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      基于GC/TOF-MS代謝組學(xué)方法的人參反藜蘆研究

      2019-02-10 11:38:54郭麗娜
      關(guān)鍵詞:藜蘆藥組代謝物

      郭麗娜,鄭 茜

      (山西醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院中藥教研室,太原 030001;*通訊作者,E-mail:guolinaaa@126.com)

      十八反是中藥的配伍禁忌,沿用千年,最早記錄十八反的是陶弘景《本草經(jīng)集注》,書中記載了19種藥物:甘草反甘遂大戟芫花海藻,藜蘆反細(xì)辛芍藥人參丹參沙參玄參苦參,烏頭反半夏瓜蔞貝母白蘞白及,目前公認(rèn)的十八反藥物來源于此。人參與藜蘆的應(yīng)用歷來存在爭(zhēng)議。藜蘆是一種有毒中藥,歷代醫(yī)藥家論述藜蘆時(shí)都注意到其辛苦有大毒,金元時(shí)期的朱丹溪云:“服參一兩,入藜蘆一錢,其功盡廢”?!渡褶r(nóng)本草經(jīng)集注》中藜蘆項(xiàng)下注有“反細(xì)辛,芍藥,五參”?!侗静菥V目》中又注有“弘景曰:沙參與人參、玄參、丹參、苦參是為五參”[1]。《中國(guó)藥典》指出上述諸參不宜與藜蘆同用[2]。然而,古方中配伍反藥用于治療病癥的記載仍有存在[3]。據(jù)不完全統(tǒng)計(jì),明清以來大約130位醫(yī)家用相反藥物的情況,其中人參和藜蘆同用者見7例[4]。另外,國(guó)外有研究提出,人參與藜蘆配伍可用于治療肥胖病[5]。綜上,中藥十八反在藥理毒理及物質(zhì)基礎(chǔ)研究都取得一些進(jìn)展。但從總體來看,集中以一些毒效指標(biāo)為主要的研究策略,缺乏從整體(臨床患者、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物)、細(xì)胞水平及分子水平的系統(tǒng)研究,且對(duì)藥物作用于機(jī)體產(chǎn)生毒性的機(jī)制探討較少[6]。

      “代謝組學(xué)”(metabolomics)的概念于2000年首次被Fiehn等[7]提出,這項(xiàng)強(qiáng)有力的研究手段和中醫(yī)藥學(xué)的結(jié)合,將探索出中醫(yī)藥復(fù)雜理論體系研究的新方法與新途徑[8-10]。通過對(duì)代謝組學(xué)的形成、基本思想、特點(diǎn)優(yōu)勢(shì)、分析策略與技術(shù)以及在中醫(yī)藥若干科學(xué)問題研究中的應(yīng)用現(xiàn)狀等進(jìn)行分析與論述,并對(duì)其進(jìn)一步應(yīng)用于中醫(yī)藥研究及揭示中藥作用機(jī)制等方面進(jìn)行分析與探討,以期為采用代謝組學(xué)方法和技術(shù)揭示中醫(yī)藥現(xiàn)代科學(xué)內(nèi)涵提供指引和參考[11]?;谝陨嫌懻?本研究利用基于氣相色譜/飛行時(shí)間質(zhì)譜(gas chromatography/time-of-flight mass spectrometry, GC/TOF-MS)的代謝組學(xué)方法,研究不同組合給藥對(duì)于動(dòng)物的毒性差異,及整體代謝的影響,從而使在處方應(yīng)用上有一定的參考價(jià)值,使藥物配伍在機(jī)制上有依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 藥材與試劑

      藜蘆(購自亳州藥材總公司),人參(產(chǎn)地吉林,購自上海康橋中藥飲片有限公司),分別為百合科藜蘆VeratrumnigrumL.的干燥根莖、五加科人參PanaxgingsengC. A.Mey.的干燥根與根莖。

      水合氯醛(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)20 g,加入200 ml純水,混勻至完全溶解,制成10%水合氯醛液用于麻醉,現(xiàn)用現(xiàn)配。Na2HPO4·12H2O(同上)16.4 g、NaH2PO4·2H2O(同上)5.2 g加水溶解后,再定容至950 ml,最后加入50 ml甲醛(同上),制成甲醛固定液。GOP、GTP、BUN、Cr試劑盒(南京建成生物工程研究所),氣相色譜/飛行時(shí)間質(zhì)譜聯(lián)用儀(GC/TOF-MS,Agilent6890/5975B,Agilent科技有限公司),氣相毛細(xì)管色譜柱(DB-5 MS,Agilent科技有限公司),微型漩渦混合器(Vortex-Genie 2,美國(guó)Scientific Industries,Inc),全自動(dòng)生化分析儀白立7080(上海日和貿(mào)易有限公司),BioTek PowerWave XS酶標(biāo)儀;N-O-雙(三甲硅基)三氟乙酰胺(BSTFA,含1%TMCS)、甲氧胺、尿素酶、L-2-氯苯丙氨酸、十七酸(美國(guó)Sigma-Aldrich公司),甲醇、氯仿(CHCl3)、吡啶(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 藥物的配制 取2.5 g藜蘆和25 g人參浸泡1 h后微沸提取1 h,紗布濾過后再加入8倍量水微沸提取0.5 h,合并兩次的提取液得到濾液1。另外,分別取7.5 g藜蘆和75 g人參按照上述方法煎煮,分別得到濾液2和濾液3。靜置24 h后,抽濾。濾液1濃縮至20 ml,此為合煎液;濾液2濃縮至60 ml,取出20 ml再濃縮至10 ml,稱為濃縮液1;濾液3濃縮至60 ml,取出20 ml濃縮至10 ml,稱為濃縮液2。合并濃縮液1和濃縮液2得到合并液。剩余濃縮液1和濃縮液2分別為藜蘆、人參單煎液。每組17只,給藥量0.2 ml/10 g,正常組給相同劑量的蒸餾水。

      1.2.2 動(dòng)物及給藥 昆明種小鼠102只(18-22 g),雄性,由上海中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,許可證號(hào)SCXK(滬)2012-0002。飼養(yǎng)于12 h晝夜交替的環(huán)境,適應(yīng)性喂養(yǎng)一周。將所有小鼠隨機(jī)分為6組:正常對(duì)照組、單煎藜蘆組、單煎人參組、人參藜蘆前后給藥組、人參藜蘆合并組、人參藜蘆合煎組,每組17只。根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)及相關(guān)文獻(xiàn)[12-18]確定2.5 g/kg作為單煎藜蘆的濃度,人參濃度為25 g/kg。分別按照0.2 ml/10 g灌胃給予藜蘆單煎液、人參單煎液、人參藜蘆合煎液、人參藜蘆合并液,人參藜蘆前后給藥組先給人參單煎液,1 h后給予藜蘆單煎液,正常對(duì)照組給予蒸餾水。單次給藥后禁食12 h后處理動(dòng)物,心臟取血靜置一段時(shí)間后,以4 000 r/min離心10 min,分離上層血清置1.5 ml離心管中,-40 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆?將血清衍生化后待GC-MS進(jìn)樣分析。

      1.2.3 GC/TOF-MS進(jìn)樣及數(shù)據(jù)處理 氣相色譜和質(zhì)譜條件:進(jìn)樣口溫度260 ℃,進(jìn)樣量1.0 μl;不分液進(jìn)樣,載氣,高純氮(99.999%);流速,1.0 ml/min;接口溫度280 ℃;色譜柱,DB-5MS毛細(xì)管柱;色譜柱升溫程序見表1。離子源溫度230 ℃,四級(jí)桿溫度150 ℃,溶劑延遲,5 min;電子碰撞電離電壓,70 eV,質(zhì)譜全掃描范圍(m/z):30-550,采用全掃描方式。

      血清衍生化及進(jìn)樣:取出血清樣本,室溫解凍搖勻,吸100 μl血清于1.5 ml的離心管中,加入十七酸作為內(nèi)標(biāo),加入300 μl甲醇 ∶氯仿=3 ∶1作為代謝物提取溶劑,漩渦震蕩30 s,將混合液置于-20 ℃冰箱,10 min幫助蛋白沉淀,10 000 r/min離心10 min,吸取上清液300 μl于1.5 ml的高回收進(jìn)樣瓶中,在室溫下將其真空干燥,氮?dú)獯蹈伞4蹈珊蠹尤?5

      表1 GC/TOF-MS色譜柱溫箱升溫程序Table 1 GC/TOF-MS temperature programming

      mg/ml甲氧胺80 μl,封蓋器封口,震蕩30 s后,于30 ℃下?lián)u床中反應(yīng)90 min,反應(yīng)結(jié)束后加入80 μl BSFTA(含1%TMCS),振蕩30 s,在70 ℃的烘箱里反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后振蕩10 s,室溫放置1 h后,待GC-MS進(jìn)樣分析。

      數(shù)據(jù)前處理與模式識(shí)別:原始數(shù)據(jù)經(jīng)Agilent MSD工作站NIST軟件轉(zhuǎn)化為NetCDF格式后,導(dǎo)入R軟件中,采用XCMS工具箱處理,該程序?qū)⒆詣?dòng)執(zhí)行基線校正、峰辨識(shí)、峰對(duì)齊等計(jì)算過程,最終得到一個(gè)由指定的峰指數(shù)、樣品名稱、峰面積組成的三維矩陣表。將得到的三維矩陣導(dǎo)入Simca-P11.5軟件進(jìn)行多維統(tǒng)計(jì)分析,經(jīng)過中心化、標(biāo)準(zhǔn)化后進(jìn)行主成分分析(principal component analysis,PCA)和偏最小二乘法判別分析法(partial least square-discriminant analysis,PLS-DA),用來考察樣本總體代謝物譜圖分布狀況,以觀察樣品的聚集、離散及離群點(diǎn)。尋找與疾病最相關(guān)的代謝差異物,權(quán)重系數(shù)變量重要性投影(variable importance in projection,VIP)越大,表明該變量對(duì)模型的貢獻(xiàn)最大,采用VIP>1表示多維統(tǒng)計(jì)上有差異的代謝物。

      2 結(jié)果

      2.1 全部實(shí)驗(yàn)組代謝譜比較的PCA得分和PLS-DA得分

      給藥后,每組僅有10只小鼠的數(shù)據(jù)有效。正常對(duì)照組、單煎人參組、單煎藜蘆組、前后給藥組、合并組、合煎組的代謝譜在非監(jiān)督的PCA下差異不明顯,在監(jiān)督的PLS-DA下空白組和給藥組有較為明顯的差異,且單煎人參組對(duì)生物的代謝影響大于單煎藜蘆組(見圖1,2),分析原因可能是人參濃度過高的,其大補(bǔ)元?dú)獾淖饔酶鼜?qiáng)。從圖中還可看出兩種藥物的組作用明顯強(qiáng)于單味藥。

      圖1 全部組別代謝譜比較的PCA得分圖Figure 1 PCA score plot of metabolic profiles in all groups

      圖2 全部組別代謝譜比較的PLS-DA得分圖Figure 2 PLS-DA score plot of metabolic profiles in all groups

      2.2 單煎藜蘆組和合煎組代謝譜比較的PCA得分和PLS-DA得分

      合煎組比單煎藜蘆組多人參,十八反仍是研究的重點(diǎn),觀察藥物合用是否對(duì)生物體有影響。從圖可知兩組的代謝譜圖有明顯差異,在PLS-DA模式下差異明顯(見圖3)。這種差異是必然的,因?yàn)槎嘁晃度藚?且其濃度很大。當(dāng)然不排除人參和藜蘆合用之后對(duì)生物體的作用增強(qiáng)。

      進(jìn)而發(fā)現(xiàn)了9種差異代謝物,合煎組和單煎藜蘆組之間的代謝物有較為明顯的差異,血清代謝差異物結(jié)果見表2。

      圖3 合煎組、單煎藜蘆組代謝譜比較的PLS-DA得分圖Figure 3 PLS-DA score plot of metabolic profiles in mixed-decoction group and veratrum nigium group

      表2 合煎組、單煎藜蘆組代謝差異物Table 2 Differential metabolites in mixed-decoction group and veratrum nigium group

      2.3 前后給藥組和合并組代謝譜比較的PCA得分和PLS-DA得分

      前后給藥組和合并組都屬于人參和藜蘆單煎后再給藥,區(qū)別是合并組比前后給藥組人參和藜蘆先接觸1 h對(duì)生物體產(chǎn)生影響。從圖可知兩組的代謝譜圖有明顯差異,在PLS-DA模式下差異明顯(見圖4)。這說明人參和藜蘆合并后藥物成分發(fā)生了變化,或者前后給藥組的人參先接觸機(jī)體后發(fā)揮作用1 h,再給藥藜蘆發(fā)揮作用,區(qū)別于合并之后對(duì)機(jī)體的影響。

      圖4 前后給藥組和合并組代謝譜比較的PLS-DA得分圖Figure 4 PLS-DA score plot of metabolic profiles in combination group and mixture group

      進(jìn)而發(fā)現(xiàn)了11種差異代謝物,前后給藥組和合并組之間的代謝物有較為明顯的差異,血清代謝差異物結(jié)果見表3。

      表3 前后給藥組、合并組代謝差異物表Table 3 Differential metabolites in mixture group and combination group

      2.4 合并組和合煎組代謝譜比較的PCA得分和PLS-DA得分

      為了觀察合并組、合煎組對(duì)生物體的影響,經(jīng)過PCA和PLS-DA考察代謝圖譜分布狀況。從圖5可知兩組的代謝譜圖有明顯差異,在PLS-DA模式下差異明顯。合并和合煎的區(qū)別在于一個(gè)是單煎后藥液合并,一個(gè)是兩種原藥材一起煎煮。其中人參和藜蘆的濃度是相同的,但可能在煎煮方式的不同,使得藥物成分發(fā)生變化。

      進(jìn)而發(fā)現(xiàn)了14種差異代謝物,合并組和合煎組之間的代謝物有較為明顯的差異,血清代謝差異物結(jié)果見表4。

      圖5 合并組和合煎組代謝譜比較的PLS-DA得分圖Figure 5 PLS-DA score plot of metabolic profiles in mixture group and mixed-decoction group

      表4 合并組、合煎組代謝差異物表Table 4 Differential metabolites in mixture group and mixed-decoction group

      2.5 前后給藥組、合并組和合煎組

      前后給藥組、合并組、合煎組中人參和藜蘆的濃度都相同,區(qū)別在于單煎后人參先給藥藜蘆后給藥、單煎人參藜蘆合并后給藥、合煎后給藥。在PCA模式下三組的代謝譜差異明顯,而在PLS-DA模式下更明顯。從圖6,7中可以看出前后給藥組和合并組在Comp2上可以區(qū)分,而這兩組與合煎組則在Comp1上可以明顯區(qū)分,且合煎組對(duì)生物體的影響明顯大于另外兩組。

      圖6 合并組、前后給藥組、合煎組組別代謝譜比較的PCA得分圖Figure 6 PCA score plot of metabolic profiles in mixture group, combination group and mixed-decoction group

      圖7 合并組、前后給藥組、合煎組組別代謝譜比較的PLS-DA得分圖Figure 7 PLS-DA score plot of metabolic profiles in mixture group, combination group and mixed-decoction group

      3 討論

      給藥前每組有17只小鼠,給藥后由于藥物作用或者灌胃技術(shù)等原因,每組只剩10只小鼠收集到有效血清以供數(shù)據(jù)監(jiān)測(cè),這也說明人參劑量過大、藜蘆中的藜蘆堿等毒性成分或者人參與藜蘆配伍的原因都使小鼠造成一定程度的死亡或者小鼠的血清收集量過少,這也為“人參反藜蘆”理論提供了某些依據(jù)。

      代謝組學(xué)的對(duì)比主要針對(duì)三類比較,即單煎藜蘆組和合煎組、合并組和合煎組、前后給藥組和合并組。合并組和合煎組的區(qū)別在于煎藥方式,一個(gè)是單煎藜蘆、人參后合并,一個(gè)是人參、藜蘆一起煎煮。兩種藥物在高溫下是否會(huì)相互作用,從PLS-DA結(jié)果中可以看出是有差異的,從內(nèi)源性代謝物角度看,異亮氨酸有明顯差異,異亮氨酸是支鏈氨基酸,目前已有相關(guān)研究表明支鏈氨基酸與胰島素抵抗、2型糖尿病、癌癥和心血管等疾病密切相關(guān),說明在生物體內(nèi)當(dāng)以上多種內(nèi)源性產(chǎn)物代謝發(fā)生紊亂時(shí),都會(huì)產(chǎn)生與其相關(guān)的代謝性疾病[19]。差異性內(nèi)源性代謝物肌酐和尿素分別是肌肉代謝和蛋白質(zhì)代謝的產(chǎn)物,反映腎臟的功能,對(duì)腎臟代謝廢物的能力產(chǎn)生影響。果糖的差異性變化說明不同的煎煮方式導(dǎo)致糖類代謝水平發(fā)生了變化。

      合并組和前后給藥組都是單煎藥物給藥,區(qū)別在于前后給藥組的藜蘆要晚1 h接觸機(jī)體,且從兩者的PLS-DA結(jié)果中看出兩者合并之后藥物成分可能發(fā)生了變化。

      合煎組和單煎藜蘆組的對(duì)比在于觀察人參和藜蘆配伍是否對(duì)生物體有不同的影響。兩組之間的代謝物有較為明顯的差異,內(nèi)源性差異代謝物異亮氨酸、尿素和肌酐說明兩種煎煮方式擾亂了氨基酸代謝和能量代謝以及腎臟功能代謝,表明人參和藜蘆相互作用確實(shí)對(duì)生物體的代謝情況有一定的影響。

      從各組的PLS-DA模式上可以看出,人參對(duì)生物體的影響大于藜蘆組,可能是人參劑量過大造成的,也有可能藜蘆沒有表現(xiàn)出毒性即預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果并未重復(fù)。楊亮等[16]利用UPLC-Q/TOF-MS技術(shù),由主成分分析圖OPLS-DA可見,合煎液、合并液及合并液再煎液三組樣品得到明顯的區(qū)分。王宇光等[20]利用主成分分析法(PCA)和正交偏最小二乘判別分析法(OPLS-DA),得出合并液與合煎液化學(xué)指紋圖譜的差異能夠得到明顯的區(qū)分。因此,結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道,可以得出結(jié)論,合煎液和合并液在代謝譜上是有差異的。綜上所述,這三組比較均擾亂了氨基酸的生物合成及代謝、機(jī)體的能量代謝、肌肉代謝、蛋白質(zhì)代謝及糖代謝,為藜蘆和人參配伍后內(nèi)源性代謝物靶標(biāo)的發(fā)現(xiàn)提供依據(jù)。

      人參和藜蘆自《本草經(jīng)集注》中提出之后,歷來存在爭(zhēng)議,對(duì)該問題的研究也該逐步深入。古今中外許多醫(yī)家仍舊將其合用來治療相關(guān)疾病,當(dāng)代研究更是從各種角度尋找其作用機(jī)制。另外,體外化學(xué)成分研究表明[21],配伍后藜蘆定的含量均升高,分析其原因可能為人參皂苷類成分有助溶作用,增加了藜蘆定的溶解度而使其含量增加,也可能是化學(xué)反應(yīng)導(dǎo)致相關(guān)成分溶出速率增加。但是不得不承認(rèn),現(xiàn)有結(jié)果仍不能對(duì)兩者的應(yīng)用提供任何證明,其撲朔迷離的狀態(tài)仍然無法解決。古訓(xùn)宜尊古而不可泥古,應(yīng)持科學(xué)態(tài)度進(jìn)行臨床驗(yàn)證。代謝組學(xué)技術(shù)在中藥的研究中已取得了一定的成果,但也應(yīng)看到,當(dāng)前代謝組學(xué)的研究還處于模式識(shí)別和生物標(biāo)記物鑒定層次,應(yīng)該結(jié)合其他學(xué)科如蛋白組學(xué)、基因組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)等進(jìn)行綜合的認(rèn)識(shí)與制定標(biāo)準(zhǔn)。相信不久將來,人參和藜蘆的應(yīng)用必將得到科學(xué)的闡明,中藥十八反作用機(jī)制和物質(zhì)基礎(chǔ)的“黑匣子”必將被揭開,從而為中藥臨床合理用藥提供科學(xué)的依據(jù)。

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