薛璐, 歐陽聰, 孫寧遠(yuǎn), 秦緒慧
(中南民族大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,生物醫(yī)學(xué)研究所,武陵山區(qū)特色資源植物種質(zhì)保護(hù)與利用湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,武漢430074)
胎盤特異蛋白9(Plac9)是典型的在人胚4~6周低豐度表達(dá),而之后3周內(nèi)表達(dá)量有明顯上升的新基因[1].它定位于人染色體10q22.3上,其cDNA含有典型的kozak序列,完整的開放閱讀框,全長(zhǎng)691 bp,編碼91個(gè)氨基酸,分子量約為10 kb的含信號(hào)肽的蛋白[2].Plac9是新發(fā)現(xiàn)的基因,其功能尚不清楚,根據(jù)生物信息學(xué)分析預(yù)測(cè)Plac9蛋白與胚胎的骨骼發(fā)育、軟骨生成以及膠原蛋白合成有關(guān)[1].CRISPR/Cas9基于細(xì)菌保護(hù)自身免受病毒感染的系統(tǒng)衍生而來,在細(xì)菌[3]、斑馬魚[4]、大鼠[5]及人類細(xì)胞[6]中均表現(xiàn)出較強(qiáng)的基因組編輯活性.CRISPR最早發(fā)現(xiàn)于原核生物大腸桿菌基因組的串聯(lián)重復(fù)序列,隨后Rodolphe Barrangou等證明這種串聯(lián)重復(fù)序列廣泛存在于細(xì)菌和古細(xì)菌中,說明它們參與了細(xì)菌和古細(xì)菌抵御外來噬菌體的入侵[7].CRISPR/Cas系統(tǒng)對(duì)DNA序列的特異性切割依賴于CAS和crRNA形成的蛋白核酸復(fù)合物對(duì)DNA序列上PAM區(qū)域的識(shí)別,利用這一特性可將其作為人工核酸內(nèi)切酶(EEN),用以對(duì)基因組特定位點(diǎn)進(jìn)行遺傳修飾,實(shí)現(xiàn)基因組編輯[8].本文通過CRISPR/Cas9系統(tǒng)用流式細(xì)胞術(shù)分選技術(shù)構(gòu)建Plac9敲除細(xì)胞系,進(jìn)一步研究該基因的功能.
人胚腎細(xì)胞株293T(武漢大學(xué)細(xì)胞庫);PX458質(zhì)粒、感受態(tài)細(xì)菌Stbl3、10XT4 Ligation Buffer、T4連接酶(武漢淼靈生物);T4 PNK, 10XTaq Buffer, dNTP, rTaq酶(TaKaRa);Fast Digest BpiI, Fast AP, 10X Fast Digest Buffer(Thermo Scientific);DTT(Biosharp);Endo-free Plasmid Mini Kite(Omega);AxyPrep DNA Gel Extraction Kit(AxyGen);DMEM高糖培養(yǎng)基、PBS(HyClone);血清(BioCell);雙抗、胰酶、Lipofectamine 2000試劑(Invitrogen);BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒、PMSF、SDS-PAGE凝膠快速配制試劑盒、Tween-20、BeyoECL Plus、Loading buffe(碧云天);Protein Ladder(Thermo);CH3OH(分析醇);NaCl, Gly, KH2PO4, Na2HPO4·12H2O, CaCl2(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑);Anti-plac9(Cell Signaling Technology);Anti-β-Actin, HRP-goat anti mouse IgG, HRP-goat anti rabbit IgG(康為世紀(jì));引物合成、基因測(cè)序(武漢擎科生物).
利用CRISPR在線設(shè)計(jì)工具網(wǎng)站http://crispr.mit.edu/,根據(jù)評(píng)分系統(tǒng),分別在Plac9的外顯子設(shè)計(jì)4個(gè)sgRNA(S1,S2,S3,S4).選擇得分較高的序列,去掉PAM序列堿基,若第一個(gè)堿基不是G,則需要在前面補(bǔ)一個(gè)G,以sgRNA序列為模板,設(shè)計(jì)其互補(bǔ)鏈,再在其兩端加上酶切位點(diǎn)即分別在編碼鏈模板5′端添加CACCg,非編碼鏈模板5′端添加AAAC,3′端添加C,設(shè)計(jì)的sgRNA序列見表1. 載體PX458和目的基因Plac9的結(jié)構(gòu)圖見圖1.
表1 Plac9 sgRNA引物序列Tab.1 Prime sequences of Plac9 sgRNA
A) PX458質(zhì)粒結(jié)構(gòu),有2個(gè)Bbs I酶切位點(diǎn);B) sgRNA-S1的靶向識(shí)別位置及其周圍的DNA序列圖1 構(gòu)建靶向Plac9的PX458質(zhì)粒Fig.1 Construction of Plac9-targeting PX458 plasmids
用Fast DigestBpiI酶切質(zhì)粒PX458,使其線性化,切膠回收后測(cè)其濃度.將sgRNA寡核苷酸鏈退火為雙鏈,再與線性化的PX458連接,轉(zhuǎn)化到stbl3感受態(tài)中,挑取陽性單克隆菌落,將菌液進(jìn)行菌落PCR,再將有正確條帶的菌落送測(cè)序驗(yàn)證是否構(gòu)建成功.
293T細(xì)胞用DMEM高糖完全培養(yǎng)基培養(yǎng)在含5%的CO2,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中.轉(zhuǎn)染前24 h取對(duì)數(shù)期細(xì)胞以5×105個(gè)/孔的細(xì)胞密度接種到6孔板中培養(yǎng)24 h[9].提前2 h將6孔板中的培養(yǎng)基換成opti-MEM饑餓細(xì)胞,將2.5 μg質(zhì)粒加入到125 μL的opti-MEM中,8 μL的lipo-2000加入到125 μL的opti-MEM中,靜置5 min后,將它們輕輕混合,再靜置30 min后加入到細(xì)胞中,3 h后換完全培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h.
將轉(zhuǎn)染好的細(xì)胞用胰酶消化,用PBS洗2次后,過流式膜,將細(xì)胞放在流式管中,流式管預(yù)先放入3 mL含10%血清的PBS,準(zhǔn)備好上機(jī)分選.選擇single模式,根據(jù)陰性對(duì)照調(diào)節(jié)電壓,設(shè)置陽性門后,開始將帶有綠色熒光的細(xì)胞單個(gè)打至含20%胎牛血清的完全培養(yǎng)基的96孔板中[10].
將篩選出來的細(xì)胞在96孔板中培養(yǎng)約15 d后轉(zhuǎn)至24孔板中,待細(xì)胞密度長(zhǎng)至80%再將細(xì)胞轉(zhuǎn)入12孔板中,再轉(zhuǎn)至6孔板中繼續(xù)培養(yǎng).
收取6孔板中的細(xì)胞提基因組測(cè)序.篩選出編輯過的細(xì)胞系,將該細(xì)胞擴(kuò)大培養(yǎng),凍存1批,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn).
將測(cè)序結(jié)果正確的細(xì)胞提取蛋白質(zhì),用普通未做轉(zhuǎn)染的293T細(xì)胞為對(duì)照,檢測(cè)Plac9的蛋白表達(dá)量.先用SDS-PAGE凝膠配制試劑盒配分離膠和濃縮膠,插上梳子;再點(diǎn)樣濃縮膠30 mA、80 V跑40 min,分離膠30 mA、100 V跑1 h.電泳完畢后,取出玻璃板,剝得分離膠,作好標(biāo)記,將分離膠和膜按順序放在轉(zhuǎn)膜板上,輕輕趕出氣泡,200 mA、100 V轉(zhuǎn)膜1 h.再用5%的脫脂奶粉將轉(zhuǎn)好的膜封閉1 h,用PBST洗1次后,加入1抗,4 ℃過夜.接著用PBST洗3次,每次10 min,室溫下敷2抗1 h,PBST洗3次,每次10 min,最后ECL顯影觀察結(jié)果.
將單核苷酸序列退火連成雙鏈后與線性化的PX458連接,轉(zhuǎn)化到stbl3感受態(tài)中,挑取陽性單克隆菌液,做菌落PCR后,將有正確條帶的菌液送測(cè)序.測(cè)序結(jié)果顯示,sg-RNAS1, S2, S3, S4分別正確插入到PX458載體中.
將構(gòu)建好的載體用lipo2000轉(zhuǎn)染到細(xì)胞中,48 h后用汞燈觀察其轉(zhuǎn)染效率,結(jié)果見圖2.由圖2可知,PX458和PX458-sgRNA-S1這兩個(gè)質(zhì)粒都成功轉(zhuǎn)染到293T細(xì)胞中.
A) 明場(chǎng)下視野(10×); B) 熒光下視野(10×)圖2 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞Fig.2 Plasmid transfected 293T cells
將轉(zhuǎn)染成功的細(xì)胞通過流式細(xì)胞儀篩選出單個(gè)帶綠色熒光的細(xì)胞至96孔板中,培養(yǎng)后將細(xì)胞提基因組送測(cè)序檢測(cè)是否有編輯過的細(xì)胞株,測(cè)序結(jié)果顯示僅有PX458-H5對(duì)細(xì)胞進(jìn)行了編輯,并用DNA MAN軟件對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行比對(duì),結(jié)果如圖3.由圖3可知:在方框處的堿基發(fā)生了編輯,并出現(xiàn)了明顯的套峰,說明該基因已經(jīng)被編輯了.
圖3 PX458-sgRNA-S1的測(cè)序結(jié)果Fig.3 Sequencing results of PX458-sgRNA-S1
為進(jìn)一步驗(yàn)證該細(xì)胞是否被編輯成功,實(shí)驗(yàn)運(yùn)用錯(cuò)配酶進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果如圖4.由圖4可知:P為陽性對(duì)照,S為檢測(cè)的樣品(PX458-sgRNA-S1質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)染到293T細(xì)胞后,提取該細(xì)胞的基因組),PX458為陰性對(duì)照.陽性對(duì)照和檢測(cè)的樣品均被錯(cuò)配酶切開,對(duì)照組未被切開.
圖4 PX458-sgRNA-S1錯(cuò)配酶驗(yàn)證Fig.4 Mismatched enzyme verification of PX458-sgRNA-S1
將篩選出來進(jìn)行編輯過的細(xì)胞株提蛋白,以正常293T細(xì)胞為對(duì)照,觀察Plac9的蛋白表達(dá)量,結(jié)果如圖5.由圖5可知,編輯過的293T細(xì)胞中Plac9蛋白的表達(dá)量明顯少于未編輯的293T細(xì)胞.
圖5 Western blot 檢測(cè)PX458-S1的靶向敲除效果Fig.5 Targeted knock out effect of PX458-S1 by Western blot
基因編輯技術(shù)是研究基因功能的重要手段,早期的基因編輯技術(shù)大部分通過同源重組的方法對(duì)目的基因進(jìn)行編輯,但編輯效率很低;而后出現(xiàn)了人工核酸酶技術(shù),比如鋅指核酸內(nèi)切酶(ZFN)[11]和類轉(zhuǎn)錄激活因子效應(yīng)物核酸酶(TALEN)[12],它們是通過DNA蛋白對(duì)靶點(diǎn)進(jìn)行特異性識(shí)別,可設(shè)計(jì)結(jié)合任意基因組中DNA序列的模塊化蛋白,對(duì)特定的DNA序列進(jìn)行識(shí)別和編輯.CRISPR/Cas9系統(tǒng)是利用sgRNA識(shí)別特定的DNA序列,介導(dǎo)Cas9蛋白對(duì)靶點(diǎn)序列進(jìn)行編輯,這種方法更加簡(jiǎn)潔、高效.
利用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建敲除細(xì)胞系一般需要用病毒作轉(zhuǎn)染以提高轉(zhuǎn)染效率,再用嘌磷霉素篩選細(xì)胞,用有限稀釋法將篩好的細(xì)胞分為單個(gè)細(xì)胞培養(yǎng);但使用病毒具有一定的安全隱患,本文先將sgRNA與PX458載體相連接構(gòu)成表達(dá)載體,用lipo2000作轉(zhuǎn)染,使轉(zhuǎn)染好的細(xì)胞帶有綠色熒光,再通過流式細(xì)胞儀將帶綠色熒光的細(xì)胞分選為單克隆,培養(yǎng)好后提基因組測(cè)序,篩選出編輯過的細(xì)胞,再進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn).這種方法避免了用病毒作轉(zhuǎn)染,克服了轉(zhuǎn)染效率不高的問題,不用有限稀釋,省時(shí)、方便、高效.
Plac9基因是在人胚胎基因組中發(fā)現(xiàn)的在人胚4~6周低豐度表達(dá),在7~9周高表達(dá)的一個(gè)新的基因[1],該基因功能尚未研究清楚,但它在7~9周對(duì)胚胎發(fā)育有著一定的作用.根據(jù)生物信息學(xué)預(yù)測(cè)可知,Plac9基因與胚胎的骨骼發(fā)育、軟骨生成及膠原蛋白合成有關(guān).本實(shí)驗(yàn)成功構(gòu)建了Plac9基因敲除細(xì)胞系,可進(jìn)一步深入地研究Plac9基因相關(guān)功能.