李元元,楊蒙迪,曹紅星,李新國(guó)*
(1.中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院椰子研究所,海南 文昌 571339;2.海南大學(xué)熱帶農(nóng)林學(xué)院, 海南 海口 570228)
【研究意義】油棕(ElaeisguineensisJacq.)屬棕櫚科多年生的熱帶木本油料作物,每公頃產(chǎn)油量高達(dá)6~8 t,被稱為“世界油王”[1]。根據(jù)其果實(shí)的結(jié)構(gòu)和含油量不同,油棕分為厚殼種Dura,無殼種Pisifera和薄殼種Tenera三類[2]。不同植物種類的花粉在長(zhǎng)期的進(jìn)化過程中,經(jīng)過不斷演化和發(fā)展往往形成獨(dú)特的形態(tài)特征[3-4]。植物的花粉作為較為保守的繁殖器官的一部分,其結(jié)構(gòu)由物種的基因所決定,受環(huán)境影響很小[5-6],其形態(tài)特征具有很強(qiáng)的遺傳性,是研究植物演化和分類的重要依據(jù)之一[7]?;ǚ鄞笮?、形狀、對(duì)稱性和極性,花粉萌發(fā)孔的數(shù)量、結(jié)構(gòu)和位置,花粉壁的結(jié)構(gòu)以及表面雕紋等,可為植物系統(tǒng)發(fā)育的研究提供科學(xué)依據(jù)[8]。電子顯微鏡能夠?qū)ξ⒂^特征包括花粉萌發(fā)孔和溝的位置、數(shù)目以及外壁結(jié)構(gòu)、雕紋式樣等方面的細(xì)微差異進(jìn)行觀察,從而為某些疑難類群的分類劃界和系統(tǒng)定位提供了頗有價(jià)值的信息[9]?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】目前,利用SEM觀察植物花粉形態(tài)的研究已有很多,如“黃金蜜柚”[10]、薄殼山核桃[11]、獼猴桃[12]、油茶[13-14]、大戟科不同屬不同種植物[15]等。20世紀(jì)80年代,已有學(xué)者對(duì)國(guó)產(chǎn)棕櫚科的花粉形態(tài)進(jìn)行研究[16]。但對(duì)油棕花粉微觀形態(tài)結(jié)構(gòu)的研究少見報(bào)道。MYB(myeloblastosis)蛋白在植物生理代謝和發(fā)育過程中廣泛地參與調(diào)節(jié)[17-18]。AtMYB125/DUO1是一個(gè)控制雄性生殖細(xì)胞分裂和分化的花粉特異因子[19]。GPI的生物合成也是花粉萌發(fā)和花粉管生長(zhǎng)所必需的[20]。但在油棕的花粉萌發(fā)過程中有關(guān)MYB及GPI等相關(guān)基因的研究還少見報(bào)道?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】本研究通過對(duì)3種類型油棕花粉形態(tài)的掃描電鏡觀察及對(duì)花粉萌發(fā)前后相關(guān)基因的表達(dá)分析?!緮M解決的關(guān)鍵問題】可以為油棕的品種鑒定、系統(tǒng)分類和從分子水平上揭示了花粉萌發(fā)的調(diào)控機(jī)制等奠定理論基礎(chǔ)。
本試驗(yàn)的油棕花粉來源于海南省文昌市的中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院椰子研究所油棕資源圃內(nèi)的厚殼種Dura、薄殼種Tenera和無殼種Pisifera等3種。
1.2.1 花粉采集及SEM觀察 2017年9-10月,采摘3種果殼類型的油棕雄花序并在采摘當(dāng)天帶回實(shí)驗(yàn)室,輕輕將花粉抖落在鋪有硫酸紙的實(shí)驗(yàn)臺(tái)上,再將花粉進(jìn)行過篩處理,篩孔徑為0.1 mm。將過篩處理后的花粉在38 ℃烘箱中干燥36 h,隨后花粉用干燥好的離心管等密封容器盛放保存在-20 ℃冰箱內(nèi)備用[21]。
將干燥后的供試花粉粒分別用牙簽均勻彈在黏有雙面導(dǎo)電膠的金屬載臺(tái)上,放入SBC-12型離子濺射儀中噴金,然后置于德國(guó)ZEISS掃描電子顯微鏡下觀察,選取典型的花粉粒進(jìn)行拍照。用CAD軟件測(cè)量花粉粒大小,每種花粉粒測(cè)量10粒,求平均值,并計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)差。
1.2.2 總RNA的提取及cDNA第1鏈的合成 利用柱式植物總RNA抽提純化試劑盒進(jìn)行總RNA的提取。采用Takara試劑盒,將mRNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第1條鏈。
1.2.3 qRT-PCR 本研究運(yùn)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)測(cè)定一些基因在3種果殼類型油棕花粉萌發(fā)前后及授粉后不同時(shí)間點(diǎn)的油棕雌花中的相對(duì)表達(dá)量,選擇穩(wěn)定性較好的看家基因Actin作為內(nèi)參基因(表1)。
以上引物均委托廣州天一輝遠(yuǎn)基因科技有限公司合成。
10 μl反應(yīng)體系含有5.0 μl SYBR?Select Master Mix、0.5 μl Primer(F)、0.5 μl Primer(R)、1.0 μl(100 ng/μl)cDNA、3.0 μl ddH2O。
應(yīng)用SAS(Statistical Analysis System)軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析, 采用鄧肯氏新復(fù)極差檢驗(yàn)法進(jìn)行多重比較,在α=0.01水平進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)。
2.1.1 大小與形態(tài)結(jié)構(gòu) 由圖1~3可知,3種類型的油棕花粉形態(tài)非常相似,均以單粒形式存在,形狀為邊緣光滑的近正三角形。厚殼種花粉的平均邊長(zhǎng)為32.86 μm,薄殼種的為32.51 μm,無殼種的為33.87 μm,差異不顯著(表2)。
2.1.2 外壁紋飾與萌發(fā)孔溝 3種果殼類型的油棕花粉外壁均具網(wǎng)脊,屬于細(xì)網(wǎng)狀紋飾,網(wǎng)眼成淺穴狀或兼具不規(guī)則小穿孔,萌發(fā)孔周圍的網(wǎng)狀紋飾較稀疏。具3條大致沿正三角形3個(gè)頂角的角平分線方向分布的孔溝。由圖1~3可以看出,薄殼種花粉形態(tài)與厚殼種和無殼種的不同,薄殼種背部網(wǎng)紋較平滑,而厚殼種和無殼種的凸起。
表1 所測(cè)引物及序列
圖1 厚殼種Dura花粉形態(tài)Fig.1 Pollen morphology of Dura
圖2 薄殼種Tenera花粉形態(tài)Fig.2 Pollen morphology of Tenera
圖3 無殼種Pisifera花粉形態(tài)Fig.3 Pollen morphology of Pisifera
不同果殼類型的油棕花粉萌發(fā)前后qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果如圖4~6所示,同種基因在不同果殼類型的油棕花粉中表達(dá)情況不同,GPI-anchored基因在3種果殼類型的花粉中均有表達(dá),且萌發(fā)3 h后表達(dá)量均下降,即該基因?yàn)橄抡{(diào)表達(dá),但下降幅度不同。MYB基因在萌發(fā)前的3種果殼類型花粉中均有表達(dá),但萌發(fā)3 h后卻只在厚殼種花粉中檢測(cè)到表達(dá),且為下調(diào)表達(dá)。MYB(x3)基因在萌發(fā)前后的3種果殼類型油棕花粉中均檢測(cè)到表達(dá),但表達(dá)情況不同,厚殼種中萌發(fā)前后表達(dá)量相同,薄殼種中為下調(diào)表達(dá),無殼種中為上調(diào)表達(dá)。
表2 3種果殼類型的油棕花粉大小
圖4 GPI-anchored基因在3種果殼類型油棕的萌發(fā)前后花粉中的表達(dá)情況Fig.4 Relative expression of GPI-anchored gene in pollen grains of 3 different types of oil palm before and after germination
圖5 MYB基因在3種果殼類型油棕的萌發(fā)前后花粉中的表達(dá)情況Fig.5 Relative expression of MYB gene in pollen grains of 3 different types of oil palm before and after germination
孢粉學(xué)是研究植物的孢子、花粉(簡(jiǎn)稱孢粉)的形態(tài)、分類及其在各個(gè)領(lǐng)域中應(yīng)用的一門科學(xué),它作為植物進(jìn)化中古老的學(xué)科,在揭示物種進(jìn)化上能提供穩(wěn)定、有效的證據(jù)[22]?;ǚ鄣男螒B(tài)特征不受外界條件影響,而受植物基因型控制,具有固定的形態(tài)結(jié)構(gòu),是探討植物起源、演化及親緣關(guān)系的重要特征之一[23]。為植物的系統(tǒng)分類與親緣關(guān)系鑒定等方面提供了重要依據(jù)[24]。
然而,在利用掃描電鏡觀察花粉形態(tài)特征的試驗(yàn)中,樣品制取方法卻不盡相同。原則上,我們要求試驗(yàn)材料保持其本來面目,故理論上用新鮮花粉直接觀察最好,但采集新鮮花粉直接觀察,在人力和物力上也存在困難;因而,在采用電鏡進(jìn)行花粉觀察之前,必須選擇適當(dāng)?shù)姆椒▽⒒ǚ奂右员4?,分批采樣、集中保存、集中觀察[25]。Priambodo等研究了3種類型的油棕花粉形態(tài)和蛋白質(zhì)特性[26],認(rèn)為油棕花粉形態(tài)為近似三角形。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)3種果殼類型的花粉粒均以單粒形式存在且其形態(tài)相似,均為邊緣光滑的近正三角形,邊長(zhǎng)在29.70~37.68 μm之間,具3條萌發(fā)孔溝,外壁紋飾均為細(xì)網(wǎng)紋狀,萌發(fā)器官形態(tài)較為一致,充分反映了油棕物種的自然屬性。
圖6 MYB(x3)基因在3種果殼類型油棕的萌發(fā)前后花粉中的表達(dá)情況Fig.6 Relative expression of MYB (x3) gene in pollen grains of 3 different types of oil palm before and after germination
qRT-PCR技術(shù)是一種很好的檢測(cè)基因表達(dá)的方法,通過該技術(shù)可以分析植物在不同處理?xiàng)l件下基因樣本的表達(dá)差異,也可以分析植物在不同生長(zhǎng)發(fā)育時(shí)期基因表達(dá)的差異[27]。趙和文等運(yùn)用qRT-PCR技術(shù),通過觀察與褐化相關(guān)基因PPO和PAL在組織培養(yǎng)過程中不同時(shí)期的表達(dá)量及蝴蝶蘭組培苗培養(yǎng)不同階段中2個(gè)基因的表達(dá)差異研究,得出2個(gè)基因在培養(yǎng)的第12天表達(dá)量都達(dá)到最高,說明此時(shí)是褐化發(fā)生的關(guān)鍵時(shí)期,若此時(shí)期對(duì)其進(jìn)行有效預(yù)防措施,將會(huì)減少褐化現(xiàn)象[28]。劉霞宇等運(yùn)用qRT-PCR研究出金銀花花器官基因表達(dá)時(shí)可選用的內(nèi)參基因[29]。本研究發(fā)現(xiàn)同種基因在不同果殼類型中的表達(dá)情況是不同的,變化趨勢(shì)有的也不一致,也許是不同類型間的差異所致,也可能是因天氣或取樣情況的不同引起的。同種基因在不同果殼類型油棕的萌發(fā)前后花粉和授粉前后雌花中的表達(dá)情況不同,可知該基因在不同果殼類型的油棕中具有不同的作用。GPI-anchored在3種果殼類型萌發(fā)前后的油棕花粉中均有表達(dá),且萌發(fā)后于萌發(fā)前為下調(diào)表達(dá);MYB在萌發(fā)前的3種類型的花粉中均表達(dá),但萌發(fā)后僅厚殼種中有表達(dá)。MYB(x3)在3種果殼類型萌發(fā)前后的油棕花粉中均有表達(dá),厚殼種中萌發(fā)前后相對(duì)表達(dá)量相同,薄殼種中萌發(fā)后于萌發(fā)前為下調(diào)表達(dá),無殼種中萌發(fā)后于萌發(fā)前為下調(diào)表達(dá)。
本研究用于掃描電鏡觀察的花粉僅進(jìn)行了干燥處理,未用其他化學(xué)藥品進(jìn)行處理,用于測(cè)量大小的花粉個(gè)數(shù)偏少。對(duì)萌發(fā)前后基因的表達(dá)情況也是通過查閱別人在其他作物上報(bào)道的基因,在油棕中通過BLAST比對(duì)獲得,因此對(duì)以上幾個(gè)基因在花粉萌發(fā)前后的作用仍需進(jìn)一步研究。