陳歡,王斌,史學(xué)偉,鄭曉吉,郭孝敬,黃倩
(石河子大學(xué) 食品學(xué)院,新疆 石河子 832000)
大量研究證明,人體胃腸道內(nèi)的乳酸菌重要種類(lèi)及數(shù)量對(duì)人體健康有著極為重要的作用,一些益生乳酸菌可在人體的腸道內(nèi)吸附并且繁殖,從而形成了生理性防護(hù)屏障,間接起到了排斥、抑制有害菌的存活生長(zhǎng),調(diào)節(jié)人體內(nèi)環(huán)境、穩(wěn)定健康的作用[1]。不僅如此,乳酸菌在食品領(lǐng)域也有其他菌種不可替代的作用,目前乳酸菌在乳制品、調(diào)味品等類(lèi)型的食品中都得到了重要的應(yīng)用。例如,乳酸菌對(duì)于食醋的釀造是至關(guān)重要的微生物群體,在此過(guò)程中酒精與乳酸菌代謝產(chǎn)生的乳酸會(huì)發(fā)生酯化反應(yīng)生成醋中的重要芳香呈味物質(zhì)乳酸乙酯,醋在釀造過(guò)程中若沒(méi)有乳酸菌或乳酸菌的量不足就會(huì)導(dǎo)致食醋的口感欠缺[2]。
奶酪是新疆哈薩克族最具特色的自制發(fā)酵食品之一,這種特色奶酪中蘊(yùn)含著大量的乳酸菌資源,但是隨著這些年國(guó)內(nèi)工業(yè)化進(jìn)程的飛速發(fā)展,人們對(duì)于市場(chǎng)上商業(yè)化的奶酪需求遠(yuǎn)大于這類(lèi)傳統(tǒng)手工奶酪,又因乳酸菌對(duì)奶酪風(fēng)味有著十分重要的影響,這樣不僅會(huì)造成奶酪口味的單一,更會(huì)造成優(yōu)質(zhì)乳酸菌資源的流失。所以,本研究對(duì)新疆部分地區(qū)的哈薩克族傳統(tǒng)奶酪中具有潛在益生特性的乳酸菌進(jìn)行了篩選,期望可以對(duì)該地區(qū)的優(yōu)質(zhì)乳酸菌資源及這類(lèi)傳統(tǒng)奶酪起到一定的保護(hù)作用,并為益生菌食品的發(fā)展奠定一定基礎(chǔ)。
菌株來(lái)源:本試驗(yàn)從新疆伊犁地區(qū)牧民自制哈薩克族傳統(tǒng)奶酪中分離篩選出8株乳酸菌。
主要試劑:細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒、溶菌酶:北京酷來(lái)搏科技有限公司;細(xì)菌通用引物27F與1492r:上海捷瑞生物工程有限公司;瓊脂糖:生工生物工程(上海)有限公司;牛膽鹽:上海麥克林生化科技有限公司。
MRS固體培養(yǎng)基:牛肉膏 10.0 g、酵母膏5.0 g、檸檬酸氫二銨2.0 g、葡萄糖20.0 g、吐溫80 1.0 mL、乙酸鈉5.0 g、磷酸氫二鉀2.0 g、硫酸鎂0.58 g、硫酸錳0.25 g、瓊脂 18.0 g、蒸餾水1000 mL。
MRS液體培養(yǎng)基:牛肉膏 10.0 g、酵母膏5.0 g、檸檬酸氫二銨2.0 g、葡萄糖20.0 g、吐溫80 1.0 mL、乙酸鈉5.0 g、磷酸氫二鉀2.0 g、硫酸鎂0.58 g、硫酸錳0.25 g、蒸餾水1000 mL。
SW-CJ無(wú)菌操作臺(tái) 蘇州蘇潔凈化設(shè)備有限公司;CX21 FS1光學(xué)顯微鏡 Olympus公司;X7型多功能酶標(biāo)儀 基因有限公司;SPX-240B生化培養(yǎng)箱 常州諾基儀器有限公司;5810R高速冷凍離心機(jī) 德國(guó)Eppendorf儀器公司;B2J0智能數(shù)顯恒溫油水浴鍋 上海博訊實(shí)業(yè)有限公司;BYY-BC電泳儀 北京六一生物科技有限公司。
1.4.1 菌株的耐酸能力測(cè)定[4]
用1 mol/L HCl、1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)MRS液體培養(yǎng)基,pH值分別調(diào)為2,3.5,5,6.5,8,9.5,將純化的菌懸液以2%的接種量于不同pH值的200 mL MRS液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱24 h,將不同pH的菌液,用酶標(biāo)儀測(cè)定OD600 nm值,每組3個(gè)平行試驗(yàn),以分析酸度對(duì)乳酸菌生長(zhǎng)狀況的影響。
1.4.2 菌株對(duì)膽鹽耐受性測(cè)定
將待測(cè)菌株活化2次,活化好的乳酸菌株接種于MRS液體培養(yǎng)基于37 ℃培養(yǎng)24 h后,于3500 r/min離心20 min,收集菌體沉淀?xiàng)壣锨逡海w用等體積的滅菌的生理鹽水洗滌3次,以相同的條件離心,再將菌體重懸于等體積的生理鹽水中即可[5]。
將上述種子液分別接種于含有膽鹽0.03%、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%的液體MRS培養(yǎng)基中混勻,37 ℃培養(yǎng)24 h后用菌落平板計(jì)數(shù)法計(jì)算活菌數(shù),每組做3個(gè)平行試驗(yàn),計(jì)算公式如下:
式中:Nth為含有不同濃度膽鹽的MRS培養(yǎng)基中活菌數(shù),CFU/mL;Noh為不含膽鹽的MRS培養(yǎng)基中活菌數(shù),CFU/mL。
1.4.3 菌株對(duì)模擬胃液耐受性測(cè)定[6-8]
新鮮人工模擬胃液的配制:將胃蛋白酶溶于PBS緩沖液中使其終濃度為3 g/L,用HCl調(diào)節(jié)pH值為2.7,經(jīng)0.2 μL無(wú)菌濾膜過(guò)濾即為人工模擬胃液。
將試驗(yàn)篩選的乳酸菌進(jìn)行活化后,取30 mL乳酸菌培養(yǎng)物在4 ℃,3500 r/min下離心12 min,收集到的菌體用滅菌后的PBS緩沖溶液(0.1 mol/L,pH 7.2,內(nèi)含80 g/L NaCl)以1∶9的比例稀釋。然后取0.2 mL懸浮液添加到2.0 mL模擬胃液中在37 ℃,250 r/min搖床培養(yǎng),分別在1,2,3 h用酶標(biāo)儀測(cè)定培養(yǎng)前后的OD600 nm值,計(jì)算菌株的存活率:
式中:ODth為菌株在人工模擬胃液1,2,3 h后的吸光度;ODoh為沒(méi)有放進(jìn)人工模擬胃液中的初始值。
1.4.4 菌株降解亞硝酸鹽能力的測(cè)定
乳酸菌株降解亞硝酸鹽的能力根據(jù)文獻(xiàn)[9]和文獻(xiàn)[10]進(jìn)行測(cè)定。
1.4.5 菌株的表面疏水性測(cè)定[11,12]
本試驗(yàn)采用微生物粘附碳烴化合物法,以二甲苯萃取菌體的能力作為評(píng)價(jià)乳酸菌的疏水能力。取8 mL將經(jīng)過(guò)28 h在最適溫度下活化后的乳酸菌液在9000 r/min、4 ℃條件下離心8 min,棄上清液留沉淀,將沉淀用pH為6.8的PBS緩沖液洗滌2次后,再次在相同條件下離心,重新懸浮收集菌體,用PBS緩沖液調(diào)整菌液的濃度,用酶標(biāo)儀測(cè)定OD600 nm的吸光值在0.6~0.8之間,取4 mL的菌液與800 μL的二甲苯混合,振蕩1 min,室溫靜置20 min后發(fā)生相分離,提取水相并測(cè)定OD600 nm處的吸光值,以計(jì)算菌株的疏水性:
式中:A0與At是加二甲苯前后在OD600 nm處的吸光度。
1.4.6 菌株的抑菌性測(cè)定[13,14]
選用牛津杯法對(duì)菌株的抑菌特性進(jìn)行測(cè)定,將篩出的乳酸菌和指示菌經(jīng)過(guò)2次活化后進(jìn)行平板計(jì)數(shù),調(diào)整菌液濃度為106CFU/mL。吸取指示菌(大腸桿菌、金黃色葡萄球菌)8 mL分別于800 mL的MRS培養(yǎng)基中混勻,將滅菌的牛津杯放置在無(wú)菌的平板上,使杯底緊貼于平皿底部,將混有指示菌的MRS培養(yǎng)基倒平板,等平板凝固后拔出牛津杯,在孔中加入100 μL的乳酸菌種子液,在最適溫度條件下培養(yǎng)24 h后,測(cè)定抑菌圈直徑大小。
1.4.7 16S rDNA測(cè)序
1.4.7.1 乳酸菌DNA的提取及PCR擴(kuò)增
乳酸菌基因組DNA提取按照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒(離心柱型)說(shuō)明書(shū)中的步驟進(jìn)行提取,可用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)提取DNA的質(zhì)量。提取的基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,上游引物27F(5'-AGAGTTTGATCMTGGTCAG-3'),下游引物(5'-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3')均為細(xì)菌16S rDNA的通用引物。PCR擴(kuò)增條件及反應(yīng)體系參考文獻(xiàn)[15]和文獻(xiàn)[16]。
1.4.7.2 擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序及系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)的建立[17]
擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%的瓊脂糖凝膠電泳后,將產(chǎn)物(長(zhǎng)度在1500 bp左右)送至公司進(jìn)行單向測(cè)序,測(cè)得的序列在NCBI的Blast程序上進(jìn)行同源性分析,從數(shù)據(jù)庫(kù)中獲得16S rDNA的序列同源性比對(duì),比對(duì)結(jié)果使用Mega 6.0建立系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
分離鑒定的8株乳酸菌于不同pH值環(huán)境下的生長(zhǎng)狀況見(jiàn)圖1,OD600 nm處的吸光度代表該菌株對(duì)酸堿的耐受程度。
圖1 菌株在不同pH下的生長(zhǎng)狀況Fig.1 Growth of strains at different pH values
由圖1可知8株乳酸菌在不同酸度下的生長(zhǎng)狀況,酸度過(guò)高或過(guò)低都不利于菌株的生長(zhǎng)。幾株乳酸菌的生長(zhǎng)趨勢(shì)較相似,pH在2~6.5之間,菌株的吸光度不斷增加,說(shuō)明乳酸菌在這個(gè)區(qū)間內(nèi)的菌落數(shù)隨酸度減小而不斷增加;pH在6.5~9.5之間時(shí),乳酸菌的菌落數(shù)隨著酸度的減小而受到了抑制。菌株D-12、S-4、B-9這3株菌在不同pH條件下的吸光度相對(duì)較低,各pH梯度之間降幅也較大,且在pH為2的高酸環(huán)境下,3株乳酸菌的吸光度都小于0.2,說(shuō)明菌株在高酸條件下的生長(zhǎng)受到了抑制;菌株D-14、D-2、S-7、B-6、S-3在各個(gè)pH環(huán)境下吸光度相對(duì)較高,即有較高的生長(zhǎng)活性,在pH為2的高酸環(huán)境下,這5株菌的吸光度均大于0.4;在pH為9.5的堿性環(huán)境下,這5株菌的吸光度均大于0.8,說(shuō)明菌株D-14、D-2、S-7、B-6、S-3相對(duì)于D-12、S-4、B-9的耐酸堿能力強(qiáng)。
將分離鑒定的8株乳酸菌分別接種到含有不同濃度膽鹽的MRS培養(yǎng)基中于37 ℃恒溫培養(yǎng)24 h,菌株的存活率表示各菌株在不同濃度膽鹽環(huán)境中的耐受性,見(jiàn)圖2。
圖2 菌株在不同濃度膽鹽中的生長(zhǎng)狀況 Fig.2 Growth of strains in different concentration of bile salts
由圖2可知,不同濃度的膽鹽對(duì)8株乳酸菌的存活率影響的差異較大,菌株隨著膽鹽濃度的增大受到的抑制隨之增加。當(dāng)培養(yǎng)基中膽鹽濃度為0.03%時(shí),各菌株的存活率均大于55%,其中菌株D-14、S-7、B-6的存活率更是達(dá)到了75%以上;當(dāng)培養(yǎng)基中膽鹽濃度為0.1%時(shí),各菌株存活率都明顯下降,菌株D-2、S-7、B-6、S-3的存活率均大于45%;當(dāng)培養(yǎng)基中膽鹽濃度為0.2%時(shí),只有菌株S-7、S-3的存活率大于25%,而菌株D-12、S-4、B-9的耐受性較差,存活率均低于25%;當(dāng)培養(yǎng)基中膽鹽濃度為0.3%與0.4%時(shí),8株菌的存活率迅速降低到5%以下,菌株S-4、B-9在這兩種環(huán)境下的存活率為0,菌株D-12在膽鹽濃度為0.3%的條件下具有一定存活率,但在膽鹽濃度為0.4%的條件下存活率下降到0,菌株D-14、S-3、S-7、B-6、D-2在這兩種環(huán)境下均有一定的存活率,但D-2在膽鹽濃度為0.4%時(shí)存活率幾乎接近0。所以,菌株D-14、S-3、S-7、B-6這4株菌對(duì)膽鹽的耐受性較強(qiáng)。
將經(jīng)過(guò)上述試驗(yàn)的菌株置于模擬的人體胃液中,分別在1,2,3 h后測(cè)定菌株的存活率,見(jiàn)圖3。
圖3 菌株在模擬人體胃液下的生長(zhǎng)狀況Fig.3 Growth of strains in simulated human gastric juice
由圖3可知,8株菌在胃液中的生長(zhǎng)狀況因菌株各自的特異性與在胃腸道中停留時(shí)間的差異而不同,菌株D-14、D-2在3個(gè)時(shí)間段的存活率都比較高,存活率均達(dá)到了60%以上;菌株S-7在模擬胃液中培養(yǎng)2 h,存活率也均在50%以上,3 h的存活率下降到了40%左右;1 h菌株B-6與S-3存活率在65%以上,高于D-12、S-4、B-9在模擬胃液中40%~55%的存活率,3 h后菌株的存活率均有所下降,菌株D-12、S-4、B-9的存活率均下降到25%以下。所以,菌株D-14、D-2、S-7若較長(zhǎng)時(shí)間處在模擬胃液環(huán)境下,相對(duì)于其他菌株對(duì)于人工胃液有較高的耐受性。
將經(jīng)上述試驗(yàn)得到的益生菌株D-14、D-2、S-7、B-6、S-3接種到含有150 μg/mL NaNO2的MRS培養(yǎng)液中,放置于37 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,分析5株菌對(duì)亞硝酸鹽的降解能力,見(jiàn)圖4。
圖4 菌株降解亞硝酸能力比較Fig.4 Comparison of nitrite degradation ability of strains
由圖4可知,5株菌降解亞硝酸鹽的能力存在顯著性差異(P<0.05)。菌株D-14對(duì)亞硝酸鹽的降解率是78%左右,顯著高于菌株S-7、B-6、S-3,菌株B-6與其他4株菌存在顯著性差異(P<0.05),對(duì)亞硝酸鹽的降解率為68%左右,顯著低于菌株D-14、D-2、S-7、S-3。菌株D-2與菌株S-3存在顯著性差異(P<0.05),亞硝酸鹽降解率分別為73%與65%左右,除了菌株B-6其他菌株對(duì)亞硝酸鹽的降解率均在75%以上。
將經(jīng)上述試驗(yàn)得到的益生菌株D-14、D-2、S-7、B-6、S-3經(jīng)一定處理后的菌液與二甲苯混合,二甲苯與菌體的結(jié)合力來(lái)作為乳酸菌的疏水能力的標(biāo)準(zhǔn),分析不同乳酸菌株之間表面疏水性差異,見(jiàn)圖5。
圖5 菌株表面疏水性比較Fig.5 Comparison of surface hydrophobicity of strains
由圖5可知,5株菌之間的表面疏水性存在顯著性差異(P<0.05)。菌株D-14與D-2表面疏水性較高,范圍在35%~40%之間,顯著高于菌株S-7、B-6與S-3。菌株B-6與S-3表面疏水性較低,菌株S-7表面疏水性為27%左右,顯著高于菌株B-6、S-3的表面疏水性。
將菌株D-14、D-2、S-7、S-3接種到含病原菌的MRS培養(yǎng)基中,分析這4株菌的抑菌效果,見(jiàn)表1。
表1 菌株抑菌效果比較Table 1 Comparison of antibacterial effect of strains
由表1可知,各菌株對(duì)兩種病原菌的抑制作用存在顯著性差異(P<0.05)。S-3對(duì)大腸桿菌有抑制作用,對(duì)金黃色葡萄球菌無(wú)抑制作用,是4株菌中抑制作用最小的;菌株D-14在含有大腸桿菌與金黃色葡萄球菌的培養(yǎng)基上均有較大的抑菌圈,菌株D-14的抑菌性在這4株菌中最好;菌株D-2與S-7對(duì)大腸桿菌的抑制作用不存在顯著性差異(P>0.05),對(duì)金黃色葡萄球菌的抑制作用菌株D-2顯著高于菌株S-7。
分別提取D-14、D-2、S-7、S-3的基因組DNA后,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,見(jiàn)圖6。擴(kuò)增得到4株待測(cè)菌株的條帶清晰明亮,無(wú)明顯拖尾現(xiàn)象,4株菌的條帶大小均在1.5 kb附近,與理論值相符。
將4株乳酸菌的DNA擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序,測(cè)序結(jié)果登錄NCBI通過(guò)Blast對(duì)比分析,發(fā)現(xiàn)D-14與干酪乳桿菌(Lactobacilluscasei)的同源性達(dá)99%,D-2與格氏乳球菌(Lactococcusgarvieae)的同源性達(dá)100%,S-7與瑞士乳桿菌(Lactobacillushelveticus)的同源性達(dá)100%,S-3與乳酸明串球菌(Leuconostoclactis)的同源性在98%以上。
圖6 16S rDNA擴(kuò)增結(jié)果Fig.6 Amplification result of 16S rDNA
圖7 基于4株菌16S rDNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)Fig.7 Phylogenetic trees based on 16S rDNA sequences of four strains of bacteria
乳酸菌是一類(lèi)在自然界分布很廣泛的細(xì)菌,有著較為豐富的生物多樣性,它們不僅在理論上具有重要的學(xué)術(shù)價(jià)值,也是各領(lǐng)域研究(如:基因工程、遺傳、分子生物等)的優(yōu)良菌種[18,19]。本研究對(duì)從新疆伊犁地區(qū)采集的哈薩克族傳統(tǒng)奶酪中篩選出的8株乳酸菌進(jìn)行了體外耐酸、耐膽鹽、模擬人體胃液、降解亞硝酸鹽、疏水性及抑菌試驗(yàn)。結(jié)果表明,菌株D-14、D-2、S-7、B-6、S-3耐酸堿能力較好;菌株D-14、S-7、B-6、S-3對(duì)膽鹽的耐受性較好,當(dāng)膽鹽的濃度為0.3%與0.4%時(shí),這4株菌在這兩種環(huán)境下均有一定的存活率,菌株D-2在膽鹽濃度為0.4%時(shí)的存活率幾乎接近于0;菌株D-14、D-2在3個(gè)時(shí)間段的存活率都比較高,存活率均達(dá)到了70%以上;菌株S-7在模擬胃液中培養(yǎng)1 h與2 h后,存活率也均在70%以上,3 h后的存活率下降到了50%左右;菌株D-14降解亞硝酸鹽的能力及疏水性最好,菌株D-14、D-2、S-7及S-3具有抑菌性。最終得到具有潛在益生性的菌株D-14、D-2、S-7及S-3,再對(duì)這4株益生乳酸菌進(jìn)行16S rDNA測(cè)序,結(jié)果表明D-14為干酪乳桿菌,D-2為格氏乳球菌,S-7為瑞士乳桿菌,S-3為乳酸明串球菌。后期將對(duì)這4株潛在益生乳酸菌的產(chǎn)酶特性進(jìn)行研究,將其作為益生功能性乳制品研發(fā)的潛在益生菌資源。