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    菊苣酸脂質(zhì)體制備工藝研究

    2020-02-24 09:04:04王玉真高爽孫越張麗薄福民封安杰李凌軍
    山東科學(xué) 2020年1期
    關(guān)鍵詞:菊苣卵磷脂水合

    王玉真,高爽,孫越,張麗,薄福民,封安杰,李凌軍

    (山東中醫(yī)藥大學(xué) 藥學(xué)院,山東 濟南 250355)

    菊苣酸(chicoric acid ,CA)是一種咖啡酸衍生物,主要存在于紫錐菊、菊苣、白頭翁、蒲公英等天然植物中[1-4]?!懊庖咧参铩弊襄F菊作為免疫促進劑和調(diào)節(jié)劑,受到國內(nèi)外的極大關(guān)注,菊苣酸就是其有效活性成分之一[5-6]?,F(xiàn)代藥理學(xué)研究表明,菊苣酸具有抗氧化、保護心血管、抗動脈粥樣硬化、抗炎、抗HIV病毒、抗乙型肝炎病毒、降血糖、治療脂肪肝、降尿酸等作用[7]。

    菊苣酸化學(xué)性質(zhì)不穩(wěn)定,受熱見光易分解,膜滲透性差,口服生物利用度較低,容易在胃內(nèi)發(fā)生降解,且腸道吸收較差[8-9]。脂質(zhì)體作為一種新型藥物載體,具有生物相容性好、生物利用度高、提高藥物穩(wěn)定性、促進吸收等優(yōu)點[10]。因此,為了提高菊苣酸穩(wěn)定性及生物利用度,將其制備成脂質(zhì)體。目前常用pH梯度、薄膜分散、乙醇注入、逆向蒸發(fā)法來制備脂質(zhì)體,具體選擇何種方法由藥物的性質(zhì)決定[10]??梢酝ㄟ^透析[11]、高速離心[12]、微柱離心[13]、凝膠柱色譜[14]、超濾離心[15]等方法測定脂質(zhì)體包封率,每種測定方法都有其優(yōu)勢和不足,需根據(jù)藥物性質(zhì)及實際情況選擇合適的測定方法。通過前期實驗篩選,確定薄膜分散法為菊苣酸脂質(zhì)體的制備方法,透析法為菊苣酸脂質(zhì)體包封率測定方法,在此基礎(chǔ)上,本實驗通過單因素及Box-Behnken design(BBD)響應(yīng)面法,以菊苣酸的包封率為評價指標,考察菊苣酸脂質(zhì)體的最佳制備工藝。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器

    Technologies 1260 Series高效液相色譜儀(美國Agilent公司);IKA RV8旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(艾卡(廣州)儀器設(shè)備有限公司);BLON-650Y超聲波細胞粉碎機(鄭州比朗儀器有限公司)。

    1.2 材料

    菊苣酸(純度98%,批號171225A,南京道斯夫生物科技有限公司);菊苣酸對照品(純度97.6% ,批號111752-201703,中國食品藥品檢定研究院);大豆卵磷脂(w(PC)≥90%,批號T27D9F77974)、膽固醇(純度95%,批號L27J9F66501)、透析袋(截留分子量8000~14 000 D ,批號R27F10J81596)均購自上海源葉生物科技有限公司;水為蒸餾水(山東中醫(yī)藥大學(xué)制造);甲醇、乙腈為色譜純,其他試劑均為分析純。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 方法學(xué)考察

    2.1.1 色譜條件

    Agilent ZORBAX SB-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm , 5 μm);流動相為乙腈-0.2%磷酸溶液(體積比22:78);流速為1 mL·min-1;檢測波長為326 nm。

    2.1.2 對照品儲備液

    精密稱取菊苣酸對照品適量,加甲醇溶解得到濃度為0.476 0 mg·mL-1的菊苣酸對照品儲備液。

    2.1.3 供試品溶液

    精密量取菊苣酸脂質(zhì)體溶液1.0 mL,置于10 mL棕色容量瓶中,甲醇溶解定容至刻度,搖勻,用0.22 μm濾膜過濾,即得菊苣酸供試品溶液。

    2.1.4 專屬性考察

    分別精密移取對照品溶液、空白脂質(zhì)體溶液和菊苣酸脂質(zhì)體溶液適量,進樣測定,記錄色譜圖,結(jié)果見圖1。

    2.1.5 標準曲線的繪制

    分別精密移取對照品儲備液0.20,0.50,1.00,1.50,2.00,2.50 mL于10 mL棕色容量瓶中,甲醇稀釋定容,得濃度分別為0.009 52,0.023 8,0.047 6,0.071 4,0.095 2,0.119 0 mg·mL-1的菊苣酸對照品溶液。進行HPLC測定,記錄峰面積。以菊苣酸對照品溶液濃度為橫坐標X,以峰面積為縱坐標Y,得菊苣酸回歸方程為Y=22 305X-140.14(R2=0.999 7 ,n=6)。結(jié)果表明,菊苣酸在0.009 52~0.119 00 mg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積的積分值線性關(guān)系良好。

    2.1.6 精密度實驗

    低濃度、中濃度、高濃度的菊苣酸對照品溶液,每個樣品連續(xù)進樣6次,記錄峰面積。測得低濃度、中濃度、高濃度菊苣酸峰面積相對標準偏差分別為 0.60%,0.08%,0.06%(n=6),表明該方法精密度良好。

    圖1 空白脂質(zhì)體、菊苣酸脂質(zhì)體、菊苣酸對照品的HPLC圖Fig.1 HPLC diagram of blank liposome, chicoric acid liposome, chicoric acid, and reference substance

    2.1.7 穩(wěn)定性實驗

    精密移取一定量的菊苣酸供試品溶液,在室溫下分別放置0,2,4,6,12,24 h后進行測定。測得菊苣酸峰面積相對標準偏差為 0.23%(n=6),表明供試品在24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

    2.1.8重復(fù)性實驗

    精密移取同一樣品6份,按照2.1.3項下方法制備供試品溶液,進行測定。測得菊苣酸峰面積相對標準偏差為 0.45%(n=6),表明該方法重復(fù)性良好。

    2.1.9 加樣回收實驗

    精密移取同一已知濃度供試品6份,分別精密加入適量菊苣酸對照品溶液,測定其峰面積,計算加樣回收率,得菊苣酸的平均加樣回收率為103.19%,表明該方法可靠性較高。

    2.2 菊苣酸脂質(zhì)體制備及包封率測定

    2.2.1 菊苣酸脂質(zhì)體的制備

    稱取適量的磷脂、膽固醇,加入氯仿振蕩使之溶解,菊苣酸用無水乙醇溶解后,將兩者混勻,在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)成膜(45 ℃),繼續(xù)抽真空15 min,再加入水合介質(zhì),水化一定時間后,冰浴條件下用超聲波細胞粉碎機超聲一定時間(超聲3 s,間隔3 s),即得菊苣酸脂質(zhì)體混懸液[16-17]。

    2.2.2 菊苣酸脂質(zhì)體包封率的測定

    精密量取適量菊苣酸脂質(zhì)體,甲醇溶解,過濾,進行HPLC測定,通過計算可得菊苣酸的質(zhì)量濃度(C0)。另取等量脂質(zhì)體于透析袋內(nèi),以蒸餾水為透析介質(zhì),透析8 h,透析后的脂質(zhì)體用甲醇破乳,過濾,進行HPLC測定,得菊苣酸的質(zhì)量濃度(C1),根據(jù)式(1)計算菊苣酸的包封率。

    包封率=包封的藥量/系統(tǒng)中包封與未包封藥物總量×100%。

    (1)

    2.3 菊苣酸脂質(zhì)體的單因素考察

    2.3.1 磷脂與膽固醇的質(zhì)量比篩選

    固定卵磷脂與菊苣酸的質(zhì)量比為10:1,以5 mL蒸餾水作為水合介質(zhì),水合時間為30 min,超聲時間為3 min,分別以卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為3:1,4:1,6:1,8:1,10:1制備脂質(zhì)體,測得包封率分別為49.69%,51.07%,43.06%,38.91%,39.10%。結(jié)果表明,當(dāng)卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1時包封率最大,且隨著卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比的逐漸增加包封率先增后減。

    2.3.2 磷脂與藥物的質(zhì)量比篩選

    固定卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1,以5 mL蒸餾水作為水合介質(zhì),水合時間為30 min,超聲時間為3 min,選取卵磷脂與藥物的質(zhì)量比為8:1,10:1,12:1,14:1,16:1制備脂質(zhì)體,測得包封率分別為43.20%,51.07%,53.03%,51.48%,45.67%。結(jié)果表明,當(dāng)卵磷脂與菊苣酸的質(zhì)量比為12:1時包封率最大,比例增大或減小包封率均降低。

    2.3.3 水合介質(zhì)種類篩選

    固定卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1,卵磷脂與藥物的質(zhì)量比為12:1,水合介質(zhì)用量為5 mL,水合時間為30 min,超聲時間為3 min,水合介質(zhì)分別為水和pH6.4,pH6.8,pH7.2的PBS(磷酸鹽)緩沖液制備脂質(zhì)體,測得包封率分別為52.31%,51.56%,47.82%,54.47%。結(jié)果表明,pH7.2的PBS緩沖液作為水合介質(zhì)時包封率最大。

    2.3.4 水合介質(zhì)用量篩選

    固定卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1,卵磷脂與藥物的質(zhì)量比為12:1,水合介質(zhì)為pH7.2的PBS緩沖液,水合時間為30 min,超聲時間為3 min,水合介質(zhì)用量分別為5,10,15,20 mL,測得包封率分別為53.25%,63.01%,62.19%,63.42%。結(jié)果表明,當(dāng)水合介質(zhì)用量為10 mL或更多時,包封率變化不大,因此水合介質(zhì)用量固定為10 mL。

    2.3.5 水合時間篩選

    固定卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1,卵磷脂與藥物的質(zhì)量比為12:1,水合介質(zhì)為pH7.2的PBS緩沖液10 mL,超聲時間為3 min,水合時間分別為30,60,90,120 min,測得包封率分別為64.43%,66.23%,62.38%,58.44%。結(jié)果表明,當(dāng)水合時間為60 min時,包封率最大。

    2.3.6 超聲時間篩選

    固定卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4:1,卵磷脂與藥物的質(zhì)量比為12:1,水合介質(zhì)為pH7.2的PBS緩沖液10 mL,水合時間分別為60 min,超聲時間分別2,4,6,8,10 min,測得包封率分別為63.72%,69.65%,72.38%,68.06%,61.80%??芍S著超聲時間的逐漸增加,包封率先增大后減小,在超聲時間為6 min時包封率最大。

    2.4 Box-Behnken design響應(yīng)面法優(yōu)化脂質(zhì)體處方

    2.4.1 實驗設(shè)計及結(jié)果

    以單因素試驗為基礎(chǔ),選擇了卵磷脂與膽固醇質(zhì)量比(X1)、卵磷脂與菊苣酸質(zhì)量比(X2)、超聲時間(X3)這三個對脂質(zhì)體包封率影響較大的因素作為實驗因素,采用響應(yīng)面法(BBD)進行分析,以包封率(Y)為評價指標。實驗設(shè)計及結(jié)果見表1、2。

    表1 Box-Behnken試驗設(shè)計因素和水平

    表2 Box-Behnken試驗設(shè)計及結(jié)果

    2.4.2 模型擬合

    本實驗通過Design Expert軟件對實驗數(shù)據(jù)(表2)進行了分析及模型擬合,結(jié)果見表3,并對得到的擬合模型進行了評價,得到回歸方程:

    Y=74.97+0.29X1-2.53X2+1.60X3-1.75X1X2+0.41X1X3-0.21X2X3-2.20X12-5.24X22-3.20X32(R2=0.981 8,P< 0.000 1,F(xiàn)=41.95,失擬度檢驗P=0.055 5> 0.05、F=6.17 )。

    由擬合結(jié)果可知,模型F=41.95,P< 0.000 1,說明該擬合模型具有高度顯著性;失擬值F=6.17,P>0.05,說明失擬值不顯著性,模型無失擬情況且擬合良好,因此,可以用該模型對實驗結(jié)果進行統(tǒng)計分析。方程的決定系數(shù)R2=0.981 8>0.95,說明該模型能準確地預(yù)測實際情況[18]。

    表3 方差分析結(jié)果

    續(xù)表3

    2.4.3 響應(yīng)面工藝優(yōu)化分析

    根據(jù)擬合得到的結(jié)果,保持一個因素水平不變,繪制出Y與其他2個因素的等高線圖和3D效應(yīng)曲面圖,從而預(yù)測出菊苣酸脂質(zhì)體的最優(yōu)制備工藝,見圖2。由圖2和表3數(shù)據(jù)可知,X2,X3,X1X2,X12,X22,X32的P值均小于0.05,對包封率影響顯著,且各因素之間存在交互影響。

    圖2 Y與(X1,X2,1)、(X1,X3,2)、(X2,X3,3)三因素的三維效應(yīng)曲面圖和等高線圖Fig.2 Three-dimensional effect surface diagram and contour map of Y and three factors(X1, X2, 1),(X1,X3, 2), and (X2,X3, 3)

    根據(jù)Box-Behnken響應(yīng)面試驗設(shè)計結(jié)果,得到菊苣酸脂質(zhì)體最優(yōu)工藝條件:磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4.20:1,磷脂與藥物的質(zhì)量比為11.44:1,超聲時間為6.54 min。在實際實驗過程中為了操作便捷,僅保留小數(shù)點后一位,即磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4.2:1,磷脂與藥物的質(zhì)量比為11.4:1,超聲時間為6.5 min。為檢驗結(jié)果的可靠性,根據(jù)上述調(diào)整后條件進行3批驗證實驗,測得包封率的平均值為75.18%,相對標準偏差為2.1%,與理論預(yù)測值(75.57%)相差不大,相對偏差低于3%,表明該模型可靠,菊苣酸脂質(zhì)體制備采用響應(yīng)面法具有可行性[19]。

    2.5 脂質(zhì)體的載藥量、粒徑和Zeta電位

    測定最優(yōu)工藝所得菊苣酸脂質(zhì)體的載藥量,并采用納米激光粒徑分析儀分別測定脂質(zhì)體的平均粒徑、多分散指數(shù)(PDI)和Zeta電位。實驗結(jié)果表明 ,其載藥量為5.15%、平均粒徑為150.73 mm、PDI為0.244、Zeta電位為-12.82 mV,粒徑分布及Zeta電位圖見圖3。

    圖3 菊苣酸脂質(zhì)體的粒徑分布與Zeta電位Fig. 3 Particle size distribution and zeta potential of chicoric acid liposome

    3 結(jié)論與討論

    在前期實驗中,分別用高速離心法、透析法和葡聚糖凝膠微柱離心法來測定菊苣酸脂質(zhì)體的包封率,在高速離心的過程中,規(guī)定時間內(nèi)脂質(zhì)體無法在離心管中有效沉積,后來又延長離心時間,脂質(zhì)體與游離藥物也無法有效分離,因此該方法不能用來測定菊苣酸脂質(zhì)體包封率。葡聚糖凝膠微柱離心法測定脂質(zhì)體包封率時,利用分子篩的原理分離脂質(zhì)體及游離藥物,實驗結(jié)果表明空白脂質(zhì)體可以有效地洗脫下來,但凝膠微柱對游離藥物保留率不高,從而導(dǎo)致脂質(zhì)體與游離藥物也無法有效分離,因此該方法無法有效分離脂質(zhì)體與游離藥物。透析法測定包封率時,透析8 h后透析袋內(nèi)外游離藥物濃度即可達到平衡,脂質(zhì)體被有效截留在透析袋內(nèi),且菊苣酸在該時間段內(nèi)保持穩(wěn)定。因高速離心法和葡聚糖凝膠微柱離心法無法將脂質(zhì)體與游離藥物有效分離,最終選擇透析法作為菊苣酸脂質(zhì)體包封率測定方法。

    本實驗也分別考察了薄膜分散法、乙醇注入法、逆向蒸發(fā)法制備菊苣酸脂質(zhì)體,實驗結(jié)果顯示,采用薄膜分散-超聲法制得菊苣酸脂質(zhì)體時包封率較高,因此確定菊苣酸脂質(zhì)體制備方法為薄膜分散-超聲法。采用單因素試驗,考察了卵磷脂與膽固醇的質(zhì)量比、卵磷脂與藥物的質(zhì)量比、水合介質(zhì)種類、水合介質(zhì)用量、水合時間和超聲時間,確定了水合介質(zhì)為pH7.2的PBS緩沖液、用量為10 mL、水合時間為60 min,又通過Box-Behnken試驗設(shè)計得到了Y與X1,X2,X3三者之間關(guān)系的回歸模型,充分考慮了各因素的交互作用[20],得到優(yōu)化后制備工藝條件:磷脂與膽固醇的質(zhì)量比為4.20:1、磷脂與藥物的質(zhì)量比為11.44:1、超聲時間為6.54 min,在此條件下制備得到的脂質(zhì)體包封率為75.18%,驗證實驗結(jié)果表明,該制備工藝穩(wěn)定可行。

    目前,脂質(zhì)體制備用到的水化介質(zhì)多為水或磷酸鹽緩沖液(具體選擇何種水化介質(zhì)需根據(jù)藥物性質(zhì)確定),因此制備得到的大多數(shù)載藥脂質(zhì)體均處于水系環(huán)境中,存在脂質(zhì)體融合、藥物滲漏、磷脂水解等問題,不適合長時間貯存。冷凍干燥法被證實是可以有效改善脂質(zhì)體長期穩(wěn)定性的方法之一,因此下一步可將制備好的菊苣酸脂質(zhì)體混懸液制備為菊苣酸脂質(zhì)體凍干制劑,以提高制劑的穩(wěn)定性。

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