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    抑制人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖乳酸菌有效成分的篩選

    2019-10-08 05:44:04王淑梅張?zhí)m威張莉麗易華西
    中國釀造 2019年9期
    關(guān)鍵詞:細胞質(zhì)細胞壁細胞周期

    王淑梅,張?zhí)m威*,張莉麗,張 爽,易華西

    (1.哈爾濱學(xué)院 食品工程學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150086;2.中國海洋大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島 266100;3.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150030)

    益生菌是生活在機體內(nèi)并且有益于宿主健康的一類活的微生物,通常指具有高選擇性的乳酸菌,其通過菌體細胞各組分發(fā)揮功能作用,如細胞壁、細胞質(zhì)、菌體肽聚糖和菌體脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)等[1-2],其中最常見的是乳酸桿菌(Lactobacillus)和雙歧桿菌(Bifidobacterium)。目前,關(guān)于乳酸菌提高人體免疫功能[3]、抗腫瘤及抑菌作用[4-5]的研究已有相關(guān)報道。隨著對乳酸菌研究的不斷深入,各種功能性乳酸菌新品種相繼涌現(xiàn)。

    目前,功能性乳酸菌的篩選方法主要有3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide,MTT)。如采用MTT試驗篩選具有抑制癌細胞增殖作用的菌株KFRI342細胞質(zhì)[6];具有抑制人結(jié)腸癌細胞系HT-29細胞、Caco-2細胞和SW480細胞增殖作用的青春雙歧桿菌(Bifidobacterium adolescentis)SPM0212丁醇提取物[7];具有抑制人早幼粒急性白血病細胞HL-60生長與增殖作用的植物乳桿菌(Lactococcus plantarum)培養(yǎng)上清液[8];具有抑制胃癌細胞和結(jié)腸癌細胞增殖作用的熱致死菌體細胞、細胞質(zhì)和菌體肽聚糖[9]。同樣,也有研究者采用MTT試驗篩選出具有抑制結(jié)腸癌細胞系SNUC2A和胃癌細胞SNU-1增殖作用的乳酸乳球菌(Lactococcus lactisssp.lactis)細胞質(zhì)[10-11],并通過形態(tài)學(xué)4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染色和DNA損傷試驗證實其可誘導(dǎo)胃癌細胞SNU-1的凋亡[12]。

    課題組前期從中國西部傳統(tǒng)發(fā)酵食品中分離并篩選出4株具有潛在抗結(jié)腸癌功效的乳酸菌X11、X12、M5和K14[13]。本研究以這4株菌為研究對象,分離其細胞壁和細胞質(zhì)。首先通過MTT法初步篩選具有抑制HT-29細胞增殖能力的成分,再通過研究分離成分對人結(jié)腸癌細胞系HT-29細胞的DNA損傷、細胞凋亡及周期的影響,最終獲得具有抗結(jié)腸癌作用乳酸菌成分,為進一步明確乳酸菌在抑制結(jié)腸癌過程中發(fā)揮的作用提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 菌株及細胞

    人結(jié)腸癌細胞系HT-29:中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院腫瘤研究所;干酪乳桿菌(Lactobacillus casei)X11、副干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei susbp.paracasei)X12:來源于新疆乳酪;L.caseiK14:來源于西藏酸乳酒;L.paracaseisubsp.paracasei M5:來源于新疆馬奶酒。以上乳酸菌保存于哈爾濱工業(yè)大學(xué)化學(xué)工程與技術(shù)學(xué)院微生物學(xué)實驗室。鼠李糖乳桿菌(Lactobacillus rhamnosus)GG ATCC 43121(LGG):美國模式菌種收集中心(American type culture collection,ATCC)。

    1.1.2 試劑

    RPMI 1640培養(yǎng)基、胰酶消化液、二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO):美國Corning公司;噻唑藍(MTT):美國Sigma-Aldrich公司;Annexin V-FITC試劑盒、細胞DNA提取試劑盒:美國BD公司;胎牛血清:杭州四季青有限公司;PI染色液:北京Solarbio公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    Universal Hood II凝膠成像系統(tǒng)、Bio-Rad-500酶標儀:美國Bio-Rad公司;FACS Calibur流式細胞儀:美國R&D System公司;HEPA1100二氧化碳培養(yǎng)箱、ULT-1386-3-V超低溫冰箱:美國Thermo Electron公司;CX31電子顯微鏡:日本Olympus公司。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)蛋白質(zhì)含量的檢測

    以菌株LGG為陽性對照,參照AMROUCHE T等[3-4]的方法分離4株乳酸菌的細胞壁和細胞質(zhì),并采用考馬斯亮藍法測定細胞壁及細胞質(zhì)中的蛋白質(zhì)含量[14]。

    1.3.2 細胞毒性的檢測

    首先采用MTT實驗測定乳酸菌的細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的抑制效果,具體方法如下:調(diào)整HT-29細胞濃度為1×105個/mL,取100 μL接種于96孔培養(yǎng)板中,待細胞完全貼壁,加入乳酸菌X11、X12、M5和K14細胞壁和細胞質(zhì),使各實驗組細胞壁和細胞質(zhì)蛋白質(zhì)終質(zhì)量濃度為10 μg/mL、20 μg/mL、40 μg/mL、80 μg/mL、160 μg/mL[15]。將96孔培養(yǎng)板置于CO2培養(yǎng)箱(37℃,5%CO2,95%空氣,100%濕度)中培養(yǎng)48h。當培養(yǎng)44h時,加入10μLMTT,再繼續(xù)培養(yǎng)4h[16],吸出液體,加入150 μL DMSO[17]。以只加RPMI 1640培養(yǎng)液的細胞為陰性對照,采用酶標儀測定細胞在波長490 nm處的吸光度值(OD490nm值)。計算乳酸菌細胞壁和細胞質(zhì)對HT-29細胞抑制率,其計算公式如下:

    然后采用改良寇式法[9]計算細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的半抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50),利用IC50值分析乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的作用大小[18]。

    1.3.3 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞DNA損傷的檢測

    調(diào)整HT-29細胞濃度為5×105個/mL,加入6孔組織培養(yǎng)板中,每孔2 mL。待細胞完全貼壁后加入乳酸菌細胞壁和細胞質(zhì),使其蛋白質(zhì)終含量為80 μg/mL,將6孔組織培養(yǎng)板置于CO2培養(yǎng)箱(37℃,5%CO2,95%空氣,100%濕度)中培養(yǎng)48 h。培養(yǎng)結(jié)束后,用預(yù)冷的磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)沖洗細胞,加入0.25%的胰酶和乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)混合液2mL,置于CO2培養(yǎng)箱(37℃,5%CO2,95%空氣,100%濕度)中消化1~2 min。1 000×g離心5 min,收集細胞,再用預(yù)冷PBS溶液清洗細胞2次。采用細胞DNA提取試劑盒提取細胞DNA,采用1.8%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測[19]。

    1.3.4 HT-29細胞凋亡及壞死檢測

    采用Annexin V-FITC/PI細胞凋亡檢測試劑盒檢測HT-29細胞的凋亡及壞死情況[20-21]。

    1.3.5 HT-29細胞周期的測定

    采用流式細胞儀進行細胞周期分析[22]。

    1.3.6 數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計分析

    實驗重復(fù)3次,通過SAS 9.1軟件進行方差分析,實驗結(jié)果采用平均值±標準偏差(X±SD)的方式表示,顯著性水平設(shè)定為P<0.05。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 乳酸菌細胞壁和細胞質(zhì)蛋白質(zhì)含量的測定

    以牛血清蛋白質(zhì)量濃度(X)為橫坐標,OD595nm值(Y)為縱坐標繪制牛血清蛋白標準曲線,通過線性擬合得到標準曲線回歸方程為:Y=0.006 3X,相關(guān)系數(shù)R2=0.996,說明OD595nm值與牛血清蛋白質(zhì)量濃度線性關(guān)系良好。乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)蛋白含量的測定結(jié)果見表1。

    由表1可知,乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)中的蛋白質(zhì)含量為244.31~1 557.14 μg/mL,4株乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)中的蛋白質(zhì)含量與陽性對照LGG差異顯著(P<0.05)。其中,副干酪乳桿菌M5細胞質(zhì)及細胞壁中的蛋白質(zhì)含量較高,分別為976.19 μg/mL,907.62 μg/mL;乳酸菌K14細胞壁中的蛋白質(zhì)含量(1 144.44 μg/mL)僅低于陽性對照組LGG細胞質(zhì);而乳酸菌K14、X12、X11細胞質(zhì)中的蛋白含量均處于較低水平,分別為246.88 μg/mL、247.33 μg/mL、244.3 μg/mL。結(jié)果表明,同種菌屬不同菌株之間細胞成分中的蛋白質(zhì)含量不同。在此基礎(chǔ)上進行后續(xù)抑癌研究。

    表1 乳酸菌細胞壁和細胞質(zhì)蛋白質(zhì)含量Table 1 Protein content in the cell wall and cytoplasm of lactic acid bacteria

    2.2 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的毒性作用

    表2 乳酸菌細胞壁和細胞質(zhì)對HT-29細胞的半抑制濃度值Table 2 Half maximal inhibitory concentration value of lactic acid bacteria cell wall and cytoplasm on HT-29 cells

    由表2可知,乳酸菌M5和K14的細胞壁及細胞質(zhì)、乳酸菌X12和X11的細胞壁對HT-29細胞的IC50值均顯著低于陽性對照組LGG細胞壁(109.74 μg/mL)及細胞質(zhì)(102.32 μg/mL)(P<0.05),其中,乳酸菌X11細胞壁對HT-29細胞的IC50值(55.31 μg/mL)最低,抑制效果最好。而乳酸菌X12和X11細胞質(zhì)對HT-29細胞的IC50值顯著高于陽性對照組LGG細胞質(zhì),分別為135.25 μg/mL、124.80 μg/mL(P<0.05),抑制效果最差。

    2.3 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞DNA的作用

    由于含80 μg/mL蛋白質(zhì)的乳酸菌細胞壁或細胞質(zhì)持續(xù)作用于HT-29細胞48 h后,便可達到抑制HT-29細胞的作用,因此,本實驗選用含80 μg/mL蛋白質(zhì)的細胞壁和細胞質(zhì)對HT-29細胞進行處理。細胞DNA降解是細胞凋亡的晚期階段主要特征之一,在細胞凋亡后期,細胞DNA降解成小分子片段[23-24],采用瓊脂糖凝膠電泳檢測乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞DNA的作用,結(jié)果見圖1。

    由圖1可知,乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)持續(xù)作用于HT-29細胞48h后,細胞DNA出現(xiàn)彌散拖尾形態(tài),但沒有產(chǎn)生明顯的DNA小分子片段。DNA損傷是細胞發(fā)生凋亡的一項重要標志[21],有研究顯示[22],乳酸菌可通過誘導(dǎo)結(jié)腸癌細胞DNA損傷而實現(xiàn)其抗結(jié)腸癌功能,如嗜酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus)606可溶性胞外多糖通過誘導(dǎo)HT-29細胞DNA損傷而誘導(dǎo)細胞凋亡[23]。

    圖1 乳酸菌細胞壁(a)及細胞質(zhì)(b)處理HT-29細胞后的DNA瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果Fig.1 Agarose gel electrophoresis results of DNA of HT-29 cells after treated with lactic acid bacteria cell wall(a)and cytoplasm(b)

    2.4 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的影響

    表3 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞的影響Table 3 Effect of lactic acid bacteria cell wall and cytoplasm on HT-29 cells

    由表3可知,與陽性對照組LGG細胞壁相比,乳酸菌X12、K14細胞壁顯著促進HT-29細胞的死亡(P<0.05),使HT-29細胞早期凋亡細胞數(shù)分別提高72.38%、65.03%,壞死細胞數(shù)分別提高63.13%、1.69%,晚期凋亡細胞數(shù)分別提高127.18%、92.22%;乳酸菌M5細胞壁顯著促進HT-29細胞的壞死及晚期凋亡(P<0.05),使壞死細胞數(shù)提高65.59%,晚期凋亡細胞數(shù)提高137.14%。與陽性對照LGG細胞質(zhì)相比,乳酸菌M5細胞質(zhì)使HT-29細胞的早期凋亡細胞數(shù)提高96.16%,壞死細胞數(shù)提高7.31%,晚期凋亡細胞數(shù)提高20.08%。而乳酸菌X11細胞壁和K14細胞質(zhì)作用HT-29細胞48 h,早期凋亡、晚期凋亡和壞死細胞數(shù)均低于陽性對照組LGG。結(jié)果表明,乳酸菌X12、M5和K14細胞壁對HT-29細胞死亡具有顯著的誘導(dǎo)作用。為確認乳酸菌X12、M5和K14細胞壁對HT-29細胞凋亡的誘導(dǎo),進一步研究乳酸菌X12、M5和K14細胞壁對HT-29細胞周期的影響。

    2.5 乳酸菌細胞壁及細胞質(zhì)對HT-29細胞周期的影響

    細胞周期分為DNA合成前期(G1期)、DNA合成期(S期)、DNA合成后期(G2期)和細胞分裂期(M期)4個周期。乳桿菌X12、M5和K14細胞壁作用HT-29細胞后,其細胞周期變化情況見表4。

    表4 乳酸菌細胞壁對HT-29細胞周期的影響Table 4 Effect of lactic acid bacteria cell wall on HT-29 cells cycle

    本研究中細胞周期阻滯實驗均與對照組Control進行比較。相對于Control(G1期為70.11%),M5和X12細胞壁處理HT-29細胞后G1期顯著提高了(分別為76.06%和83.52%),同時M5的S期也顯著增高了(為22.92%),因此初步認為M5和X12細胞壁將HT-29細胞周期阻滯在了G1期。相對于Control(S期為10.84%),K14細胞壁處理HT-29細胞S期顯著提高了(26.25%)。因此初步認為菌株K14細胞壁將HT-29細胞阻滯在了S期。通過本研究發(fā)現(xiàn),乳酸菌X12、M5和K14細胞壁抑制HT-29細胞的增殖,并誘發(fā)癌細胞的凋亡,這一過程是通過調(diào)控癌細胞周期而實現(xiàn)。

    3 結(jié)論

    本研究以鼠李糖乳桿菌LGG為陽性對照,研究4株乳酸菌X11、X12、M5和K14細胞壁、細胞質(zhì)對人結(jié)腸癌細胞系HT-29細胞毒性、DNA損傷、細胞死亡及細胞周期的影響,篩選具有抗結(jié)腸癌作用的有效成分。結(jié)果表明,與陽性對照LGG相比,乳酸菌X11、X12、M5、K14細胞壁和乳酸菌M5、K14細胞質(zhì)對HT-29細胞增殖能力有顯著的抑制作用(P<0.05);HT-29細胞經(jīng)乳酸菌細胞壁或細胞質(zhì)(蛋白質(zhì)含量為80 μg/mL)處理48 h后,細胞DNA出現(xiàn)了明顯的彌散拖尾形態(tài);乳酸菌X12、M5和K14細胞壁對HT-29細胞死亡具有顯著的誘導(dǎo)作用,并調(diào)控癌細胞的周期分布。通過以上篩選模式最終獲得乳酸菌X12、M5和K14的細胞壁成分具有抗結(jié)腸癌效果,為后續(xù)其對結(jié)腸癌HT-29細胞周期調(diào)控機制的研究奠定了基礎(chǔ)。

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