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    萊茵衣藻BBS1蛋白的原核表達(dá)、純化及其多克隆抗體制備

    2019-12-21 07:42:24劉雁霞劉思佳黃夢倩樊振川
    天津科技大學(xué)學(xué)報 2019年6期
    關(guān)鍵詞:衣藻萊茵纖毛

    劉雁霞,劉思佳,王 慧,黃夢倩,王 巖,樊振川

    (天津科技大學(xué)大健康生物技術(shù)國家國際科技合作基地,天津科技大學(xué)食品工程與生物技術(shù)學(xué)院,天津 300457)

    萊茵衣藻(C.reinhardtii)是當(dāng)今國內(nèi)外研究纖毛結(jié)構(gòu)和組裝的主要模式生物之一,是結(jié)構(gòu)簡單的單細(xì)胞真核藻類[1].纖毛缺失或信號傳導(dǎo)功能障礙會造成一系列的疾病,統(tǒng)稱為纖毛病,其中巴德-畢氏綜合征(Bardet-Biedl syndrome,BBS)是一種罕見的常染色體隱性遺傳纖毛病,其常見的癥狀有視網(wǎng)膜變性、腎囊腫、肝臟纖維化、肥胖、先天性心臟病等.目前已鑒定出的基因有21 種[1].

    BBSome 復(fù)合物蛋白主要存在于纖毛膜與纖毛軸絲之間的區(qū)域,可與纖毛膜上的受體結(jié)合,具有信號傳導(dǎo)作用.BBS1 最初由Mykytyn 發(fā)現(xiàn),bbs1 是一種常見的BBS 綜合征突變基因,由它引起的突變約占30%,BBS1 可與BBS3b 直接連接,通過BBS3b與纖毛內(nèi)運輸?shù)鞍?IFT)結(jié)合,運送至纖毛頂端,參與完成信號傳導(dǎo)[1-2].

    為進一步研究BBSome 與IFT 蛋白的相互作用關(guān)系,本實驗室需制備檢測萊茵衣藻內(nèi)BBS1 的抗體,通過擴增bbs1 基因片段,連接至pET-28a(+)表達(dá)載體,表達(dá)融合蛋白6×His-BBS1,獲得多克隆抗體,為進一步研究BBSome 與IFT 蛋白的相互作用,以及BBSome 蛋白是如何完成纖毛的信號傳導(dǎo)作用奠定分子基礎(chǔ).這也是首次用萊茵衣藻bbs1 全基因序列制備兔抗萊茵衣藻多克隆抗體.

    1 材料及方法

    1.1 材料

    1.1.1 質(zhì)粒及菌株

    萊茵衣藻(C.reinhardtii)CC-125 野生型藻種、萊茵衣藻(C.reinhardtii)bbs1 突變型藻種、大腸桿菌(E.coli)XL1-blue、質(zhì)粒pET-28a(+)、感受態(tài)細(xì)胞均由本實驗室保存.

    1.1.2 試劑

    限制性內(nèi)切酶、蛋白marker,美國Thermo 公司;100 bp、1 kbp DNA marker、T4 DNA 連接酶由北京全式金生物技術(shù)有限公司;質(zhì)粒小提試劑盒,天津潤泰科技發(fā)展有限公司;瓊脂糖凝膠回收試劑盒,美國Omega Bio-Tek 公司;Protein A SepharoseTMCL-4B 抗體純化介質(zhì),美國GE Healthcare 公司;其他試劑與報道文獻(xiàn)一致[3].免疫實驗由華大蛋白質(zhì)研發(fā)中心有限公司進行.

    1.2 方法

    1.2.1 表達(dá)載體構(gòu)建

    萊茵衣藻bbs1 cDNA 長度為1 731 bp,且序列不含BamHⅠ和HindⅢ酶切位點,設(shè)計引物序列為F:5′-CCATGCTGCCATCAGTCAAG-3′、R:5′-GGCTCCACCTCCTCCGGCTC-3′,下劃線部分為限制性內(nèi)切酶切位點,由蘇州金唯智生物有限公司合成.bbs1 cDNA 全基因序列通過PCR 獲得[3]. PCR 產(chǎn)物純化后,用BamHⅠ和HindⅢ雙酶切,同時雙酶切表達(dá)載體pET-28a(+),分別回收大小為1 731 bp 的目的基因和5 344 bp 的載體片段.回收后將載體和目的基因按照摩爾質(zhì)量1﹕3 的比例室溫連接1 h,同時設(shè)置對照組;轉(zhuǎn)化至大腸桿菌(E.coli)XL1-blue,抗性平板(100 μg/mL 卡那霉素)37 ℃過夜培養(yǎng)14~16 h;挑取轉(zhuǎn)化子至液體LB 培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜,提質(zhì)粒后BamHⅠ和HindⅢ雙酶切進行驗證,正確則測序.

    1.2.2 誘導(dǎo)表達(dá)

    將測序正確的重組質(zhì)粒pET-28a(+)-bbs1 進行誘導(dǎo)表達(dá),誘導(dǎo)方法參照文獻(xiàn)[4],誘導(dǎo)16~18 h 后,4 ℃、8 000g 離心2 min,收集菌體.加入裂解液/結(jié)合液(50 mmol/L pH 7.4 Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,20 mmol/L 咪唑)將菌體重懸(20 mL 裂解液重懸200 mL 菌體),超聲破碎細(xì)胞.分別收集部分全蛋白,上清液和沉淀進行12% SDS-PAGE 電泳,鑒定表達(dá)融合蛋白存在于上清液或沉淀[5].

    1.2.3 蛋白純化

    400 mL 菌體高壓破碎后,4 ℃、12 000g 離心20 min,蛋白以包涵體形式存在于沉淀中,棄上清液,將沉淀用裂解液重懸,清洗2 次.用含2 mol/L 尿素的裂解液清洗沉淀2 次后,最終用含8 mol/L 尿素的裂解液將沉淀完全溶解,4 ℃、12 000g 離心20 min,將上清液過0.22 μm 濾膜與1 mL Ni SepharoseTM6 Fast Flow 填料4 ℃結(jié)合1 h;棄流穿液,再用5 倍柱體積的裂解液(含8 mol/L 尿素)漂洗填料3 次;待漂洗液流干后加入用3 mL 洗脫緩沖液(50 mmol/L pH 7.4 Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,500 mmol/L 咪唑,8 mol/L 尿素)混勻,靜置10 min 收集洗脫液,將收集到的洗脫液重新加入混勻,重復(fù)3 次,得到最終洗脫液,測定濃度和純度.

    1.2.4 免疫

    首次免疫新西蘭大白兔之前用75%酒精擦拭兔子耳部靜脈[6],插入靜脈抽取陰性血100~200 μL,全血在室溫靜置30~120 min 后,1 500g 離心10 min,收集血清.首次免疫取免疫原400 μg,采用生理鹽水稀釋至200~500 μL,加入等體積的弗氏完全佐劑[7]混勻,形成油包水狀態(tài).進行背部多點皮下注射免疫,每10 d 加強免疫1 次,共加強免疫2 次.加強免疫取 200 μg 免疫原,用生理鹽水稀釋到 200~500 μL,再加入等體積弗氏不完全佐劑;用混勻儀器將溶液和佐劑混勻,形成油包水狀態(tài).

    1.2.5 多克隆抗體效價測定

    采用間接ELISA 法測定抗體效價[4],用包被液(碳酸鈉-碳酸氫鈉緩沖液,pH 9.6)稀釋抗原,終質(zhì)量濃度為2 μg/mL,每孔100 μL,4 ℃過夜;后用PBS 洗滌2 次.封閉液(1% BSA 或脫脂奶粉/PBS)封閉,每孔200 μL,37 ℃孵育2 h;后用洗液洗滌1 次.將多抗血清從200 倍開始用PBS 作2 倍梯度稀釋,空白對照為PBS,陰性對照為陰性血清200 倍稀釋;每孔100 μL,37 ℃孵育1h;洗液洗滌3次,每 次10 min.以1﹕20 000 稀釋比加入二抗,每孔100 μL,37 ℃孵育1 h,洗液洗滌3 次,每次10 min.加入顯色液(1% A 液+10% B 液,A 液為1%TMB 溶于DMSO,B 液為 0.1% H2O2檸檬酸緩沖液)每孔100 μL,顯色時間為5~15 min;每孔加入50 μL 終止液終止.雙波長(450 nm、630 nm)測定吸光度,記錄保存數(shù)據(jù)并作圖分析.多抗血清效價為1/2 最大吸光度所對應(yīng)的稀釋倍數(shù).

    1.2.6 多克隆抗體純化及檢測

    Protein A SepharoseTMCL-4B 純化血清[5],稀釋至1 mg/mL 后,留存?zhèn)溆茫?0 μg 經(jīng)過蛋白定量處理的萊茵衣藻上清液蛋白檢測抗體特異性,進行12% SDS-PAGE 電泳,轉(zhuǎn)膜,封閉后以1﹕1 000 的稀釋比孵育多克隆抗體,二抗采用HRP 標(biāo)記的羊抗兔IgG(1﹕10 000 稀釋),進行ECL 顯色.

    1.2.7 免疫熒光定位萊茵衣藻中BBS1 蛋白

    免疫熒光對萊茵衣藻內(nèi)BBS1 蛋白定位,固定制片后,于室溫下利用牛血清白蛋白(BSA)封閉1 h,用純化后的BBS1 多克隆抗體(1﹕10 稀釋比)室溫孵育4 h,用熒光標(biāo)記羊抗兔/小鼠二抗室溫孵育1 h,封片后在熒光顯微鏡下拍照.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 重組質(zhì)粒pET-28a(+)-bbs1 的構(gòu)建

    通過RT-PCR 擴增獲得1 731 bp 的bbs1 目的基因,連接至載體后,轉(zhuǎn)化挑取單克隆提取質(zhì)粒并酶切驗證.圖1 為C.reinhardtii CC-125 總RNA 提取結(jié)果;圖2(a)顯示PCR 擴增產(chǎn)物,條帶單一且大小正確;圖2(b)顯示重組表達(dá)質(zhì)粒pET-28a(+)-bbs1 陽性克隆雙酶切驗證結(jié)果,雙酶切后兩條帶大小與預(yù)期結(jié)果一致,經(jīng)測序驗證結(jié)果正確,說明表達(dá)載體pET-28a(+)-bbs1 構(gòu)建成功.

    圖1 C. reinhardtii CC-125總RNA的提取 Fig. 1 Total RNA extraction of C. reinhardtii CC-125

    (a) bbs1 基因PCR 擴增(b) pET-28a(+)-bbs1 的雙酶切驗證 (a)中M. 100 bp DNA marker;1. bbs1 基因PCR. (b)中M. 1 kbp marker;1. pET-28a(+)-bbs1 的BamHⅠ和HindⅢ雙酶切

    2.2 6×His-BBS1誘導(dǎo)表達(dá)及純化

    融合蛋白6×His-BBS1 由DNAMan 預(yù)測大小約6.3×104,添加IPTG 誘導(dǎo)后,經(jīng)SDS-PAGE 分析顯示,在5.5×104~7.0×104間條帶,表達(dá)量略低,且融合蛋白大多以包涵體形式存在于沉淀中;約1 L 誘導(dǎo)后菌體經(jīng)親和層析純化后蛋白質(zhì)量濃度可達(dá)到0.5 mg/mL,共2.5 mg,經(jīng)考馬斯亮藍(lán)染色,TBST 脫色后,利用軟件Image J 對其進行灰度分析,純度可達(dá)90%以上,可作為免疫抗原(圖3).

    M.蛋白marker;1.誘導(dǎo)前對照;2.誘導(dǎo)后全細(xì)胞;3.誘導(dǎo)后上清液蛋白;4.誘導(dǎo)后沉淀蛋白;5.純化后目的蛋白

    2.3 抗體的效價及特異性檢測

    抗血清檢測參照纖毛內(nèi)運輸?shù)鞍譏FT46 抗體制備方法[5],采用間接ELISA 法測定,1/2 最大吸光度所對應(yīng)的稀釋倍數(shù)為1﹕102 400,因此多抗血清抗血清滴定度達(dá)到 1﹕102 400(圖 4).對抗血清進行SDS-PAGE 考馬斯亮藍(lán)染色檢測,在5.5×104和 2.5×104處可見較純的抗體重鏈和輕鏈(圖5).免疫印跡法(Western blot)驗證抗血清特異性結(jié)果如圖6所示.

    圖4 間接ELISA法測定抗血清效價 Fig. 4 Determination of anti-BBS1 polyclonal antiserum with indirect ELISA

    圖5 抗血清SDS-PAGE純度檢測 Fig. 5 Determination of anti-BBS1 polyclonal antiserum purity with SDS-PAGE

    (a)中1. 免疫前陰性血清檢測萊茵衣藻CC-125;2. Anti-BBS1 多克隆抗體檢測萊茵衣藻CC-125.(b)中1. Anti-BBS1 多克隆抗體檢測萊茵衣藻CC-125;2. Anti-BBS1 多克隆抗體檢測萊茵衣藻bbs1 突變體

    經(jīng)免疫印跡實驗分析顯示,純化后的抗血清在 1﹕1 000 的稀釋比下,在6.3×104處可見特異性結(jié)合條帶,而在bbs1 突變體藻株中,無特異性結(jié)合條帶,由此可知抗血清可與萊茵衣藻BBS1 蛋白發(fā)生特異性結(jié)合(圖6),表明所制備的多克隆抗體特異性好,靈敏度高.

    2.4 BBS1蛋白在萊茵衣藻中的定位

    通過免疫熒光技術(shù)對萊茵衣藻BBS1 蛋白進行定位分析,可通過熒光信號看出多克隆抗體可以與萊茵衣藻內(nèi)的BBS1 蛋白進行特異性結(jié)合,且該蛋白可以進入萊茵衣藻纖毛內(nèi),該蛋白在細(xì)胞和纖毛中的分布可通過野生型藻種中紅色熒光判斷(圖7).由圖7可知萊茵衣藻中BBS1 蛋白分布于基體部位以及在鞭毛中呈點狀分布.

    圖7 免疫熒光檢測BBS1蛋白在萊茵衣藻纖毛中的定位Fig. 7 Immunofluorescence detection of BBS1 protein localization in C. reinhardtii

    3 結(jié) 語

    BBSome 復(fù)合物蛋白主要存在于纖毛膜與纖毛軸絲之間的區(qū)域,與纖毛膜上分布的受體存在一定的關(guān)系,對纖毛的信號傳導(dǎo)具有極其重要的作用,這也是大部分的BBSome 復(fù)合物蛋白在細(xì)菌內(nèi)表達(dá)時,大多以包涵體的形式存在的原因.本文中與His 標(biāo)簽共表達(dá)的BBS1 蛋白也是以包涵體的形式存在,但GST 蛋白促溶與BBS1 融合表達(dá)時可以以上清液的形式存在.考慮到GST 標(biāo)簽過大,不易表達(dá),且標(biāo)簽產(chǎn)生的抗體可能會影響后續(xù)抗血清的質(zhì)量,因此選用His 標(biāo)簽蛋白與BBS1 融合表達(dá)作為免疫抗原.包涵體蛋白變性純化后可直接免疫,整個標(biāo)簽大小約為4.3×103,一般不會影響蛋白的結(jié)構(gòu)和功能;另外,通過組氨酸與金屬離子(Ni2+)的螯合作用,對表達(dá)蛋白進行親和層析純化,方法體系很成熟.

    免疫抗原的純度越高所產(chǎn)生的抗血清質(zhì)量越好,由于本次實驗免疫抗原純度達(dá)到90%以上,抗血清在經(jīng)過一步純化后就能夠特異性地識別萊茵衣藻內(nèi)的內(nèi)源性BBS1 蛋白,為在萊茵衣藻中深入研究BBSome 復(fù)合物蛋白提供技術(shù)支持,為后續(xù)闡明其作用機理、纖毛病的預(yù)防和治療提供理論依據(jù).

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