龍惠萍,石勝良,王成志
(1 廣西醫(yī)科大學, 南寧 530031; 2 廣西醫(yī)科大學第二附屬醫(yī)院; 3 廣西醫(yī)科大學第三附屬醫(yī)院)
阿爾茨海默病(AD)是一種漸進性神經(jīng)退行性疾病,其病理特征主要是老年斑、神經(jīng)原纖維纏結(jié)及神經(jīng)元缺失[1]。細胞自噬、氧化應(yīng)激、炎癥及細胞凋亡等多種因素共同參與了AD的形成[2]。β淀粉樣蛋白(Aβ)過度沉積誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激是AD形成的主要原因之一[3]。此外,氧化應(yīng)激反應(yīng)又可促進Aβ的合成[4]。研究表明,清除活性氧(ROS)對于緩解AD的發(fā)生發(fā)展具有確切的療效[5]。因此,減少Aβ誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激是AD潛在的一種治療策略。目前針對AD的藥物大多數(shù)為緩解性藥物,尚無確切的能逆轉(zhuǎn)AD的藥物。青蒿素(ART)是一種倍半萜內(nèi)酯分子,近年研究發(fā)現(xiàn)其除具有抗瘧疾效用外,ART及其衍生物還具有神經(jīng)保護作用[6]。目前,關(guān)于ART對AD發(fā)病機制中Aβ誘導(dǎo)氧化應(yīng)激的影響尚不明確,相關(guān)研究較少。2018年1月~2019年1月,我們觀察了ART對AD模型細胞活力、氧化應(yīng)激、炎癥因子及自噬的影響,為ART在AD防治中的應(yīng)用提供實驗基礎(chǔ)。
1.1 細胞與主要試劑 BV-2小膠質(zhì)細胞株由首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院饋贈。胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基購自 Gibco 公司;青-鏈霉素雙抗購自碧云天公司;ART、 β淀粉樣蛋白1-42(Aβ1-42)購自Sigma公司;CCK8購自同仁公司;RNA提取試劑盒購自O(shè)MEGA;cDNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和 PCR 試劑盒購自 TAKARA 公司;Cyto-ID細胞自噬檢測試劑盒、Hoechst 33342購自ENZO Life Science;MitoSox Red線粒體超氧化物檢測試劑盒購自Eugene公司;IL-1β、TNF-α、IL-6 ELISA試劑盒購自武漢華美公司。Aβ1-42用二甲基亞楓(DMSO)溶解,用高壓滅菌的雙蒸水稀釋至100 μmol/L。
1.2 細胞培養(yǎng) BV-2 細胞在含有10%胎牛血清,1%青-鏈霉素雙抗的 DMEM 高糖培養(yǎng)基中培養(yǎng),置入37 ℃、5% CO2恒溫細胞孵育箱中。每2天更換培養(yǎng)基1次,當細胞密度達到80%左右進行傳代。取處于對數(shù)生長期的細胞用于實驗。
1.3 ART有效濃度的確定 BV-2細胞(3×103/每孔)接種于96孔板,培養(yǎng)24 h后,加入不同濃度的ART(1、2、4、8、16、32、64 μmol/L)繼續(xù)孵育24 h,采用CCK8法檢測ART對BV-2細胞的毒性,確定后續(xù)實驗所用濃度。通過CCK8法檢測得到ART劑量范圍為0~8 μmol/L時,對細胞無顯著的毒性反應(yīng),因此選擇8 μmol/L作為ART的有效濃度用于后續(xù)實驗。
1.4 細胞分組及干預(yù)方法 將細胞分為正常對照組、Aβ1-42 組、ART組。正常對照組不做處理,Aβ1-42 組加入5 μmol/L的Aβ1-42制備AD細胞模型,ART組入8 μmol/L的ART及5 μmol/L的Aβ1-42,均干預(yù)24 h。
1.5 細胞活力檢測 采用 CCK-8 法。各組細胞培養(yǎng)24 h 后,每個副孔加入10 μL的CCK8試劑并繼續(xù)培養(yǎng)2 h,每組設(shè)6個副孔,用酶標儀測定每孔于450 nm下的吸光度(OD)值。
1.6 氧化應(yīng)激水平檢測 采用MitoSox Red染色法。各組細胞培養(yǎng)24 h時,去掉培養(yǎng)基,根據(jù)說明書加入MitoSox Red和Hoechst 33342的混合液,在37 ℃下避光孵育細胞30 min,PBS洗3次后,使用熒光顯微鏡觀察MitoSox熒光強度并拍照。
1.7 炎癥因子水平檢測 ①采用Real-time PCR檢測各組細胞中TNF-α、IL-1β、IL-6 mRNA水平。各組細胞培養(yǎng)24 h后,參照RNA提取試劑盒說明書提取細胞總RNA,并測定濃度,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,加入上游及下游引物進行PCR反應(yīng)(引物序列見表1)。采用 2-ΔΔct法對數(shù)據(jù)進行相對定量分析。②采用ELISA法檢測各組細胞上清液中TNF-α、IL-1β、IL-6水平。根據(jù)試劑盒說明,先加入50 μL標準品及50 μL待測樣品,然后加入50 μL生物素標記的抗體。用封板膜封板后于37 ℃溫育1 h。再加入親和鏈酶素-HRP,37 ℃溫育30 min,每孔加入底物A、B各50 μL,37 ℃避光顯色10 min,迅速加入50 μL終止液,在450 nm波長處測定各孔的OD值。
表1 引物基本信息
1.8 自噬相關(guān)蛋白表達檢測 ①采用 CYTO-ID染色法檢測自噬體的變化。將細胞接種于放置滅菌處理過的細胞爬片的12孔板中,培養(yǎng)24 h使細胞貼壁生長在爬片上。處理細胞24 h后小心吸掉上清,用PBS洗2次,按 CYTO-ID Autophagy Detection Kit試劑盒說明書加入試劑染色劑CYTO-ID Green和細胞核染色劑Hoechst 33342,于37 ℃避光孵育30 min,再用PBS洗掉多余的染料,置于熒光顯微鏡下觀察 CYTO-ID綠色熒光強度。②采用Real-time PCR法檢測細胞自噬相關(guān)蛋白1(Beacline1)及微管相關(guān)蛋白輕鏈3(LC3) mRNA水平。各組細胞培養(yǎng)24 h后,參照RNA提取試劑盒說明書提取細胞總RNA,并測定濃度,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,加入上游及下游引物進行PCR反應(yīng)(引物序列見表1)。采用 2-ΔΔCt法對數(shù)據(jù)進行相對定量分析。
2.1 各組細胞活力比較 正常對照組、Aβ1-42 組、ART組細胞活力分別為(100.00±5.12)%、(62.50±7.54)%、(88.56±4.57)%。Aβ1-42 組細胞活力低于正常對照組,ART組細胞活力高于Aβ1-42 組(P均<0.05)。
2.2 各組氧化應(yīng)激水平比較 正常對照組、Aβ1-42 組、ART組MitoSOX 熒光強度分別為(100.00±1.42)%、(208.46±4.11)%、(163.55±6.01)%。Aβ1-42 組熒光強度高于正常對照組,ART組熒光強度低于Aβ1-42 組(P均<0.05)。
2.3 各組細胞及上清液中炎癥因子水平比較 Aβ1-42 組細胞及上清液TNF-α、IL-1β及IL-6 水平均高于正常對照組,ART組細胞及上清液TNF-α 、IL-1β及IL-6 水平均低于Aβ1-42 組(P均<0.05)。見表2。
表2 各組細胞及上清液中TNF-α、IL-1β、IL-6水平比較
注:與正常對照組比較,*P<0.05;與Aβ1-42 組比較,﹟P<0.05。
2.4 各組自噬相關(guān)蛋白表達比較 正常對照組、Aβ1-42 組、ART組細胞CYTO-ID綠色熒光強度相對水平分別為100.00%±0.43%、72.0%±5.22%、150.0%±4.90%,Aβ1-42 組的熒光強度低于正常對照組,ART組熒光強度高于Aβ1-42 組(P均<0.05)。Real-time PCR結(jié)果顯示,Aβ1-42組Beacline1、LC3 mRNA表達均低于正常對照組,ART組Beacline1、LC3 mRNA表達均高于Aβ1-42 組(P均<0.05)。見表3。
表3 各組細胞Beacline1、LC3 mRNA表達比較
注:與正常對照組比較,*P<0.05;與Aβ1-42 組比較,﹟P<0.05。
AD是一種慢性進行性神經(jīng)系統(tǒng)退行性病變,主要表現(xiàn)為進行性認知功能障礙和行為異常。細胞外Aβ的異常聚集是AD 的主要病理特點,是老年斑的組成成分之一。此外,異常積累的 Aβ還可導(dǎo)致線粒體功能異常,如能量代謝紊亂、氧化應(yīng)激等。在氧化應(yīng)激中,ROS的過量產(chǎn)生通過多種途徑損害各種生物分子的結(jié)構(gòu)和功能,如蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和DNA[7]。研究表明,在AD 的發(fā)生發(fā)展過程中 Aβ與氧化應(yīng)激有密切的關(guān)系[8],Aβ的沉積誘導(dǎo)氧化應(yīng)激的產(chǎn)生,氧化應(yīng)激反應(yīng)也可促進 Aβ的合成,兩者相互促進,導(dǎo)致神經(jīng)細胞損害和功能失調(diào)的惡性循環(huán)[7]。隨著對抗氧化應(yīng)激機制的深入研究,抗氧化劑在AD臨床前期治療取得了一定的成功。目前常用的抗氧化劑包括硒、輔酶Q10、維生素C、維生素E。盡管目前基礎(chǔ)研究取得了很大的進展,但AD的發(fā)病機制尚未得到明確的解釋,缺乏有效的治療方法。基于ART對神經(jīng)細胞的保護作用,表明其可能對 AD 有潛在的治療作用。本研究對ART對AD模型細胞活力、氧化應(yīng)激、炎癥因子及自噬的影響進行了實驗驗證。
ART是從黃花蒿莖葉中提取的有過氧基團的倍半萜內(nèi)酯。其被廣泛用于瘧疾的治療,此外還有抗寄生蟲、抗炎、抗腫瘤、抗氧化、保護血腦屏障和免疫調(diào)節(jié)的作用[6, 9]。近年研究發(fā)現(xiàn),ART在 AD 細胞模型中可抑制 Aβ1-42的產(chǎn)生[9]。ART可通過抑制 NF-κB 活性和 NALP3炎性體活化,延緩 APPswe /PS1dE9 轉(zhuǎn)基因小鼠的Aβ沉積進程[10]。研究還發(fā)現(xiàn) ,ART 對神經(jīng)細胞 PC12 具有營養(yǎng)和保護作用[11],表明ART對 AD 有潛在的治療作用。本研究發(fā)現(xiàn),Aβ1-42組細胞活力低于正常對照組,而ART組的細胞活力高于Aβ1-42組,提示ART能改善Aβ1-42對BV-2細胞活性的抑制;Aβ1-42 組熒光強度高于正常對照組,ART組熒光強度低于Aβ1-42 組,表明ART能改善Aβ1-42誘導(dǎo)的BV-2細胞的氧化應(yīng)激水平。
自噬是廣泛存在于真核細胞中維持細胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的過程[12]。自噬途徑可以降解功能受損的細胞器及異常聚集的蛋白質(zhì)。炎癥反應(yīng)是一種保護性反應(yīng),過度的炎癥反應(yīng)則會導(dǎo)致組織損傷和疾病;而自噬可通過降解DNA、活性氧族等內(nèi)源性刺激來抑制炎性小體聚集,降解IL-1β前體從而抑制IL-1β等促炎因子的分泌。研究表明,AD轉(zhuǎn)基因小鼠腦內(nèi)mTOR表達升高,細胞自噬啟動受阻,Aβ沉積增多[13],但給小鼠腦內(nèi)注射mTOR的抑制劑,激活細胞自噬后,Aβ沉積減少,而且小鼠認知水平也提高。Beclin1的表達是自噬體啟動的標志物,轉(zhuǎn)基因AD小鼠腦內(nèi) Beclin1表達水平下降,Aβ沉積增加[14]。還有研究表明,Aβ1-42能抑制PC-12細胞的自噬水平[3]。本研究發(fā)現(xiàn),Aβ1-42組的細胞及上清液中炎癥因子水平均比正常對照組高,而ART組的炎癥因子較Aβ1-42組的低,表明ART抑制了Aβ1-42所致的BV-2細胞炎癥因子水平增加;Aβ1-42組CYTD-ID 綠色熒光強度較正常對照組減弱,且Beacline1、LC3 mRNA表達水平低于正常對照組,但ART組的熒光強度及Beacline1、LC3 mRNA表達水平高于正常對照組及Aβ1-42組,表明ART激活了細胞的自噬水平。
綜上所述,ART能提高AD模型細胞的活性,抑制細胞氧化應(yīng)激及炎癥因子分泌,其機制可能與ART增加自噬激活有關(guān),這為ART應(yīng)用于AD早期炎癥及氧化應(yīng)激反應(yīng)的防治提供了一定實驗基礎(chǔ)和理論依據(jù)。但本實驗僅為體外實驗結(jié)果,且只選取了單一濃度,后續(xù)有待進一步選取多個濃度在體內(nèi)外實驗中進行驗證。