張喜峰,鄧猛猛,羅光宏,楊生輝,王丹霞
(1.河西學(xué)院農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院,甘肅 張掖 734000;2.甘肅省河西走廊特色資源利用重點實驗室,甘肅 張掖 734000;3.河西學(xué)院甘肅省微藻工程技術(shù)研究中心,甘肅 張掖 734000)
非酶糖基化是指蛋白質(zhì)或氨基酸中游離氨基與還原糖的醛基之間發(fā)生一系列重排、脫水、氧化、縮合等反應(yīng) (又稱 Maillard反應(yīng)),從而形成具有活性的晚期糖基化終產(chǎn)物(AGEs)[1],其與機體氧化應(yīng)激有關(guān),可引發(fā)糖尿病、腎臟疾病、阿爾茨海默病(AD)等慢性疾病[2-3].
肉蓯蓉(Cistanchedeserticola)為列當(dāng)科肉蓯蓉屬多年生植物,寄生在梭梭類植物根部,在中國主要產(chǎn)于新疆、內(nèi)蒙古、甘肅和寧夏等地,素有“沙漠人參”之美譽[4].肉蓯蓉長期以來被用作治療腎虛陽痿、老年便秘、腰膝酸痛、血虛癥等[5].藥理研究表明,肉蓯蓉具有抗炎活性[6-7]、抗骨質(zhì)疏松[8]、鎮(zhèn)靜[9]、抗疲勞等活性[10-11].多糖為肉蓯蓉主要有效成分之一,具有降血糖、降血脂作用[12]和對淋巴細胞的免疫活性[13]等功效.
閃式提取法作為一種新型提取方法,是利用一定量溶劑在閃式容器中將物料高速攪拌,從而達到物料組織細胞壁快速破碎,有效成分釋放進入提取液,該方法可在短時間內(nèi)完成,具有顯著減低能耗,節(jié)約成本的作用[14-15].衛(wèi)強等[16]比較了4種提取多糖方法,閃式提取具有較佳的提取效果;李明華等[17]優(yōu)化了金針菇多糖閃式提取工藝,與高溫浸提相比,其提取率提高了40.08%;程振玉等[18]研究表明,閃式法對北五味子多糖提取率高于回流法和微波輔助法,且耗費時間短,溶劑用量少.但目前為止,有關(guān)肉蓯蓉多糖的提取主要采用表面活性劑輔助提取法[19]、熱水浸提法[20]、循環(huán)超聲提取法[21]等傳統(tǒng)方法,采用閃式提取的相關(guān)研究還未見報道.
因此,基于肉蓯蓉多糖優(yōu)越的功能特性,本研究以肉蓯蓉為材料,采用響應(yīng)面試驗優(yōu)化閃式提取肉蓯蓉多糖的條件,初步探討其多糖對糖基化產(chǎn)物的抑制效果,以期能為肉蓯蓉多糖資源的開發(fā)和利用提供參考依據(jù).
肉蓯蓉:購于張掖市甘州區(qū)德生堂藥店,經(jīng)羅光宏教授鑒定為列當(dāng)科肉蓯蓉屬多年生植物,干燥粉碎后密封保存;無水乙醇、苯酚、濃硫酸、葡萄糖、賴氨酸均為分析純.
DD-5M低速大容量離心機,湖南凱達科學(xué)儀器有限公司;722S可見分光光度計,上海光譜儀器有限公司制造;梅特勒電子天平ME54E,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;LS55型熒光光度計,PE公司; JHBE-50T(實驗型)閃式提取器,河南智晶生物科技股份有限公司.
1.2.1 肉蓯蓉多糖提取液的制備 準(zhǔn)確稱取一定量粉碎后肉蓯蓉粉末,按照一定料液比加入蒸餾水,轉(zhuǎn)移至閃式提取器中,在一定提取轉(zhuǎn)速下提取一定時間后,4 000 r/min離心10 min,將上清液定容至100 mL,混勻后,待用.
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備及肉蓯蓉中多糖含量的計算 參照文獻[11]的方法,略作修改.準(zhǔn)確吸取濃度為100 μg/mL的葡萄糖溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL分別置于具塞試管中,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為6%苯酚1 mL,再加入5 mL濃硫酸,加水補足至8 mL,混勻,在490 nm處測定吸光度,以濃度C為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)進行線性回歸分析.得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程C=12.402x-0.009 1,R2=0.997 6.
精密吸取1.2.1制備的多糖提液0.2 mL置于具塞試管中,依次加入6%苯酚1 mL和濃硫酸5 mL,加水補足至8 mL,充分搖勻后,放置冷卻至室溫,以不加提取液的混合試劑為空白對照,在490 nm處測定吸光值,計算多糖得率.
(1)
式中,C為提取液中多糖質(zhì)量濃度(mg/mL);V為提取液的體積(mL);M為肉蓯蓉樣品質(zhì)量(g).
1.2.3 閃式提取肉蓯蓉多糖單因素試驗設(shè)計 參照文獻[22]的方法,略作改動.在提取轉(zhuǎn)速為6 000 r/min,提取時間為60 s,料液比為1∶50 g/mL的條件下,固定其他條件不變,設(shè)置料液比1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60 g/mL;提取時間40、50、60、70、80 s,提取轉(zhuǎn)速2 000、4 000、6 000、8 000、10 000 r/min,以多糖提取得率為指標(biāo),進行單因素試驗,每個試驗重復(fù)3次.
1.2.4 響應(yīng)面優(yōu)化試驗設(shè)計 在單因素試驗基礎(chǔ)上,對料液比(A)、提取轉(zhuǎn)速(B)、提取時間(C)為自變量,多糖得率為因變量,利用Design-expert 8.0.6.0軟件進行響應(yīng)面優(yōu)化試驗設(shè)計,見表1.
1.2.5 肉蓯蓉多糖抗糖基化活性的測定 參照文獻[23]的方法,采用賴氨酸/葡萄糖模擬體系評價非酶反應(yīng)過程中AGEs形成情況,取濃度為0.2 mol/L的賴氨酸溶液和葡萄糖溶液各1mL,加入1 mL多糖溶液(0.1~0.5 mg/mL)充分混勻,在溫度為37 ℃密封孵育10 d,在λex/λem=370 nm/440 nm測定不同濃度下的熒光值,采用同濃度的氨基胍(AG)作為陽性對照.以不添加多糖但水浴10 d的模擬體系為對照組;以不添加多糖也不水浴的賴氨酸/葡萄糖模擬體系為空白組.按以下公式計算肉蓯蓉多糖對賴氨酸/葡萄糖模擬體系A(chǔ)GEs相對抑制率.
表1 試驗因素及水平
式中,F(xiàn)樣品為加入多糖提取液且水浴的反應(yīng)液的熒光值;F對照為不添加多糖但水浴的賴氨酸/葡萄糖模擬體系的熒光值;F空白為不添加多糖也不水浴的賴氨酸/葡萄糖模擬體系的熒光值.
2.1.1 料液比的影響 由圖1可知,當(dāng)料液比在1∶20~1∶50范圍內(nèi)時,多糖得率呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢;當(dāng)料液比為1∶50時,多糖得率達到最大值.原因可能是隨著提取液體積逐漸增加,提取液中溶出多糖的濃度逐漸減小,形成了一定的濃度梯度[24].因此,多糖擴散速率快,得率高;當(dāng)料液比超過1∶50后,多糖得率增加不顯著,提取液體積增加導(dǎo)致熱能消耗過多,且增加后序濃縮處理時的步驟.因此.確定料液比為1∶50.
2.1.2 提取轉(zhuǎn)速的影響 由圖2可知,隨著提取轉(zhuǎn)速逐漸增加,多糖得率呈現(xiàn)先增加后下降的趨勢,當(dāng)提取轉(zhuǎn)速為6 000 r/min時,提取得率達到最大值.原因可能是隨著閃式提取器中內(nèi)刀轉(zhuǎn)速提高,在內(nèi)外刀之間產(chǎn)生巨大剪切力,外刀腔內(nèi)產(chǎn)生負(fù)壓.在此環(huán)境中,物料組織破碎,暴露出有效成分,且在高速碰撞作用下被提取溶劑包圍、解離、溶解,達到濃度平衡的過程.當(dāng)提取轉(zhuǎn)速繼續(xù)增大時,引起刀頭產(chǎn)熱過多,影響提取得率.因此,提取轉(zhuǎn)速確定為6 000 r/min.
圖1 料液比對肉蓯蓉多糖提取得率的影響Figure 1 Effect of solid to liquid ratio on the yield of CDPs
圖2 提取轉(zhuǎn)速對肉蓯蓉多糖提取得率的影響Figure2 Effect of extraction speed on the yield of CDPs
2.1.3 提取時間的影響 由圖3可知,在提取時間為40~60 s范圍內(nèi),多糖得率呈現(xiàn)逐漸增大的趨勢;當(dāng)提取時間為60 s時,多糖得率達到最大值;繼續(xù)增加提取時間,多糖得率逐漸下降.這主要是由于提取時間較少時,多糖未全部溶解于提取液中,隨著時間延長,物料受到閃式提取器內(nèi)外刀剪切、碰撞作用,促進多糖得率提高;當(dāng)提取時間達到一定值后,由于劇烈碰撞導(dǎo)致溫度升高,可能使多糖結(jié)構(gòu)遭受一定程度破壞.因此,提取時間選擇以60 s為宜.
2.2.1 模型擬合及數(shù)據(jù)分析 在單因素基礎(chǔ)上,采用Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計對影響多糖得率的因素進行試驗設(shè)計,結(jié)果見表2.
圖3 提取時間對閃式提取肉蓯蓉多糖的影響Figure 3 Effect of extraction time on the flash extraction of CDPs
響應(yīng)面試驗設(shè)計及方差分析見表2~3.三因素優(yōu)化后二次回歸方程為:多糖得率(%)=12.11+0.28A-0.77B+0.071C-1.02AB-0.025AC+0.52 BC-0.95A2-1.81B2-1.27C2
表2 Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計及其結(jié)果
表3 響應(yīng)面二次模型方差分析結(jié)果
2.2.2 響應(yīng)面3D圖分析 圖4反映了提取參數(shù)二者間相互作用對肉蓯蓉多糖得率的影響.如圖4A所示,當(dāng)提取時間(C)固定在零水平時,料液比(A)和提取轉(zhuǎn)速(B)二者對肉蓯蓉多糖得率具有二次效應(yīng);表明料液比和提取電壓之間交互作用差異極顯著,且與表3中的結(jié)果一致.當(dāng)料液比和提取轉(zhuǎn)速分別在1∶40~1∶50 (g/mL)和4 000~6 000 r/min范圍內(nèi)時,肉蓯蓉多糖得率呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢.圖4B、4C反映結(jié)果與圖4A是類似的.
圖4 肉蓯蓉多糖得率的響應(yīng)面3D圖Figure 4 The effect of solid-liquid ratio(A),rotating speed(B),and extraction time(C) on the yield of polysaccharides ofCistanche deserticolaby 3D-response surface plots
2.2.3 最適條件的確定與驗證 由軟件分析可知,閃式提取肉蓯蓉多糖最適條件為:料液比為1∶53.16 (g/mL)、提取轉(zhuǎn)速為5 387.05 r/min、提取時間為59.63 s,多糖提取得率理論預(yù)測值為12.27%;在試驗驗證過程中,為了便于實際操作,最佳條件修正為:料液比為1∶53 (g/mL)、提取轉(zhuǎn)速為5 387 r/min、提取時間為60 s,在此條件下重復(fù)3次試驗,多糖提取平均得率為12.35%,與預(yù)測值較接近.說明此模型獲得的優(yōu)化條件可用于肉蓯蓉多糖提取.
由圖5可知,隨著多糖樣品質(zhì)量濃度逐漸增加,其對賴氨酸/葡萄糖模擬體系中AGEs抑制作用逐漸增加,在此范圍內(nèi),體現(xiàn)二者間線性關(guān)系,且線性方程為:y=71.36x+18.744(R2=0.956 7),其IC50為0.438 mg/mL;陽性對照氨基胍(AG)在此范圍內(nèi)線性方程為:y=93.04x+18.264(R2= 0.988 1),其IC50為0.341 mg/mL.說明AG對糖基化抑制效果強于肉蓯蓉多糖,可能是由于制備的多糖含有其他成分,有待于對其進一步分離純化.
圖5 肉蓯蓉多糖和氨基胍(AG)抗糖基化作用Figure 5 Glycosylation effect of CDPS and aminoguanidine
本文采用閃式提取法制備肉蓯蓉多糖,研究了料液比、提取轉(zhuǎn)速、提取時間對其得率的影響,結(jié)果表明,在最佳提取條件下,多糖得率為12.35%;合適的料液比利于閃式提取器攪拌方便,過濃的比例會影響破碎效果;過長提取時間促使不穩(wěn)定化學(xué)成分如蛋白質(zhì)、果膠等雜質(zhì)發(fā)生不可逆變性凝固,同時可能與部分有效成分結(jié)合形成沉淀,影響提取得率.肖道安[19]采用表面活性劑輔助提取肉蓯蓉多糖,最優(yōu)工藝條件下多糖得率為8.17%;熱水浸提[20]和超聲輔助[21]提取肉蓯蓉多糖,其得率分別為6.72%和7.58%.閃式提取得率大約是表面活性劑輔助提取的1.5倍,熱水浸提和超聲輔助的1.83倍和1.63倍,提取時間明顯縮短.因此,閃式提取肉蓯蓉多糖比傳統(tǒng)熱水浸提、超聲輔助和表面活性劑輔助提取得率要高.其機理可能為:依據(jù)內(nèi)外刀產(chǎn)生的剪切作用和負(fù)壓,使目標(biāo)成分多糖在外力作用下被溶劑包圍、解離、溶解,脫離后進入提取溶劑中,達到溶劑濃度平衡;閃式提取可能具有部分超聲波振動作用,對目標(biāo)成分在破碎物料內(nèi)外的溶解平衡產(chǎn)生強力推動作用.
本文采用響應(yīng)面優(yōu)化試驗建立了閃式提取肉蓯蓉多糖工藝的二次多項式數(shù)學(xué)模型,方差分析可知,其模型差異極顯著,獲得方程擬合程度好,對其得率影響的各個因素主次順序為提取轉(zhuǎn)速>料液比>提取時間,最優(yōu)條件為料液比1∶53 (g/mL)、提取轉(zhuǎn)速為5 387 r/min、提取時間60 s,在此條件下,多糖提取平均得率為12.35%.本研究制備的肉蓯蓉多糖在一定濃度范圍內(nèi)對賴氨酸/葡萄糖模擬體系中AGEs具有一定的抑制效果,可為天然來源的AGEs抑制劑研究和開發(fā)提供參考依據(jù).