華姝雯,王 磊,饒桂維*
(1.浙江樹人大學(xué) 生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江 杭州 310015;2.杭州師范大學(xué) 錢江學(xué)院理工分院,浙江 杭州 310018)
油菜花(Brassica campestris)是十字花科薹屬植物,主要集中在長江流域,其籽粒是浸制油脂原料主要品種之一[1]。近年來我國的種植面積已超過900萬hm2,產(chǎn)量占全國油料總產(chǎn)量的30%以上,居世界首位[2]。菜籽油是世界第二大油料作物,同時也是重要的生物柴油來源之一[3-4]。
菜籽多酚是油菜籽獨(dú)有的具有氧化活性的,有抗腫瘤、降血糖、抑菌、清除自由基作用的一類重要次級代謝產(chǎn)物[5]。我國主要將其加工為菜籽油,因此菜籽油富含菜籽多酚等多種功能活性成分[6],被評為“最健康的食用植物油之一”[7]。但隨著工業(yè)化的發(fā)展,土壤中的重金屬含量日益增加,由于各地區(qū)的工業(yè)化程度不同,其土質(zhì)不同,因此如何有效的鑒定菜籽油的食品安全具有重大意義。不同區(qū)域的油菜品種,油菜籽的干燥方法和其榨油機(jī)械、加工過程和油脂精煉存在較大差異,因此菜籽油中菜籽多酚含量、磷脂含量以及產(chǎn)品品質(zhì)有很大的不同[8-12]。且不同產(chǎn)地的油菜籽氨基酸組成和總酚含量也不同[5,13]。
由于HPLC具有分離效能高、選擇性好、靈敏度高、分析速度快、應(yīng)用范圍廣等特點(diǎn),HPLC指紋圖譜法已成為中藥指紋圖譜技術(shù)的首選方法[14-15]。本實(shí)驗(yàn)采用高效液相色譜法對18種不同產(chǎn)地的菜籽油進(jìn)行指紋圖譜研究,為不同地區(qū)菜籽油的初步鑒別和質(zhì)量評價(jià)提供參考。
材料:選取浙江、上海、蘇州、安徽等地區(qū)出產(chǎn)的菜籽油,其樣品編號和來源地見表1。
表1 供試菜籽油的產(chǎn)地及編號Tab.e 1 habitats and number of experimental rapeseed oil
試劑:乙腈(色譜純):TEDIA,美國、甲醇(分析純):永華化學(xué)科技、磷酸(分析純):永華化學(xué)科技,使用水為超純水。所用溶液使用前均用0.22 μm濾膜過濾。
液相色譜儀(配有DAD檢測器)Agilent 110系列:Agilent公司,美國;超低有機(jī)物型純水系統(tǒng)Milli-Q:Millipore公司,美國;高速離心機(jī)LG10-2.4A:北京時代北利離心機(jī)有限公司;紫外分光光度計(jì)L6S:上海精科;電子天平PL402-L:梅特勒-托利多儀器有限公司;超聲波清洗器JK-100:合肥金尼機(jī)械制造有限公司;玻璃儀器快速烘干器C型30:長城科工貿(mào)有限公司;漩渦混合器XW-80A:寧波新芝生物科技股份有限公司。
準(zhǔn)確稱取油樣品5 g(精確至0.0001),置于50 mL離心管中,加入8 mL甲醇(提取溶劑)。旋渦混合3 min,放置2 min,以3000r/min離心5 min,取出上清液于25 mL容量瓶中,殘余物每次用8 mL甲醇提取兩次。三次的清液均合并于25 mL容量瓶中,并用甲醇定容,搖勻,得到樣品溶液,再將溶液用0.22 μm有機(jī)濾膜過濾,得到樣品供試液。
1.4.1 提取溶劑
按1.3節(jié)方法將其中的提取溶劑改為:甲醇、乙醇、乙腈。不同的溶劑提取各平行三次,通過色譜分析,將數(shù)據(jù)取平均值,以確定最佳提取溶劑。
1.4.2 色譜分析的波長
將18個樣品按1.3節(jié)制備得到樣品供試溶液,分別用移液槍移取500μL該溶液于10 ml容量瓶中,并用甲醇定容至刻度。將樣品溶液分別置于比色皿中,利用紫外可見分光光度計(jì)掃描樣品供試溶液,掃描波長范圍為200 nm-300 nm,每個樣品各掃描1次。
1.4.3 色譜流動相
為了確定好的分離條件,選擇甲醇-水、乙腈-水、乙腈-0.1%磷酸、甲醇-0.1%磷酸溶液為流動相,分別對樣品供試液進(jìn)行色譜分析,選擇分離效果最好的為實(shí)驗(yàn)的流動相。
1.4.4 色譜條件
色譜柱:Hypersil ODS C18(4.6 ×250 mm,5μm),流速:1 mL/min;柱溫:35 ℃;進(jìn)樣量:10 μL。流動相:A相和B有機(jī)相;洗脫程序:0~10 min,10%~30%B;10~20 min, 30%~60%B;20~30 min,60%~90%B;30~40 min,90%B。 通過波長和流動相的確定,根據(jù)出峰情況需調(diào)整洗脫程序時間和流動相比例。
1.5.1 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
取S18樣品供試液,按1.4.4所提出的色譜條件,分別選擇在0、3、6、9、12、15h進(jìn)樣,將峰值最突出的三個色譜峰為參照峰,計(jì)算各自的保留時間和峰面積的RSD值[16]。
1.5.2 精密度實(shí)驗(yàn)
取S18樣品供試液,按1.4.4所提出的色譜條件,連續(xù)6次進(jìn)樣,將峰值最突出的三個色譜峰為參照峰,記錄他們的保留時間和峰面積,計(jì)算各自的RSD值[16]。
1.5.3 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)
按1.3節(jié)平行制備6份S18供試樣品溶液,按1.4.4所提出的色譜條件,連續(xù)6次進(jìn)樣,將峰值最突出的三個色譜峰為參照峰,記錄并計(jì)算各自的相對保留時間和相對峰面積的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差[16]。
取18個樣品,按1.3節(jié)的方法制備得到供試樣品溶液,在1.4.4節(jié)的色譜條件下進(jìn)行檢測,采集18個油樣品在45 min內(nèi)的色譜圖。
1.7.1 相似度分析
分別將18個供試樣品的色譜圖導(dǎo)入《中藥色譜指紋圖譜相似度評價(jià)系統(tǒng)(2004年A版)》,采用多點(diǎn)校正后匹配,建立18個不同產(chǎn)地菜籽油的指紋圖譜,以生成的特征指紋圖譜共有模式為對照,計(jì)算得出各地區(qū)油樣品的相似度。
2.1.1 提取溶劑
用乙醇、甲醇、乙腈3個有機(jī)溶劑提取菜籽油樣品,分別得到3個色譜圖,根據(jù)譜圖結(jié)果發(fā)現(xiàn),以采用甲醇提取的色譜峰數(shù)目最多,分離效果較好,所以實(shí)驗(yàn)采用甲醇作為提取溶劑提取菜籽油樣品。
2.1.2 色譜分析的波長
由圖1可知,樣品溶液在紫外波長為210 nm、270 nm和280 nm處吸收峰較高。由于210 nm處波長較短,溶劑效應(yīng)較強(qiáng),故排除210 nm為最佳吸收波長。通過預(yù)實(shí)驗(yàn)測得270 nm和280 nm波長下的圖譜發(fā)現(xiàn),波長為280 nm時的色譜峰數(shù)目比270 nm多,所以實(shí)驗(yàn)選擇280 nm為色譜分析波長。
圖1 樣品紫外光譜掃描圖Fig.1 UV spectrogram of sample
2.1.3 流動相的確定
分別用甲醇-水、乙腈-水、乙腈-0.1%磷酸、甲醇-0.1%磷酸溶液作為流動相對S18樣品供試液進(jìn)行色譜分析實(shí)驗(yàn),通過對這四個譜圖比較發(fā)現(xiàn)乙腈-0.1%磷酸溶液作為流動相的各峰分離效果較好,色譜峰形較好,故選擇乙腈-0.1%磷酸溶液作為實(shí)驗(yàn)的流動相。
2.1.4 洗脫程序的優(yōu)化和色譜條件的確定
色譜柱:Hypersil ODS C18(4.6 ×250 mm,5μm),流動相:0.1%磷酸溶液(A)和乙腈(B);經(jīng)多次實(shí)驗(yàn)得出較為理想的梯度洗脫條件:0~15 min,10%~18%B;15~16 min,18%~30%B;16~26 min,30%B;26~31 min,30%~60%B;31~36 min,60%~90%B;36~40 min,90%B;40~45 min,90%~10%B,流速:1 mL/min;柱溫:35 ℃;進(jìn)樣量:10 μL。
2.2.1 指紋圖譜的建立及相似度評價(jià)
將18個油樣品色譜圖導(dǎo)入《中藥色譜指紋圖譜相似度評價(jià)系統(tǒng)(2004年A版)》軟件里,對樣品圖譜進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,設(shè)置S18為參照指紋圖譜,時間窗寬度設(shè)為0.3 min,采用多點(diǎn)校正后進(jìn)行匹配,建立18種菜籽油的HPLC指紋圖譜共有模式(平均值法),根據(jù)匹配結(jié)果確定23個共有峰(圖2), 并生成對照指紋圖譜(圖3)。
計(jì)算出各批次樣品的指紋圖譜相似度。根據(jù)相似度分析結(jié)果(表2),S1、S2、S3、S4、S5、S6、S7、S8、S10、S11、S12、S14、S16、S17樣品相似度大于0.8;而S9、S13、S15、S18樣品相似度較低,與其他樣品相差較大。
圖2 18個樣品的HPLC指紋圖譜Fig.2 HPLC fingerprints of 18 samples
圖3 菜籽油的對照指紋圖譜Fig.3 rapeseed oil contrast fingerprints
表2 18種菜籽油相似度評價(jià)結(jié)果Tab.e 2 Similarity evaluation results of 18 kinds of rapeseed oil
2.2.2 指紋圖譜中共有峰指認(rèn)
對標(biāo)準(zhǔn)維生素E樣品進(jìn)行高效液相測定(圖4),根據(jù)出峰時間順序,確認(rèn)1 2 3號峰分別為α-生育酚、β-生育酚、γ-生育酚。根據(jù)相對保留時間,并對照共有峰的保留時間,指認(rèn)了指紋圖譜23個共有峰中的α-生育酚(13號峰)、β-生育酚(19號峰)、γ-生育酚(22號峰)。19號峰β-生育酚峰形好,峰面積圖譜中所占比例較大且穩(wěn)定,并為18個樣品所共有,相較于13號峰,19號峰與相鄰色譜峰的分離度良好,易于識別,故選其為特征圖譜的參照峰。以β-生育酚峰為參照峰,計(jì)算23個共有峰相對峰面積,結(jié)果見表3。由表中結(jié)果可看出統(tǒng)一保留時間共有峰相對峰面積的RSD值相差很大,說明不同地區(qū)因地理環(huán)境,種質(zhì)資源等外界因素對菜籽油化學(xué)成分含量有一定差異,導(dǎo)致其質(zhì)量存在差異。
1.α-生育酚;2.β-生育酚;3.γ-生育酚;1.α- Tocopherol 2.β- Tocopherol;3.γ- Tocopherol
圖4 維生素E的對照圖譜
Fig.4 Vitamin E contrast fingerprints
表3 共有峰的相對峰面積Tab.e 3 relative peak area of the common peak
表3(續(xù))
2.4.1 穩(wěn)定性
取S18樣品供試液,在2.1.4色譜條件下分別在0、3、6、9、12、15h下進(jìn)樣,以13(α-生育酚峰)、19(β-生育酚峰)、22(γ-生育酚峰)為參照峰,記錄各相對峰面積和相對保留時間,結(jié)果見表4。計(jì)算得出峰面積的平均RSD為2.18,保留時間的平均標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.53,無論是個體或平均RSD均小于3,結(jié)果表明該方法具有良好的穩(wěn)定性。
表4 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Tab.e 4 stability test results
2.4.2 精密度
取S18樣品供試液,按2.1.4節(jié)的色譜條件,連續(xù)6次進(jìn)樣,以13(α-生育酚峰)、19(β-生育酚峰)、22(γ-生育酚峰)為參照峰,記錄各峰的相對保留時間、相對峰面積,結(jié)果見表5。計(jì)算得出峰面積的平均RSD為0.91,保留時間的平均RSD為0.31,無論是個體或平均RSD均小于3,結(jié)果表明該方法具有良好的精密度與準(zhǔn)確度。
表5 精密度實(shí)驗(yàn)結(jié)果Tab.e 5 precision test results
2.4.3 重復(fù)性
將樣品S18按1.3節(jié)平行制備供試樣品溶液6份,按2.1.4節(jié)的色譜條件,連續(xù)進(jìn)樣6次,以13(α-生育酚峰)、19(β-生育酚峰)、22(γ-生育酚峰)為參照峰,記錄各峰的相對保留時間、相對峰面積,結(jié)果見表6。計(jì)算得出峰面積的平均RSD為1.12,保留時間的平均RSD為0.52,無論是個體或平均RSD均小于3,結(jié)果表明該方法具有良好的重復(fù)性。
表6 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Tab.e 6 repeatability test results
本實(shí)驗(yàn)通過HPLC-DAD法測得18個不同產(chǎn)地菜籽油的色譜圖,并摸索出最適合菜籽油指紋圖譜建立的色譜條件:以乙腈和0.1%磷酸為流動相,洗脫梯度為0~15 min,10%~18%B;15~16 min,18%~30%B;16~26 min,30%B;26~31 min,30%~60%B;31~36 min,60%~90%B;36~40 min,90%B;40~45 min,90%~10%B,色譜分析波長為280 nm,流速1 mL/min,進(jìn)樣量為10μL。在《中藥色譜指紋圖譜相似度評價(jià)系統(tǒng)(2004年A版)》建立18個不同產(chǎn)地菜籽油HPLC-DAD指紋圖譜,以S18為對照指紋圖譜計(jì)算出18個油樣品的相似度,結(jié)果得出除S9、S13、S15、S18(鹽城大豐、上海靜安、溫州樂清、寧波慈溪)外,其他油樣品的相似度均大于0.8;并標(biāo)示出23個共有峰,三個已確認(rèn)成分,分別為α-生育酚(13號峰)、β-生育酚(19號峰)、γ-生育酚(22號峰)。本實(shí)驗(yàn)方法重現(xiàn)性好,具有一定的專屬性,為不同地區(qū)菜籽油的初步鑒別質(zhì)量評價(jià)提供了參考。