高力揚,張 凱,王巧輝,裴佳瑞,馬澤華,李 敏*
1寧夏大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 寧夏大學(xué)西部特色生物資源保護與利用教育部重點實驗室;2寧夏大學(xué)新華學(xué)院,銀川750021
綿羊肺炎支原體(Mycoplasmaovipneumoniae,MO)是引起綿羊、山羊傳染性胸膜肺炎及增生性間質(zhì)性肺炎的病原體,對寧夏灘羊養(yǎng)殖業(yè)危害較大。大環(huán)內(nèi)酯類抗生素、泰樂菌素、紅霉素及阿奇霉素等對綿羊支原體肺炎具有減緩病情的作用,但無法根治該病,而且易產(chǎn)生耐藥性。以往研究發(fā)現(xiàn)支原體對機體有免疫抑制作用,主要體現(xiàn)在:促進巨噬細胞凋亡[1,2],影響炎癥因子表達[3,4],抑制巨噬細胞自噬[5]。甘草酸提取于甘草根部,是甘草中最主要的活性成分,可溶于水,分子式為C42H62O16,可以水解為2分子葡萄糖醛酸和1分子甘草次酸。目前研究顯示甘草提取物有抑菌能力[6,7],增強雞巨噬細胞吞噬和清除胞內(nèi)沙門氏菌的能力[8],對治療病毒性肝炎[9]、抑制銅綠假單胞菌[10]、雞混合艾美耳球蟲感染的免疫調(diào)節(jié)有一定作用[11],而且可以抑制豬嗜血支原體對紅細胞的黏附[12]。然而甘草酸對天然免疫細胞的影響尚不明確,因此本研究聚焦甘草酸在巨噬細胞抗MO感染中發(fā)揮的作用,為利用增強天然免疫的方式來預(yù)防綿羊支原體肺炎提供研究基礎(chǔ)。
胎牛血清購自全式金公司,高糖DMEM、胰酶、PBS購自Hyclone公司;青霉素-鏈霉素雙抗、馬血清購自Solarbio公司;CCK-8細胞活性檢測試劑盒、細胞周期與細胞凋亡檢測試劑盒購自碧云天公司;mRNA提取試劑盒購自O(shè)MEGA公司;凋亡及自噬相關(guān)基因引物由Sangon Biotech公司合成;Real-time PCR相關(guān)試劑盒購自TaKaRa公司;Bad抗體、Bax抗體、腫瘤壞死因子(TNF-α)ELISA檢測試劑盒、Western Blot顯色劑、DMSO、NanoDrop 8000設(shè)備、QuantStudio 5設(shè)備購自Thermo Fisher公司;GAPDH購自北京義翹神州科技有限公司;支原體培養(yǎng)基基礎(chǔ)、支原體肉湯培養(yǎng)基購自青島海博生物技術(shù)有限公司;甘草酸使用PBS配制為12、1.2、120、12 μM濃度。全波段酶標儀購自美國BIO-RAD公司;CO2細胞培養(yǎng)箱購自日本SANYO公司;多模式微孔板檢測儀購自PerkinElmer公司;流式細胞儀購自德國Sysmex公司。
稱取甘草酸粉末溶于溫PBS中,渦旋震蕩溶解后用0.22 μm的過濾器過濾,配制成終濃度為120 mM的甘草酸儲存液,4 ℃保存。
本實驗一共分為對照組、甘草酸處理組、MO感染組、甘草酸/MO感染組。其中對照組及MO感染組分別加入與甘草酸處理組、甘草酸/MO感染組稀釋前甘草酸儲存液相同體積的PBS緩沖液作為參照。
小鼠腹腔巨噬細胞RAW264.7采用含10%胎牛血清和1%青霉素/鏈霉素混合液的高糖DMEM培養(yǎng)液于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。1~2天進行傳代處理,取生長狀態(tài)良好的細胞進行后續(xù)實驗。
接種2 000~5 000個細胞懸浮于100 μL培養(yǎng)基中,接種于96孔板中,置于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每孔加入10 μL CCK-8檢測試劑,于培養(yǎng)箱內(nèi)孵育1~4 h后用全波段酶標儀450 nm波長處測定吸光值。
將各個分組中細胞裂解后采用BCA蛋白定量檢測試劑盒檢測蛋白濃度,配平后加入蛋白上樣緩沖液金屬浴100 ℃保持5 min。Bad、Bax、GAPDH一抗1∶1 000稀釋,4 ℃下孵育12 h,二抗1∶10 000稀釋后室溫下孵育2 h后上機檢測。
將各個分組中細胞裂解后采用mRNA提取試劑盒對細胞mRNA進行提取, NanoDrop 8 000進行濃度測定后利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄獲取cDNA,按照TaKaRa Real-time PCR試劑盒說明利用QuantStudio 5設(shè)備對凋亡及自噬相關(guān)基因表達量進行測定。
取各個分組細胞培養(yǎng)上清用于ELISA檢測,TNF-α檢測步驟參照試劑盒內(nèi)說明書,酶標儀讀取450 nm處OD值。
實驗分為2組,分別為對照組和甘草酸處理組,培養(yǎng)24 h后收集細胞于1 mL預(yù)冷的70%乙醇中-20 ℃固定一夜。采用細胞周期與細胞凋亡檢測試劑盒處理兩組細胞,然后用流式細胞儀檢測細胞周期。
表1 Real-time qPCR引物序列Table 1 The Real-time qPCR primer sequences
支原體培養(yǎng)基基礎(chǔ)33 g溶解于1 L蒸餾水中,高壓后冷卻至室溫,加入20%馬血清、80萬單位氨芐青霉素、1%醋酸鉈10 mL,充分混勻后分裝于50 mL離心管中,置于-20 ℃冰箱保存。Y98標準株培養(yǎng)于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中,待培養(yǎng)基顏色由紅色變?yōu)槌赛S色(pH6.8)左右時1∶5傳代培養(yǎng)。MO濃度采用顏色變化單位測定法(colour change unit,CCU)計算,即十倍梯度稀釋MO菌液后觀察MO培養(yǎng)基顏色變化,以最后發(fā)生顏色改變的稀釋倍數(shù)為待檢的MO菌液的CCU。
將預(yù)先配置好的甘草酸儲存液用新鮮的細胞培養(yǎng)液稀釋到合適濃度,然后用稀釋好的甘草酸對待處理細胞進行換液處理,空白對照組將所用甘草酸儲存液相應(yīng)體積的PBS用新鮮培養(yǎng)液進行同比稀釋處理并對待處理細胞進行換液。
RAW264.7細胞對數(shù)生長時,以5×106的密度接種于10 cm細胞培養(yǎng)皿中,待細胞貼壁且生長狀態(tài)良好,12 000 rpm,10 min離心收集MO并用新鮮細胞培養(yǎng)液將MO重懸后按感染復(fù)數(shù)MOI=10∶1加入待感染的細胞,并置于37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后分別提取各個分組細胞的總蛋白及總mRNA進行后續(xù)實驗。
統(tǒng)計學(xué)軟件采用GraphPad Prism 7.04,兩組數(shù)據(jù)之間采用T tests非參數(shù)檢驗法統(tǒng)計,三組及三組以上數(shù)據(jù)采用單因素方差分析法進行統(tǒng)計學(xué)分析。
為了驗證不同濃度甘草酸對巨噬細胞活性的影響,我們采用12、1.2、120、12 μM濃度的甘草酸-PBS溶液處理RAW264.7細胞,培養(yǎng)24 h后用CCK-8法檢測細胞活性(圖1)。結(jié)果顯示與對照組相比濃度為120、12 μM的甘草酸顯著提高RAW 264.7巨噬細胞活性(P<0.000 1,P=0.012 9);而12、1.2 mM高濃度甘草酸與對照組相比顯著抑制RAW264.7巨噬細胞存活(P<0.000 1)。因此本實驗采用最小濃度12 μM甘草酸溶液處理細胞。
圖1 篩選適合RAW264.7巨噬細胞的甘草酸處理濃度Fig.1 Optimal concentation for glycyrrhizic acid to treat RAW264.7 macrophages.注:(120 μmol/L)*** P <0.000 1 vs對照組;(12 μmol/L) * P=0.012 9 vs對照組;(12 mmol/L、1.2 mmol/L) *** P <0.000 1 vs對照組。Note:(120 μmol/L)*** P <0.000 1 vs Control;(12 μmol/L) * P=0.012 9 vs Control;(12 mmol/L、1.2 mmol/L) *** P <0.000 1 vs Control.
圖2為流式細胞儀檢測甘草酸處理前后RAW264.7巨噬細胞周期,結(jié)果顯示:與未處理組相比甘草酸處理后,處于G1期的細胞數(shù)量減少,S期細胞數(shù)量減少,G2期細胞數(shù)量增加。
取CCU濃度為1×107生長良好的MO,按照 MOI值為10∶1感染RAW264.7細胞。實驗分為無感染對照組,MO感染組,經(jīng)甘草酸處理的MO感染組,分別培養(yǎng)24 h后檢測細胞活性。結(jié)果顯示與對照組相比24 h內(nèi)MO沒有顯著抑制RAW264.7的生長(P=0.659 4),加入甘草酸組中RAW264.7巨噬細胞增殖顯著增加(P=0.021 7,圖3)。
圖2 甘草酸處理前后巨噬細胞周期。Fig.2 Cell cycle in non-treated and glycyrrhizic acid treated macrophages注:左側(cè)為未處理組,右側(cè)為甘草酸處理組。Note:The left side is the untreated group,and the right side is the glycyrrhizic acid treated group.
圖3 甘草酸對受MO感染的RAW264.7巨噬細胞活性的影響。Fig.3 Effect of glycyrrhizic acid on cell viability of MO-infected RAW264.7 macrophages注:P=0.659 4 MO感染組 vs對照組; *P=0.021 7 甘草酸+MO組vs對照組。Note:P=0.659 4 MO treated vs Control; *P=0.021 7 glycyrrhizic acid+MO treated vs Control.
為了驗證甘草酸對巨噬細胞炎癥因子分泌的影響,本實驗采用ELISA分析巨噬細胞上清液中的TNF-α的表達量(圖4)。結(jié)果顯示與對照組相比MO感染后巨噬細胞TNF-α的表達量顯著下降(P<0.000 1),而正常巨噬細胞在甘草酸處理后TNF-α的表達量也會顯著降低(P=0.009 7),但加入甘草酸的巨噬細胞被MO感染后,細胞上清中TNF-α表達量有所上升(P<0.05)。
為了研究MO對巨噬細胞凋亡的影響,以及甘草酸在此過程中的作用,本實驗采用Real-time PCR法檢測凋亡相關(guān)基因caspase 3、caspase 8、caspase 9的表達情況(圖5)。結(jié)果顯示,與Control組相比巨噬細胞中凋亡相關(guān)基因caspase 3的表達在MO感染后上調(diào)(P<0.000 1),caspase 8無顯著變化(P=0.347 9),caspase 9表達量下調(diào)(P<0.000 1)。與MO組相比受MO感染的巨噬細胞中經(jīng)甘草酸處理后caspase 3、caspase 8的表達量均顯著下調(diào)(P<0.000 1),caspase 9則無顯著變化(P=0.424 6)。
圖4 巨噬細胞培養(yǎng)上清中TNF-α的分泌Fig.4 Secretion of TNF-α in macrophage culture supernatant注: ***P <0.000 1 MO感染組 vs對照組;**P =0.009 7甘 草酸組 vs對照組;*P <0.05 MO感染組vs甘草酸+MO組。Note: ***P <0.000 1 MO treated vs Control;**P =0.009 7 glycyrrhizic acid treated vs Control; *P <0.05 MO treated vs glycyrrhizic acid+MO treated.
為了進一步研究MO對巨噬細胞凋亡的影響,以及甘草酸在此過程中的作用,本實驗采用Western blot法檢測凋亡蛋白Bax、Bad的表達情況(圖6)。結(jié)果顯示,與對照組相比巨噬細胞中促凋亡蛋白Bax的表達在MO感染后上調(diào),而加入甘草酸處理不會引起正常巨噬細胞Bax蛋白的表達,但在受MO感染的巨噬細胞中,甘草酸不能改善MO引起的巨噬細胞Bax蛋白表達(P= 0.076 3)。Bad蛋白在正常巨噬細胞中弱表達,在MO處理組中無表達,但甘草酸處理組表達量較高(P<0.000 1)。
圖5 凋亡相關(guān)基因在巨噬細胞中的表達情況。Fig.5 Expression of apoptosis-related genes in macrophages.注:(Caspase 3)***P <0.000 1;(Caspase 8)P =0.347 9;(Caspase 9)****P <0.000 1 MO組vs Control。 (Caspase 3、Caspase 8)****P <0.000 1;(Caspase 9)P =0.424 6 MO/甘草組vs MO組。Note:(Caspase 3)***P <0.000 1;(Caspase 8)P =0.347 9;(Caspase 9)****P <0.000 1 MO treated vs Control.(Caspase 3、Caspase 8)****P <0.000 1;(Caspase 9)P =0.424 6 MO/ glycyrrhizic acid treated vs MO treated.
圖6 促凋亡因子在巨噬細胞中的表達情況。Fig.6 Expression of pro-apoptotic factors in macrophages.(A) images of Western blot results.(B) quanlitative analysis of bands by ImageJ software.注:(Bax)P = 0.076 3 MO組 vs甘草酸/MO組;(Bad)****P <0.000 1 對照組vs甘草酸。Note:(Bax)P = 0.076 3 MO treated vs MO/ glycyrrhizic acid treated;(Bad)****P <0.000 1 Control vs glycyrrhizic acid treated.
為了研究MO對巨噬細胞自噬的影響,以及甘草酸在此過程中的作用,本實驗采用Real-time PCR法檢測自噬相關(guān)基因Atg 7、Beclin 1的表達情況(圖7)。結(jié)果顯示,與Control組相比受MO感染的巨噬細胞中經(jīng)甘草酸處理后自噬相關(guān)基因Atg 7的表達量顯著上調(diào)(P<0.000 1),Beclin 1表達量顯著上調(diào)(P=0.001 6);與MO組相比MO/甘草酸組自噬相關(guān)基因Atg 7、Beclin 1的表達量均顯著上調(diào)(P<0.000 1)。
研究結(jié)果顯示,高濃度甘草酸溶液對細胞有抑制作用,但12 μmol/L甘草酸溶液可以促進RAW264.7巨噬細胞增殖。以往研究發(fā)現(xiàn)支原體感染可使巨噬細胞活力下降,感染后期巨噬細胞凋亡,從而破壞宿主免疫系統(tǒng)對原發(fā)感染和繼發(fā)感染的控制,使得炎癥得以擴散和蔓延[13]。甘草酸處理后細胞周期G1期、S期細胞數(shù)量減少,而進入G2期的細胞數(shù)量增加,結(jié)合細胞增殖檢測,提示甘草酸可能通過調(diào)節(jié)細胞周期來促進巨噬細胞的細胞增殖,從而對巨噬細胞抗MO感染有一定積極作用。在細胞凋亡方面,caspase半胱氨酸蛋白酶家族引發(fā)的級聯(lián)反應(yīng)是介導(dǎo)細胞凋亡的中心環(huán)節(jié),通過選擇性地切割某些蛋白質(zhì)使靶蛋白活化或失活,從而介導(dǎo)下游的細胞凋亡過程[14,15]。本實驗驗證了caspase家族的重要成員caspase 3,caspase 8,caspase 9在甘草酸參與的巨噬細胞應(yīng)對MO感染中的作用。實驗發(fā)現(xiàn)甘草酸可以抑制凋亡基因caspase 3、caspase 8、caspase 9在正常巨噬細胞中的表達。 蛋白檢測發(fā)現(xiàn)促凋亡因子Bax表達在正常組和甘草酸處理組均無明顯表達,而在MO處理后表達量明顯升高,提示MO感染可能會引起巨噬細胞凋亡。實驗結(jié)果提示甘草酸處理可以減少巨噬細胞凋亡因子的表達,從而增加MO處理后的巨噬細胞活性。
圖7 自噬相關(guān)基因在巨噬細胞中的表達情況Fig.7 Expression of autophagy-related genes in macrophages注:(Atg 7)****P<0.000 1;(Beclin 1)**P =0.001 6 MO/甘草酸組 vs Control。(Atg 7、Beclin 1) ****P<0.000 1 MO/甘草酸組 vs MO組。Note:(Atg 7)****P<0.000 1;(Beclin 1)**P =0.001 6 MO/ glycyrrhizic acid treated vs Control.(Atg 7、Beclin 1) ****P<0.000 1 MO/ glycyrrhizic acid treated vs MO treated.
本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),MO可能通過抑制巨噬細胞自噬而減少巨噬細胞對MO的清除[5]。Bad蛋白在促凋亡和激活自噬中均發(fā)揮作用,本實驗中Bad在正常組中表達,在甘草酸處理組中高表達,而在MO感染組中均無表達,提示甘草酸可能在激活巨噬細胞自噬中發(fā)揮作用。因此本實驗對自噬相關(guān)基因進行驗證。自噬基因Beclin 1 和Atg 7表達變化說明,正常情況下甘草酸處理和甘草酸處理后經(jīng)MO感染情況下,都可以引起自噬相關(guān)蛋白編碼基因的高表達,結(jié)果提示甘草酸可能對巨噬細胞自噬有一定正向調(diào)控作用。
巨噬細胞可吞噬病原微生物,放大炎癥信號,并通過抗原遞呈調(diào)節(jié)T細胞應(yīng)答參與獲得性免疫應(yīng)答[16,17]。 TNF-α主要由活化的巨噬細胞產(chǎn)生,可以誘導(dǎo)T細胞及NK細胞增殖活化[18,19],及促進單核細胞白血病細胞U937向巨噬細胞分化[20],而且TNF-α能有效刺激肺泡上皮細胞A549產(chǎn)生過度炎癥反應(yīng)[21]。本實驗發(fā)現(xiàn)MO可以抑制巨噬細胞分泌TNF-α,可能是MO對巨噬細胞免疫抑制的一個體現(xiàn)。然而甘草酸處理過的巨噬細胞在受到MO感染后,其TNF-α分泌量顯著回升。
綜上所述,甘草酸可以抑制受MO感染后巨噬細胞的凋亡,并且可以增加巨噬細胞增殖,而且甘草酸可以促進受MO感染的巨噬細胞分泌炎癥因子TNF-α,除此之外,甘草酸可能通過對巨噬細胞自噬產(chǎn)生激活作用,從而在消除MO感染中發(fā)揮作用。