳酸菌液于離心管中,5000 r/min ,4 ℃下離心5 min后舍棄上清液,用10 mL的無菌PBS緩沖液清洗乳酸菌,并用50 mL PBS緩沖液懸浮乳酸菌。以1%的接種量(大約為7.0 log CFU/mL)接種于GYP培養(yǎng)基中(含有氯化鈉或亞硝酸鈉)以及空白對照培養(yǎng)基中。置于恒溫搖床30 ℃培養(yǎng)72 h后,使用分光光度計法,在波長660 nm處測量培養(yǎng)基的光密度值[10]。
乳酸菌存活率=(含氯化鈉或亞硝酸鈉GYP培養(yǎng)基的OD值)/(不含鹽GYP培養(yǎng)基的OD值)×100%。
亞硝酸鹽的檢測參照GB 5009.33-2016中的分光光度法進行。將待測液2 mL置于50 mL帶塞比色管中,先加入2 mL對氨基苯磺酸溶液混勻,然后避光靜置5 min,再加入1 mL鹽酸萘乙二胺溶液,用去離子水定容至刻度,搖勻后避光靜置15 min,于538 nm處測量其吸光度。
標準曲線的繪制:分別準確吸取0.00,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00,1.50,2.00,2.50 mL的亞硝酸鈉標準使用液(相當(dāng)于 0.0,1.0,2.0,3.0,4.0,5.0,7.5,10.0,12.5 μg 亞硝酸鈉)置于50 mL帶塞比色管中,經(jīng)紫外分光光度法測定后,繪制成標準曲線。
按1∶1000的接種量將濃度為108CFU/mL的乳酸菌分別接種到含適量NaNO2(160 μg/mL)的MRS培養(yǎng)基后,將pH值調(diào)為6.5,30 ℃培養(yǎng),每隔12 h吸取菌液測量其亞硝酸鹽含量。菌液均需經(jīng)過前處理才可對其進行測量,前處理步驟如下:吸取菌液5 mL于250 mL的帶塞錐形瓶中,加入12.5 mL硼砂溶液后沸水浴15 min后將提取液轉(zhuǎn)移到200 mL容量瓶中,先后加入5 mL亞鐵氰化鉀溶液和5 mL乙酸鋅溶液,搖勻,沉淀蛋白質(zhì),加入去離子水至刻度,搖勻后室溫靜置30 min以去除上層脂肪,用濾紙過濾上清液,棄去30 mL初濾液,吸取2 mL剩下的濾液采用分光光度法測定亞硝酸鹽含量。
將接種了植物乳桿菌H1的100 mL MRS培養(yǎng)基過夜培養(yǎng),離心分離獲得菌體后,用無菌PBS洗滌并用10 mL PBS懸浮菌體,使菌體濃度達到105CFU/mL。
將新鮮豬肉中的肥瘦分開,攪碎后按比例混合,肥瘦比例為2∶8,按肉重加入300 mg/kg亞硝酸鈉、2%氯化鈉、0.1%抗壞血酸鈉、1%葡萄糖、0.6%蔗糖和0.88%香料混合物,充分攪拌5 min混合均勻。腌制1 h,紫外滅菌20 min。將腌制好的豬肉分成每份100 g,共6份。其中3份以1%的接種量(約為8.0 log CFU/g)的發(fā)酵劑接種在肉料中,另外3份則加入等量的生理鹽水。將接種后的肉料填充到豬腸衣中。制成的臘腸先存放在超凈工作臺中,以除去腸衣表面的水分。臘腸表面無明顯潤濕感時,將臘腸懸掛在室內(nèi)陰涼通風(fēng)處自然風(fēng)干,室內(nèi)溫度保持在20 ℃。
將發(fā)酵的臘腸在不同時間(0,1,2,5,8,14,21 d)進行取樣檢測其乳酸菌、霉菌和大腸菌群的數(shù)量。其中,乳酸菌采用溴甲酚紫固體培養(yǎng)基,霉菌采用孟加拉紅培養(yǎng)基,大腸菌群采用XLD瓊脂。計數(shù)方法參照國家標準[11-13]。
將發(fā)酵的臘腸在不同時間(0,1,2,5,8,14,21 d)進行取樣,分別采用pH計(上海精密科學(xué)儀器有限公司)和水活度測定儀(無錫市華科儀器儀表有限公司)測定其pH值和水活度的大小。
實驗均重復(fù)3次,采用Origin 8.0進行數(shù)據(jù)的分析和統(tǒng)計。
由表1可知,H1和L1兩株菌在2.0%氯化鈉的培養(yǎng)基中生長不受抑制。300 mg/kg亞硝酸鈉不能對L1菌的生長產(chǎn)生抑制,而對H1菌有較小的抑制。已有研究表明起始濃度為6.0 log CFU/mL的植物乳桿菌可在濃度為100 mg/L(100 mg/kg)Na2NO2的條件下生長,表明該乳酸菌對亞硝酸鈉的耐受能力高[14]。因此,本研究結(jié)果表明H1菌和L1菌有更強的耐亞硝酸鹽能力。
表1 乳酸菌在含氯化鈉或亞硝酸鈉培養(yǎng)基中的活性Table 1 Activity of Lactobacillus in culture medium containing sodium chloride or sodium nitrite
注:數(shù)據(jù)中的“±”表示標準差。當(dāng)菌的活性在100%以下時,可視為該菌在對應(yīng)培養(yǎng)基中的生長受到抑制;當(dāng)菌的活性約為100%時,可視為該菌在對應(yīng)培養(yǎng)基中的生長不受影響;當(dāng)菌的活性在100%以上時,可視為該菌對應(yīng)的培養(yǎng)基中存在能促進該菌生長的因素。
圖1 兩株植物乳桿菌對亞硝酸鹽的降解能力Fig.1 Degradation capability of nitrite by twoLactobacillus plantarum strains
由圖1可知,兩株植物乳桿菌在MRS培養(yǎng)基中對亞硝酸鹽均具有較好的降解能力,在第12~24 h期間,降解速度最快,H1菌對亞硝酸鹽的降解率從11.8%增加到92.9%,L1菌對亞硝酸鹽的降解率從9.6%增加到77.0%,在第36 h時,兩株植物乳桿菌幾乎將亞硝酸鹽全部降解。有文獻表明,來自泡菜的植物乳桿菌5-7-3對亞硝酸鹽的降解率為89.94%[15]。因此,在本實驗中同樣來自泡菜的植物乳桿菌L1和H1也表現(xiàn)出了較好的亞硝酸鹽降解能力。
在傳統(tǒng)的廣式臘腸中添加H1菌作為發(fā)酵劑,通過在不同時間下測定其乳酸菌活菌數(shù)、pH值以及水活度來探討該菌株作為發(fā)酵劑的可行性,結(jié)果見圖2。
圖2 發(fā)酵臘腸中乳酸菌活菌數(shù)、pH和水活度的變化Fig.2 Changes in the number of live bacteria, pH and wateractivity of Lactobacillus in fermented sausage
注:A表示臘腸在發(fā)酵過程中乳酸菌活菌數(shù)與發(fā)酵天數(shù)的關(guān)系;B表示臘腸在發(fā)酵過程中pH值與發(fā)酵天數(shù)的關(guān)系;C表示臘腸在發(fā)酵過程中水活度與發(fā)酵天數(shù)的關(guān)系。
由圖2中A可知,添加了H1菌的發(fā)酵臘腸的乳酸菌活菌數(shù)多于不添加H1菌的發(fā)酵臘腸的乳酸菌活菌數(shù)。在發(fā)酵的前2 d內(nèi),兩種發(fā)酵臘腸中的乳酸菌都快速生長,乳酸菌處在對數(shù)生長期。在發(fā)酵的第2~8 d之間,添加了H1菌的發(fā)酵臘腸的乳酸菌活菌數(shù)生長速率減小,但總活菌數(shù)還是有增長的趨勢,乳酸菌處于生長平穩(wěn)期。而沒有添加H1菌的發(fā)酵臘腸的乳酸菌活菌數(shù)先增長后減少。到第8天后,兩種發(fā)酵臘腸的乳酸菌總數(shù)都呈現(xiàn)持續(xù)減少的趨勢,且隨著發(fā)酵天數(shù)的增加,減少的速率越快。
由圖2中B可知,在發(fā)酵的第0~5 d,兩種發(fā)酵臘腸的pH值持續(xù)快速降低,添加了H1菌的發(fā)酵臘腸的pH值比未添加H1菌的發(fā)酵臘腸的pH值低。在發(fā)酵的第5天后,兩者的pH值都持續(xù)緩慢下降,但添加H1菌的pH值始終比不添加H1菌的低,說明添加H1菌會降低臘腸的pH值。
由圖2中C可知,添加了植物乳桿菌H1的發(fā)酵臘腸的水活度與傳統(tǒng)發(fā)酵臘腸相比,在發(fā)酵的第0~5 d水分活度變化不大,但第5天后,添加植物乳桿菌H1會影響臘腸的水活度,相對傳統(tǒng)發(fā)酵,能使其水活度降低。
表2 發(fā)酵臘腸中霉菌生長情況Table 2 Growth of mold in fermented sausage
注:涂布平板使用的樣液均稀釋至104倍;“+”表示培養(yǎng)基上霉菌菌落的數(shù)量為0~50個,“++”表示培養(yǎng)基上霉菌菌落的數(shù)量為50~100個,“+++”表示培養(yǎng)基上霉菌菌落的數(shù)量在100個以上,“-”表示培養(yǎng)基上無霉菌菌落。
由表2可知,兩種臘腸在發(fā)酵的第0天時,已經(jīng)存在霉菌。不添加H1菌的發(fā)酵臘腸中的霉菌菌落數(shù)量隨著發(fā)酵天數(shù)的增加而增多,到發(fā)酵第14天才開始減少。添加了H1菌的臘腸中霉菌在發(fā)酵第0~5 d之間呈增長趨勢,而第5天時,霉菌的數(shù)量開始減少,到第14 天時,已經(jīng)檢測不到霉菌。說明添加H1菌可以減少有害菌的數(shù)量。
表3 發(fā)酵臘腸中大腸桿菌數(shù)量Table 3 Quantity of Escherichia coli in fermented sausage
注:國家衛(wèi)生標準規(guī)定大腸桿菌在食品中含量不得超過30 CFU/100 g,如超過則判定為樣品不合格。
由表3可知,兩種臘腸在發(fā)酵第0天時,都未檢測到大腸桿菌。在發(fā)酵的第1~3 d,在不添加H1菌的發(fā)酵臘腸中檢測到大腸桿菌,而在同時期添加H1菌的發(fā)酵臘腸中未檢測到大腸桿菌,說明H1菌對大腸桿菌的生長繁殖有抑制效果。
傳統(tǒng)廣式臘腸制作的過程中,參與發(fā)酵的微生物種類很多,乳酸菌是非常重要的一類。文中的兩株植物乳桿菌均具有良好的耐鹽和耐亞硝酸鈉能力,同時表現(xiàn)出對亞硝酸鈉有良好的降解能力。選擇H1菌作為臘腸進行發(fā)酵劑進行實驗,檢測了發(fā)酵臘腸的乳酸菌活菌數(shù)、霉菌數(shù)、大腸桿菌含量、pH值和水活度,對比空白對照的發(fā)酵臘腸,探討H1菌應(yīng)用到發(fā)酵臘腸后對這些數(shù)值造成的影響。從實驗結(jié)果來看,H1菌對發(fā)酵臘腸的pH值影響較大,可以降低產(chǎn)品的水活度,同時有可能會對大腸桿菌和霉菌造成抑制效果。說明所選乳酸菌菌株具有較好的環(huán)境適應(yīng)性,并顯示出很大的酸化潛力,可以通過抑制致病菌的生長來提高生物安全性。因此,H1菌有望成為一種具有生物安全性的本土發(fā)酵劑。另外,臘腸發(fā)酵中,菌株的種類多樣,植物乳桿菌與其他菌可能存在著營養(yǎng)的競爭關(guān)系,也可能是脅迫條件的協(xié)同生存。我們將深入研究臘腸中的菌群結(jié)構(gòu),以及發(fā)酵劑菌株與其他菌株之間的相互作用,使產(chǎn)品優(yōu)良的性狀具有穩(wěn)定性。為實現(xiàn)廣式臘腸生產(chǎn)的規(guī)?;?、規(guī)范化以及保證產(chǎn)品的安全性研究奠定了科學(xué)基礎(chǔ)。