段效輝,張群,李金慶,劉鵬,王文雯,王穎
(1.煙臺(tái)出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心,山東煙臺(tái)264000;2.濟(jì)南出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心,山東濟(jì)南250000)
海洋環(huán)境的特異性帶來了海洋微生物在物種和生態(tài)功能上的多樣性,其中的發(fā)光細(xì)菌就是一類在正常的生理?xiàng)l件下能夠發(fā)射可見熒光(熒光波長(zhǎng)在450 nm~490 nm)的細(xì)菌,該類細(xì)菌在黑暗處肉眼可辨[1]。近年來,學(xué)者根據(jù)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度的變化與外來受試物的毒性大小有一定相關(guān)性,在各種環(huán)境監(jiān)測(cè)中把發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度作為測(cè)定環(huán)境中有毒物質(zhì)的指標(biāo),與其它檢測(cè)方法相比具有快速、靈敏、操作簡(jiǎn)便、成本低廉等優(yōu)點(diǎn),近年來已被廣泛應(yīng)用于水環(huán)境生物毒素檢測(cè)[2-3],環(huán)境樣品毒性測(cè)試[4-6],食品安全性檢測(cè)[7],致癌物質(zhì)生物毒性檢測(cè)[8]等方面。
百菌清是一種廣譜性殺菌劑,有多重劑型,近年來在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中得到廣泛應(yīng)用。由于其對(duì)植物體具有的良好黏著特性,且本身降解速度較慢,而大量殘留于果蔬、土壤以及水環(huán)境中[9-10]。百菌清在環(huán)境中的累積效應(yīng),可對(duì)魚類、鳥類等動(dòng)物產(chǎn)生高毒性,也可對(duì)人類的內(nèi)分泌系統(tǒng)造成較大干擾[11]。
目前氣相色譜法和液相色譜法是用于百菌清檢測(cè)的兩種主要方法,但由于方法前處理復(fù)雜、需要儀器昂貴等原因,而使得其應(yīng)用具有一定的局限性[12-14]。
發(fā)光細(xì)菌對(duì)污染物生物毒性的高度敏感和易于檢測(cè),使發(fā)光細(xì)菌分析法成為一種簡(jiǎn)便、靈敏、快速的急性毒性檢測(cè)方法。目前國(guó)內(nèi)外發(fā)光細(xì)菌法大多用來監(jiān)測(cè)環(huán)境、土壤、水質(zhì)等的急性毒性,用于食品中多菌靈、氯霉素等農(nóng)獸藥殘留的檢測(cè)及毒性評(píng)價(jià)也得到一定發(fā)展[15]。
本文從海洋生物中篩選對(duì)百菌清敏感的發(fā)光細(xì)菌,同時(shí)利用形態(tài)學(xué)觀察、16S rDNA 序列測(cè)定、限制片段長(zhǎng)度多態(tài)性(amplified ribosome DNA restriction analysis,ARDRA)分析、構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹等方法,對(duì)從青島海域新鮮海魚中分離純化得到的發(fā)光細(xì)菌進(jìn)行形態(tài)、分子鑒定及分類地位分析,為后續(xù)開展海洋發(fā)光細(xì)菌檢測(cè)百菌清方法的建立奠定基礎(chǔ)。
發(fā)光細(xì)菌固體培養(yǎng)基:甘油3 mL,酵母粉5 g,胰蛋白胨5 g,碳酸鈣1 g,瓊脂20 g,陳海水1 000 mL,pH7.8~8.0,121 ℃滅菌20 min。
發(fā)光細(xì)菌液體培養(yǎng)基:酵母粉5 g,胰蛋白胨5 g,氯化鈉30 g,磷酸氫二鈉5 g,磷酸二氫鉀1 g,甘油3 mL,pH 7.6,121 ℃滅菌20 min。
海水2216E 瓊脂斜面培養(yǎng)基:蛋白胨5 g,酵母粉1 g,磷酸鐵0.01 g,瓊脂20 g,陳海水1 000 mL,pH 7.6,121 ℃滅菌20 min。
金黃色葡萄球菌(ATCC25923):煙臺(tái)出入境檢驗(yàn)檢疫局檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心動(dòng)植物檢疫實(shí)驗(yàn)室購(gòu)買并保存。
27F 和1492R 16S rDNA 序列上下游引物、DNA Marker、Ex Taq 酶及限制性內(nèi)切酶AfaⅠ、MspⅠ:寶生物工程(大連)有限公司;GoTaqGreen Master Mix 溶液:美國(guó)普洛麥格(Promega)公司;革蘭氏染色試劑盒:北京陸橋技術(shù)股份有限公司;Epgradient PCR 擴(kuò)增儀:德國(guó)艾本德(Eppendorf)股份公司;Universal Hood Ⅱ凝膠成像儀:美國(guó)伯樂(Bio-Rad)公司;ALB128 金屬?。好绹?guó)賽默飛世爾科技公司(Thermo Fisher Scientific);Centrifuge 5417R 高速冷凍離心機(jī):德國(guó)艾本德(Eppendorf)股份公司;SPARK 10M 酶標(biāo)儀:美國(guó)帝肯(TECAN)貿(mào)易有限公司。
將青島市前灣漁碼頭新鮮捕獲的海魚,于無菌環(huán)境下,用無菌3%NaCl 溶液沖洗魚體表雜物后,用滅菌鑷子、解剖刀分別采集5 片~6 片魚鱗、全部魚鰓、大部分魚腸(用解剖刀剖開魚腸,使內(nèi)容物可以流出),然后分別放入含有玻璃珠的45 mL 無菌3%NaCl 溶液,并置于渦旋震蕩器上振蕩2 min~3 min,充分混勻后放置于無菌超凈臺(tái)中備用。在無菌超凈臺(tái)中,用移液槍向傾注有發(fā)光細(xì)菌固體培養(yǎng)基的平板中注入800 μL 3%NaCl 溶液,分別吸取混勻后的200 μL 魚鱗、魚鰓、魚腸懸液同樣注入到平板培養(yǎng)基中,再用涂布棒涂布均勻,一式兩份,做好標(biāo)記。將處理好的平板放入28 ℃培養(yǎng)箱中,倒置培養(yǎng),直到有菌落生成,取出,置于暗室觀察,對(duì)發(fā)出熒光的菌落做好標(biāo)記,編號(hào)。用接種針挑取標(biāo)記好的發(fā)光菌落,進(jìn)行連續(xù)劃線接種,直到得到可在暗室發(fā)出熒光的純菌落。
1.4.1 百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌生長(zhǎng)的影響
采用杯碟法篩選生長(zhǎng)特性對(duì)百菌清敏感的海洋發(fā)光細(xì)菌。分離到的海洋發(fā)光細(xì)菌接種于2216E 平板,于28 ℃培養(yǎng)24 h 后,以無菌生理鹽水制成均勻懸液,至OD600nm=0.5,約106CFU/mL。吸取菌懸液0.2 mL 涂布于2216E 平板,靜置1 min 后,放置4 個(gè)滅菌的牛津杯于平板上,每個(gè)牛津杯間隔一定的距離。將其中3個(gè)牛津杯中加入濃度為5 mg/L 的百菌清溶液100 μL,最后一個(gè)加入無菌水100 μL 做對(duì)照。將平板小心放置于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h,觀察記錄抑菌圈直徑大小。根據(jù)美國(guó)臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)藥物敏感性試驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn),判斷菌株對(duì)百菌清的敏感程度。抑菌圈直徑越大,則發(fā)光細(xì)菌生長(zhǎng)對(duì)百菌清的敏感性越強(qiáng)。
1.4.2 百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度的影響
制備不同濃度的百菌清溶液,分別與過夜培養(yǎng)的發(fā)光細(xì)菌懸液反應(yīng),以酶標(biāo)儀測(cè)定百菌清作用前后發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度,計(jì)算發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光抑制效率,抑制率高,則敏感性好。按照下面的公式計(jì)算百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光抑制效率:
式中:X為發(fā)光抑制效率,%;Kc為未添加百菌清溶液中發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度;Kt為待測(cè)溶液中發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度。
發(fā)光抑制效率越大,則發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光對(duì)百菌清的敏感性越強(qiáng)。
1.5.1 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)模板的制備
取過夜培養(yǎng)的發(fā)光細(xì)菌菌懸液3 μL 轉(zhuǎn)入裝有100 μL 滅菌雙蒸水的1.5 mL 離心管中,在99 ℃水浴10 min,10 000 g 離心10 min,冷卻后取上清液作為PCR 反應(yīng)模板。
1.5.2 16S rDNA PCR 擴(kuò)增
發(fā)光細(xì)菌16S rDNA PCR 擴(kuò)增所用引物為細(xì)菌16S rDNA 通用引物,上游引物27F:5’-AG
AGTTTGATCCTGGCTCAG-3’;下游引物1492R:5’-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3’。
PCR 反應(yīng)體系(25 μL)為:GoTaq Green Master Mix 12.5 μL,上游引物27F 1 μL,下游引物1492R 1 μL,模板DNA 2.5 μL,ddH2O 8 μL。PCR 反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性3 min,94 ℃變性1 min,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,30 個(gè)循環(huán),72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物用1.5%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。
采用兩種限制性內(nèi)切酶Afa I、Msp I 對(duì)發(fā)光細(xì)菌16S rDNA PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物片段進(jìn)行同步雙酶切,酶切反應(yīng)體系(20 μL)為:PCR產(chǎn)物8 μL,內(nèi)切酶各1 μL,10×Buffer 2 μL,0.1%BSA 2 μL,去離子水6 μL。37 ℃恒溫3 h 后,酶切產(chǎn)物加2 μL 10×loading Buffer 終止反應(yīng)。取酶切產(chǎn)物10 μL 用2.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
16S rDNA PCR產(chǎn)物經(jīng)純化后測(cè)序。測(cè)序所得基因序列提交到NCBI 網(wǎng)站(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov)進(jìn)行Blast 比對(duì)。采用MEGA 5.05 軟件以Neighborjoining 統(tǒng)計(jì)方法自展1 000 次進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建。
經(jīng)分離純化培養(yǎng)后共獲得17 株發(fā)光細(xì)菌見表1。
表1 發(fā)光細(xì)菌在魚體寄生部位Table 1 Parasitic position of luminous bacteria in fresh sea fish
17 株細(xì)菌均在暗室中發(fā)出明亮的藍(lán)綠色可見光,具有發(fā)光特性;革蘭氏陰性菌;在發(fā)光固體培養(yǎng)基上菌落為圓形類似饅頭狀,表面光滑濕潤(rùn),邊緣整齊或呈鋸齒狀;油鏡下觀察,呈桿狀或弧狀。在魚鱗、魚鰓和魚腸中均分離獲得發(fā)光細(xì)菌。其中生物體腸道內(nèi)分離獲得發(fā)光細(xì)菌數(shù)量相對(duì)較多,是分離發(fā)光細(xì)菌的重要資源。
有毒有害物質(zhì)對(duì)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光的影響可分為通過細(xì)胞質(zhì)毒性抑制細(xì)胞代謝過程和直接抑制參與發(fā)光反應(yīng)的酶的活性兩種方式[16]。本部分從生長(zhǎng)和發(fā)光兩方面測(cè)定發(fā)光細(xì)菌對(duì)百菌清的敏感特性。
2.2.1 百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌生長(zhǎng)的影響
根據(jù)我國(guó)食品中農(nóng)藥最大殘留限量規(guī)定[17],菠菜、黃瓜等蔬菜以及西瓜、甜瓜中百菌清限量一般為5 mg/L,而日本果蔬農(nóng)殘限量標(biāo)準(zhǔn)中,百菌清在葉菜中的殘留要求在1 mg/L~6 mg/L。本試驗(yàn)遂選取濃度為5 mg/L 的百菌清溶液利用杯碟法從分離得到的17 株發(fā)光細(xì)菌中篩選百菌清敏感株。根據(jù)美國(guó)臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(CLSI)標(biāo)準(zhǔn)與指南,大多數(shù)情況下,抑菌圈直徑在13 mm 以上的情況,說明菌株對(duì)該抗生素敏感。試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),百菌清可抑制多株發(fā)光細(xì)菌的生長(zhǎng),排除重復(fù)分離株,有6株發(fā)光細(xì)菌的抑菌圈直徑超過了13 mm,抑菌圈直徑最高可達(dá)25 mm,較低的一株Ft-2-1 也在16 mm,具體結(jié)果見表2。
表2 百菌清對(duì)菌株生長(zhǎng)的影響Table 2 Influence of chlorothalonil to the growth of each strain
2.2.2 百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度的影響
發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度能夠在一定濃度范圍內(nèi)對(duì)某些有害物質(zhì)呈現(xiàn)一定比例關(guān)系,是用于有害因子檢(監(jiān))測(cè)的重要依據(jù)。制備不同濃度的百菌清溶液,與發(fā)光細(xì)菌反應(yīng),測(cè)定百菌清溶液對(duì)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度的抑制情況,測(cè)定發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光對(duì)百菌清的敏感特性,結(jié)果見圖1。
結(jié)果顯示,對(duì)百菌清具有生長(zhǎng)敏感特性的6株發(fā)光細(xì)菌,其發(fā)光強(qiáng)度也受到百菌清不同程度的影響,但不具備一一對(duì)應(yīng)關(guān)系。其中抑菌圈直徑相對(duì)較低的菌株Ft-2-1,其發(fā)光強(qiáng)度受到百菌清較大影響,65%以上的發(fā)光強(qiáng)度被抑制。相反的,抑菌圈直徑最大的菌株Fc-12-1-1,其發(fā)光抑制效率都小于20%,菌株Fw-1-1 也表現(xiàn)出類似特性。菌株Fc-12-2 和Fc-14-1-1 在較強(qiáng)的生長(zhǎng)敏感性的同時(shí)也表現(xiàn)出較好的發(fā)光敏感性,其發(fā)光抑制率都達(dá)到了60%。在6株發(fā)光細(xì)菌中,菌株Ff-2-2 對(duì)百菌清的敏感特性較穩(wěn)定,同時(shí)具備了生長(zhǎng)和發(fā)光敏感特征,且其發(fā)光強(qiáng)度同百菌清濃度呈現(xiàn)較好的線性比例關(guān)系。
圖1 百菌清對(duì)菌株發(fā)光強(qiáng)度的影響Fig.1 Influence of chlorothalonil to the fluorescence intensity of each strain
研究表明,每一個(gè)菌種的16S rDNA 限制片段長(zhǎng)度多態(tài)性類型都有一個(gè)獨(dú)特的酶切圖譜,代表了一個(gè)操作分類單位(即OTU),用16S rDNA 序列進(jìn)行ARDRA 分析可以區(qū)分出細(xì)菌種的差異[18],該技術(shù)在微生物生態(tài)學(xué)領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用。本部分選用限制性內(nèi)切酶AfaⅠ和MspⅠ對(duì)6株百菌清敏感發(fā)光細(xì)菌16S rDNA 的PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行雙酶切分析,其結(jié)果見圖2。
圖2 16S rDNA PCR產(chǎn)物ARDRA 分析圖譜Fig.2 ARDRA analysis maps of 16S rDNA PCR products
根據(jù)圖2 中的限制性酶切圖譜,6株菌株共分為3個(gè)不同的OTUs,其中OTU1 包括菌株Ft-2-1、Fc-12-1、Fc-14-1-1 和Fc-12-2,OTU2 僅有菌株Ff-2-2,OTU3 僅有菌株Fw-1-1。
發(fā)光細(xì)菌的16S rDNA 序列測(cè)定結(jié)果如表3所示。
表3 6株發(fā)光細(xì)菌的16S rDNA 序列相似性比較Table 3 Similarity of 16S rDNA sequences from 6 luminous bacteria
結(jié)合形態(tài)學(xué)鑒定結(jié)果及試驗(yàn)菌株16S rDNA 序列的最高相似性可得知,6株百菌清敏感發(fā)光細(xì)菌分別為費(fèi)氏弧菌(Vibrio fischeri)、黑美人弧菌(Vibrio nigripulchritudo)、長(zhǎng)牡蠣弧菌(Vibrio crassostreae)、依氏假交替單胞菌(Pseudoalteromonas issachenkonii)、明亮發(fā)光桿菌(Photobacterium phosphoreum)、Vibrio toranzoniae。
6株發(fā)光細(xì)菌系統(tǒng)發(fā)育樹分析結(jié)果如圖3顯示。
6株發(fā)光菌株分別與Vibrio fischeri、Vibrio nigripulchritudo、Vibrio crassostreae、Pseudoalteromonas is-sachenkonii、Photobacterium phosphoreum、Vibrio toranzoniae具有最近的親緣關(guān)系,其中菌株Fc-12-1-1、Fc-14-1-1、Ft-2-1、Fc-12-2 親緣關(guān)系較近,這與16S rDNA序列ARDRA 分析相一致。菌株Ff-2-2 與Fw-1-1 雖然ARDRA 分析結(jié)果顯示兩者分屬于兩個(gè)分類單位,但系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果顯示二者親緣關(guān)系也較為接近,這可能與本研究中選擇的限制性內(nèi)切酶有關(guān)[18-19]。
圖3 6株發(fā)光細(xì)菌的16S rDNA 序列系統(tǒng)發(fā)育樹分析結(jié)果Fig.3 Phylogenetic tree analysis results of 16S rDNA sequences from 6 luminous bacteria
從青島海域新鮮海魚的魚鱗、魚鰓、魚腸中分離獲得17 株海洋發(fā)光細(xì)菌,從生長(zhǎng)和發(fā)光兩個(gè)方面研究了發(fā)光細(xì)菌對(duì)百菌清的敏感特性。利用形態(tài)學(xué)觀察、16S rDNA 序列測(cè)定、ARDRA 分析、構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹等方法,對(duì)分離純化得到的發(fā)光細(xì)菌進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育地位分析。確定了6株百菌清敏感發(fā)光細(xì)菌及其分類地位。
根據(jù)美國(guó)臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(CLSI)標(biāo)準(zhǔn)與指南,抑菌圈直徑在13 mm 以上時(shí)表明微生物對(duì)該抗生素敏感。本文篩選的6株發(fā)光細(xì)菌受百菌清的抑制,抑菌圈直徑在16 mm~25 mm 之間,對(duì)百菌清表現(xiàn)出較好的敏感特性。6株發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度也受到百菌清不同程度的影響,但與生長(zhǎng)敏感特性不呈現(xiàn)正比例關(guān)系。其中,菌株Fc-12-1-1 受百菌清抑制,抑菌圈高達(dá)25 mm,而其發(fā)光強(qiáng)度則最高僅被抑制約20%,而菌株Ft-2-1 的抑菌圈直徑在16 mm,對(duì)百菌清的生長(zhǎng)敏感特性明顯低于菌株Fc-12-1-1,其發(fā)光強(qiáng)度則被抑制65%以上,大大高于百菌清對(duì)菌株Fc-12-1-1 的發(fā)光抑制。這一結(jié)果說明,百菌清對(duì)發(fā)光細(xì)菌發(fā)光的抑制效應(yīng)并不是主要通過抑制生長(zhǎng)來產(chǎn)生的。這很可能是由于百菌清直接抑制參與發(fā)光反應(yīng)的酶的活性而不是通過細(xì)胞質(zhì)毒性抑制細(xì)胞代謝過程[16]。
分離的6株百菌清敏感海洋發(fā)光細(xì)菌,4 株屬于弧菌屬,分別是Vibrio fischeri、Vibrio nigripulchritudo、Vibrio crassostreae和Vibrio toranzoniae,另2株分別屬于假單胞菌屬(Pseudoalteromonas issachenkonii)和發(fā)光桿菌屬(Photobacterium phosphoreum)。其中,Vibrio fischeri(費(fèi)氏弧菌)已作為水質(zhì)急性毒性監(jiān)測(cè)指標(biāo)微生物在水質(zhì)安全監(jiān)控中發(fā)揮了重要作用[20-21],Photobacterium phosphoreum(明亮發(fā)光桿菌)以及Photobacterium leiognathi(鰒發(fā)光桿菌)也在食品安全檢測(cè)中得到了一定的應(yīng)用[15,22]。但此次分離的所有發(fā)光細(xì)菌,都未見有報(bào)道用于百菌清檢(監(jiān))測(cè)的應(yīng)用,有益的補(bǔ)充了用于食品安全檢(監(jiān))測(cè)的發(fā)光細(xì)菌菌株資源。
用于食品安全檢測(cè)的發(fā)光細(xì)菌一般包括淡水和海水兩種。由于淡水的發(fā)光細(xì)菌資源有限,目前用于食品安全檢測(cè)的僅有青?;【葞追N[7],用于食品安全的檢測(cè)受到一定限制。而海水發(fā)光細(xì)菌則包括了多種弧菌及明亮發(fā)光桿菌、海氏交替單胞菌等,從海水中分離更多的發(fā)光細(xì)菌用于食品安全研究,是一項(xiàng)重要的途徑。本文分離的6株海洋發(fā)光細(xì)菌,正是現(xiàn)有發(fā)光細(xì)菌資源的有益補(bǔ)充,同時(shí)基于其發(fā)光強(qiáng)度隨百菌清濃度的增大而降低,發(fā)光抑制效率在10%~80%之間的敏感特性,有望用于百菌清的定量檢測(cè)。