徐紅艷 楚曉飛 葛茂功 何世陽 楊霞 白衛(wèi)云
肺癌是世界上第二位常見癌癥,死亡率居首位。雖然吸煙等環(huán)境風(fēng)險因素對肺癌的發(fā)展有重要貢獻[1],但也存在遺傳因素。肺癌的主要類型有小細胞肺癌(SCLC)和非小細胞肺癌(NSCLC)[2],其中NSCLC的兩個主要亞型是肺腺癌(LUAD)和肺鱗狀細胞癌(LUSC), LUAD和LUSC占絕大多數(shù)新報告的肺癌病例,而SCLC僅包括一小部分(約15%)[3]。這些亞型在肺內(nèi)的位置以及起源的細胞類型方面不同[4],因此可能具有不同的潛在疾病病因。 LUAD是研究最多的肺癌亞型,研究已經(jīng)確定了基因組改變和可行的突變[5-6]。研究顯示,長鏈非編碼RNA (LncRNAs)在肺癌中的異常與癌癥的惡化程度具有密切的相關(guān)性[7]。然而,最近發(fā)現(xiàn)的LncRNA MiR497HG在肺癌中的功能和分子機制仍然未知。本研究擬以肺癌細胞NCI-H1975為研究對象,檢測其中LncRNA MiR497HG、miR-588在其中的表達,觀察抑制MiR497HG、過表達miR-588對NCI-H1975細胞增殖、遷移、侵襲及凋亡的影響,揭示其機制與MiR497HG靶向調(diào)控miR-588有關(guān),將為肺癌的治療提供新靶點。
正常肺上皮細胞BEAS-2B、肺癌細胞NCI-H1975、NCI-H460、A549(ATCC);DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清、MTT、胰蛋白酶(美國Sellect公司);LipofectamineTM2000、BCA蛋白定量試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連Takara公司);PVDF膜(德國羅氏診斷有限公司);SDS-PAGE 試劑盒、ECL發(fā)光液和RIPA蛋白裂解液(碧云天生物技術(shù)公司);雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒(美國Promega公司);Matrigel基質(zhì)膠(美國BD);Transwell小室(美國Coming公司);Annexin V- FITC / PI凋亡檢測試劑盒(北京索萊寶)。
1 細胞的培養(yǎng) 將正常肺上皮細胞BEAS-2 B、肺癌細胞NCI-H1975、NCI-H460、A549,在37 ℃、5 % CO2的恒溫培養(yǎng)箱的條件下,用含10 %胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基進行常規(guī)的細胞培養(yǎng),并進行傳代。
2 細胞的轉(zhuǎn)染與分組 將肺癌細胞NCI-H1975隨機分成blank組(不做任何處理)、si-NC組(轉(zhuǎn)染si-NC)、si-MiR497HG組(轉(zhuǎn)染si-MiR497HG)、anti-miR-NC組(轉(zhuǎn)染anti-miR-NC)、anti-miR-588組(轉(zhuǎn)染anti-miR-588)、miR-NC組(轉(zhuǎn)染miR-NC)、miR-588組(轉(zhuǎn)染miR-588 mimics)、si-MiR497HG+anti-miR-NC組(共轉(zhuǎn)染si-MiR497HG和anti-miR-NC)、si-MiR497HG+anti-miR-588組(共轉(zhuǎn)染si-MiR497HG和anti-miR-588),按LipofectamineTM 2000轉(zhuǎn)染試劑盒說明書要求操作,轉(zhuǎn)染48 h,用qRT-PCR法檢測轉(zhuǎn)染效率。轉(zhuǎn)染成功后用于qRT-PCR實驗、MTT實驗、Transwell實驗、流式細胞術(shù)實驗。
3 qRT-PCR法檢測細胞中MiR497HG、miR-588表達 Trizol法提取細胞中總RNA,用Nano-Drop 2000微量分光光度計進行RNA定量。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒方式,操作按照試劑盒說明書進行,合成模板鏈cDNA。按照反應(yīng)體系進行,每個樣品重復(fù)3次,取平均值,反應(yīng)結(jié)束后通過比較Ct值,以U6作為內(nèi)參,計算2-△△Ct的值,測定MiR497HG、miR-588的相對表達水平。
4 MTT法檢測細胞增殖 將各組細胞制成混懸液,調(diào)整密度至104個/mL,然后接種至96孔板,取適量1.2.2各組細胞,每孔加MTT溶液(5 mg/mL)20 μL,孵育4 h,丟棄上清,加150 μL 的DMSO,震蕩,溶解結(jié)晶,在OD490 nm波長下檢測細胞吸光值(A)。
5 Transwell小室檢測細胞的遷移侵襲 將 Transwell小室置于孔上,放入細胞培養(yǎng)箱平衡30 min。然后將各組細胞消化,用純RPMI 1640培養(yǎng)基配制成5×105個/mL的細胞懸液。每個小室加入200 μL細胞懸液,即每孔細胞約為1×105個。每組設(shè)置3個復(fù)孔,將24孔板放入37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,小心移出上室,用棉簽擦去上室膜下表面的遷入細胞,PBS洗2次,甲醇固定30 min。晾干后,用結(jié)晶紫染液(1g/L)染色20 min,再用雙蒸水沖洗。取出晾干,置于倒置顯微鏡下拍照,選取5個不同視野,拍照計數(shù),取平均值。
將轉(zhuǎn)染成功的對數(shù)期細胞進行Transwell侵襲實驗。將基質(zhì)膠和培養(yǎng)基按1 ∶8稀釋后(60 μL)鋪于培養(yǎng)小室上,風(fēng)干后備用,其他步驟同Transwell體外遷移實驗。
6 Annexin V/ PI雙染色流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡 將各轉(zhuǎn)染組細胞,用 500 μL 的Binding Buffer懸浮細胞,分別加入5 μL的 Annexin V- / FITC避光反應(yīng)20 min后再加入5 μL的PI避光反應(yīng)20 min,用300目銅篩過濾,上流式細胞儀進行檢測。凋亡率(%)= 早期凋亡率+晚期凋亡率。
7 雙熒光素酶報告基因檢測實驗檢測細胞中MiR497HG與miR-588的結(jié)合力 將MiR497HG -WT(含MiR497HG片段)和MiR497HG-MUT(含MiR497HG突變體)的熒光素酶報告載體,采用LipofectamineTM2000與miR-588、miR-NC共轉(zhuǎn)染,24 h后,按雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒技術(shù)操作手冊要求進行檢測熒光強度,記錄螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素酶的熒光活性,以兩者的比值表示MiR497HG與miR-588的結(jié)合能力。
與BEAS-2B組相比,NCI-H1975組、NCI-H460組、A549組細胞中MiR497HG表達均顯著升高,miR-588表達顯著降低(P<0.05)(見表1)。
表1 MiR497HG、miR-588在肺癌細胞中的表達
注:與BEAS-2B組比較,*P<0.05
與si-control組相比,si-MiR497HG組NCI-H1975細胞中MiR497HG表達顯著降低,48、72 h時細胞增殖顯著降低,遷移細胞數(shù)和侵襲細胞數(shù)均顯著降低,細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)(見表2,圖1)。
圖1 抑制MiR497HG的肺癌細胞凋亡圖
表2 抑制MiR497HG對肺癌細胞增殖、遷移侵襲及凋亡的影響
注:與si-NC組比較,*P<0.05
通過生物信息學(xué)在線預(yù)測網(wǎng)站(http://mircode.org/)預(yù)測到miR-588與MiR497HG之間存在8個互補的結(jié)合位點(圖2);雙熒光素酶報告基因檢測實驗結(jié)果顯示,與miR-NC組相比,miR-588組WT-MiR497HG細胞中熒光活性顯著降低(表3);與anti-miR-NC組相比,anti-miR-588組細胞中MiR497HG表達顯著升高,與miR-NC組相比,miR-588組細胞中MiR497HG表達顯著降低(表4,P<0.05)。
圖2 miR-588與MiR497HG的靶向結(jié)合位點
表3 雙熒光素酶報告基因檢測實驗結(jié)果
注:與miR-NC組比較,*P<0.05
表4 miR-588對HMBOX1表達的影響
注:與anti-miR-NC組比較,*P<0.05, 與miR-NC組比較,#P<0.05
通過MTT實驗、Transwell實驗、流式細胞術(shù)。與miR-NC組相比,miR-588組NCI-H1975細胞miR-588表達顯著升高,48、72 h時細胞增殖顯著降低,遷移細胞數(shù)和侵襲細胞數(shù)均顯著降低,細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)(見表5,圖3)。
與si-MiR497HG+anti-miR-NC組相比,si-MiR497HG+anti-miR-588組NCI-H1975細胞中MiR497HG表達顯著升高,48、72 h時細胞增殖顯著升高,遷移細胞數(shù)和侵襲細胞數(shù)均顯著升高,細胞凋亡率顯著降低(P<0.05)(見表6,圖4)。
圖3 過表達miR-588的肺癌細胞凋亡圖
表5 過表達miR-588對肺癌細胞增殖、遷移侵襲及凋亡的影響
注:與miR-NC組比較,*P<0.05
圖4 抑制miR-588并抑制MiR497HG的肺癌細胞凋亡圖
表6 抑制miR-588對抑制MiR497HG的肺癌細胞增殖、遷移侵襲抑制及凋亡促進作用的影響
注:與si-MiR497HG+anti-miR-NC組比較,*P<0.05
最近,LncRNA正在成為各種流行癌癥(如肺癌)中腫瘤抑制和致癌功能的重要因素[8-9]。 LncRNAs是長度在200 nt到100 kb,缺乏明顯的開放閱讀框架,因此,它們不能作為蛋白質(zhì)合成的模板[10]。 盡管如此,LncRNA可能是多種類型癌癥中腫瘤發(fā)生的主要原因[11]。 例如,lncRNA轉(zhuǎn)移相關(guān)的肺腺癌轉(zhuǎn)錄物1(MALAT1)被認(rèn)為通過影響運動相關(guān)基因的表達來增強體外非小細胞肺癌細胞的細胞遷移[12]。Eissa等[13]在膀胱癌的研究中報道,Lnc RNA miR-497-HG具有較高的診斷膀胱癌的準(zhǔn)確度,對膀胱癌的診斷和靶向治療具有巨大的潛力。Ding等[14]在原發(fā)性肺癌的乳腺癌中發(fā)現(xiàn),MiR497HG的表達異常升高。我們推測MiR497HG在肺癌中可能也會出現(xiàn)異常表達,并對肺癌細胞的細胞表型具有一定的調(diào)控作用。為了驗證這一猜測,本研究運用qRT-PCR法檢測了肺癌細胞中MiR497HG的表達,發(fā)現(xiàn)MiR497HG異常升高,這與其在膀胱癌中的高表達和Ding的實驗結(jié)果相吻合,證實了MiR497HG在肺癌細胞中的異常上調(diào);進一步研究發(fā)現(xiàn),抑制MiR497HG可抑制肺癌細胞的增殖、遷移侵襲,促進凋亡,這些結(jié)果為探索MiR497HG在肺癌中的功能提供更充分的理論依據(jù);深入研究,通過生物信息學(xué)、雙熒光素酶報告基因檢測實驗和Western blot實驗驗證MiR497HG可靶向負(fù)調(diào)控miR-588,提示MiR497HG在肺癌中的功能可能與調(diào)控miR-588相關(guān)。
miRNA被認(rèn)為是一類非編碼RNA,通過抑制靶基因的3′UTR區(qū)域的mRNA,調(diào)節(jié)基因的表達[15]。研究表明,miRNA在細胞過程中具有至關(guān)重要的作用,包括增殖、凋亡和細胞能動性。miRNAs的失調(diào)已在多種類型的腫瘤中得到證實,包括肺癌、乳腺癌和結(jié)腸癌,調(diào)控腫瘤的發(fā)生[16-18]。在這些miRNA中,miR-588在前列腺癌中高表達,與預(yù)后差相關(guān)[19],其在胃癌、乳腺癌中均低表達,發(fā)揮抑癌功能[20-21]。Qian等[22]在研究中報道,miR-588在肺鱗癌組織中的表達明顯的低于非腫瘤組織,并與腫瘤的分期、淋巴結(jié)侵襲呈負(fù)相關(guān),并且其還可靶向顆粒體蛋白前體(GRN)抑制腫瘤細胞的遷移和侵襲,揭示了GRN參與miR-588介導(dǎo)的肺鱗癌進展中的抑制功能。本研究運用qRT-PCR法檢測了肺癌細胞中miR-588的表達發(fā)現(xiàn),miR-588的表達異常降低,并且過表達miR-588可抑制肺癌細胞的增殖、遷移侵襲,促進凋亡,這些實驗結(jié)果與Qian在肺鱗癌中的研究結(jié)果相一致,再次證實miR-588在肺癌中的抑癌功能,為深入探索miR-588在肺癌中的潛在治療價值奠定基礎(chǔ);進一步研究發(fā)現(xiàn),過表達miR-588可逆轉(zhuǎn)MiR497HG對肺癌細胞的增殖、遷移侵襲的抑制和凋亡的促進作用,這說明不僅MiR497HG可靶向調(diào)控肺癌細胞中miR-588的表達,相反,miR-588也可逆向負(fù)調(diào)控MiR497HG的表達和功能。這為MiR497HG、miR-588在肺癌中的功能探索提供更充分的理論參考。在前人研究的基礎(chǔ)上,我們推理發(fā)現(xiàn)MiR497HG/miR-588/GRN信號通路在肺癌的增殖、遷移和侵襲過程中發(fā)揮重要作用,由于miR-588在胃癌中還可靶向EIF5A2調(diào)控癌細胞的遷移侵襲[20],我們猜測miR-588在肺癌中有很大可能也可靶向EIF5A2調(diào)控肺癌的進展。本課題后續(xù)將繼續(xù)探討肺癌中miR-588下游的靶蛋白基因的調(diào)控機制,為肺癌的精準(zhǔn)治療提供更充分的理論支持。
綜上所述,長鏈非編碼RNA MiR497HG可抑制肺癌細胞的增殖、遷移侵襲,促進凋亡,其機制與靶向負(fù)調(diào)控miR-588有關(guān),為肺癌的治療提供新的治療靶標(biāo)。