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      棉花內(nèi)生芽孢桿菌LH-L3定殖能力研究

      2019-01-14 07:42:06陳麗華何鵬飛歐曉慧袁德超吳毅歆何月秋
      關(guān)鍵詞:定殖灌根棉株

      陳麗華,何鵬飛,歐曉慧,袁德超,吳毅歆,,何月秋,*

      (1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,云南昆明650201;2.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,云南昆明650201;3.微生物菌種篩選與應(yīng)用國家地方聯(lián)合工程研究中心,云南昆明650217)

      植物內(nèi)生細(xì)菌廣泛存在于植物的組織或細(xì)胞內(nèi),它們與寄主植物建立和諧共存的關(guān)系,具有促生、固氮、抗病蟲害、殺線蟲等多種作用[1-4],目前已被廣泛應(yīng)用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)。生防菌株能在根際土壤或植株體內(nèi)成功定殖是所有抑菌機(jī)制的基礎(chǔ),內(nèi)生細(xì)菌的定殖是其與寄主植物互作發(fā)揮其自身作用的關(guān)鍵步驟。隨著生物技術(shù)和顯微鏡技術(shù)的發(fā)展,植物內(nèi)生菌或病原菌在植物體內(nèi)侵染、定殖的檢測越來越容易[5]。目前檢測菌株定殖情況的方法有很多,其中綠色熒光蛋白標(biāo)記目標(biāo)菌株越來越普遍[6]。

      甲基營養(yǎng)型芽孢桿菌(Bacillusmethylotrophicus)LH-L3(下稱LH-L3)是本實(shí)驗(yàn)室從健康棉株葉片中分離獲得的內(nèi)生細(xì)菌,平板對峙試驗(yàn)表明其對多種病原菌有抑制作用,并對棉花黃萎病有很好的防病作用,且具有促生長效果[7]。研究生防菌 LH-L3在棉花上的定殖情況,有助于進(jìn)一步了解該菌株的防病促生機(jī)制。為了測定LH-L3的定殖能力,本文通過自然轉(zhuǎn)化法獲得了 GFP 標(biāo)記菌株,并對其定殖情況進(jìn)行跟蹤檢測。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      菌株:LH-L3(CGMCC No.12565)、稻瘟病菌(Magnaportheoryzae)、玉米大斑病菌(Exserohiumturcicum)為本實(shí)驗(yàn)室分離保存,棉花黃萎病菌(Verticilliumdahliae)由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所李志芳博士惠贈。

      質(zhì)粒和抗生素:pHT01-P43GFPmut3a由本實(shí)驗(yàn)室自行構(gòu)建,攜帶GFP基因和氯霉素(Cm)抗性基因,氯霉素使用終濃度為10 μg/mL。

      作物:玉米(云禾單2號)為實(shí)驗(yàn)室自選種;甘藍(lán)(中甘21)、小麥(昆麥5號)和蠶豆(鳳豆6號)購于市場;棉種(冀棉11)由李志芳博士惠贈。

      培養(yǎng)基:細(xì)菌培養(yǎng)采用LB培養(yǎng)基,真菌培養(yǎng)采用PDA培養(yǎng)基,菌株LH-L3的自然轉(zhuǎn)化采用GCHE和GC培養(yǎng)基[7]。

      1.2 LH-L3的自然轉(zhuǎn)化

      參照何鵬飛[8]提供的方法。挑取新鮮劃線的LH-L3單菌落于液體LB中,37 ℃ 160 r/min振搖過夜培養(yǎng);次日吸取LH-L3培養(yǎng)物于液體GCHE培養(yǎng)基中,使其光密度值OD600在0.3左右;37 ℃ 160 r/min振搖培養(yǎng)3~3.5 h,待其OD600達(dá)到1.4左右,加入等體積的GC培養(yǎng)液,稀釋混勻,37 ℃ 160 r/min繼續(xù)培養(yǎng)1.5~2 h;將此時(shí)的細(xì)胞培養(yǎng)物均勻分成兩份,5 000 g室溫離心6 min;吸取上清液200 μL懸浮菌體沉淀后,加入2 mL轉(zhuǎn)化緩沖液及1 μg的外源DNA;混勻后,37 ℃溫箱放置1 h,期間每隔10~15 min輕輕顛倒混勻;加入含亞致死濃度的相應(yīng)抗生素的LB液體,37 ℃ 160 r/min振搖培養(yǎng)2~3 h后;10 000 r/min室溫離心4 min,取上清液400 μL重懸菌體沉淀,均勻涂布于含相應(yīng)濃度氯霉素的LB平板上;次日觀察有無抗性菌落的出現(xiàn),在光電折射儀上觀察菌落是否發(fā)出綠色熒光。挑取發(fā)綠色熒光的單菌落于含有氯霉素的液體LB中擴(kuò)大培養(yǎng),并將該標(biāo)記菌株定名為LH-L3-P43GFPmut3a(以下簡稱為LH-L3-GFP)。

      1.3 LH-L3-GFP與野生型LH-L3菌株的室內(nèi)拮抗活性比較

      采用平板對峙實(shí)驗(yàn)[9]比較LH-L3-GFP和野生型LH-L3菌株對不同植物病原真菌的室內(nèi)拮抗活性,其中植物病原真菌以棉花黃萎病病菌、玉米大斑病菌、稻瘟病菌為試驗(yàn)材料。觀察標(biāo)記菌是否具有相同或者更強(qiáng)的拮抗能力,對比兩者的拮抗帶寬度,以此來判斷其LH-L3-GFP是否適用于定殖研究。

      1.4 LH-L3-GFP在棉花體內(nèi)的定殖

      挑取過夜培養(yǎng)于氯霉素LB平板上的LH-L3-GFP的單菌落,于含有氯霉素的LB液體培養(yǎng)基中37 ℃振蕩培養(yǎng)3 d,形成抗逆性較強(qiáng)的內(nèi)生芽孢。棉花種子經(jīng)75%酒精表面消毒無菌水漂洗3次后,播種于經(jīng)2次滅菌的土壤中,約50 d后開始出現(xiàn)花朵時(shí),用LH-L3-GFP菌液(106cfu/mL)進(jìn)行灌根處理,同時(shí)設(shè)定清水對照,每處理重復(fù)3次。

      回收檢測菌LH-L3-GFP在根表土、根、莖、葉、花朵內(nèi)的定殖情況,分別于處理后1,3,5,7,10,25,50 d取樣。方法:將整棵棉花輕輕拔出,抖落根系上的土壤顆粒,然后用毛筆輕輕將附著在根系的土壤顆粒刷下,即為根表土壤樣品,稱質(zhì)量后依次加無菌水進(jìn)行10倍稀釋,取稀釋了100、1 000倍的土壤溶液100 μL均勻涂布于含有氯霉素抗性的平板上,每個(gè)處理重復(fù)3次,37 ℃培養(yǎng)48 h。用無菌剪刀將根、莖、葉、花朵分開,其中從最下層葉片至基部的部分為莖,各部分別稱質(zhì)量后,棉株經(jīng)75%酒精浸泡2 min,無菌水漂洗3次后剪成小塊于無菌研缽中充分研磨至勻漿,然后進(jìn)行10倍稀釋,按上述方法每個(gè)濃度吸取100 μL涂布培養(yǎng),菌落長出后,置于光電折射儀上統(tǒng)計(jì)綠色熒光的菌落數(shù)量,計(jì)算含菌量。

      因生長至開花時(shí)的棉株根莖較硬,不易切片,所以按上述方法播種棉種后于棉株2葉期進(jìn)行澆菌處理。選擇處理第1天和第5天的棉株,用無菌水清洗表面泥土,采用徒手切片法制片,在激光掃描共聚焦顯微鏡(Leica,DE)下觀察GFP標(biāo)記菌株在棉株體內(nèi)的定殖情況。

      1.5 LH-L3-GFP在不同作物體內(nèi)的定殖

      該部分采用葉面涂抹菌液和灌根兩種接種方式進(jìn)行。將蠶豆、小麥、玉米和甘藍(lán)種子表面消毒后,于培養(yǎng)皿中進(jìn)行催芽,種子出芽3 d時(shí),將其轉(zhuǎn)移至離心管中,并使其根浸泡于4 mL水中,所用物品均經(jīng)過滅菌處理。

      葉面涂抹接種:在確保葉片不被擦傷和離心管中的水不被污染的條件下,用滅菌棉棒蘸取菌液(濃度約為106cfu/mL),輕輕涂抹幼苗的葉片。

      灌根接種:加入400 μL菌液(濃度約為107cfu/mL)于離心管的水中。

      將處理幼苗置于28 ℃光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每處理重復(fù)3次。于處理后24 h和72 h取樣,稀釋涂板檢測,方法與1.4一致。

      2 結(jié)果

      2.1 菌株LH-L3的自然轉(zhuǎn)化

      按照上述方法,成功將質(zhì)粒pHT01-P43GFPmut3a導(dǎo)入LH-L3自然感受態(tài)細(xì)胞中,轉(zhuǎn)化成功的菌株能夠在終濃度為10 μg/mL的氯霉素平板上生長,且在光電折射儀上菌落發(fā)出綠色熒光(圖1)。

      2.2 LH-L3-GFP與野生型LH-L3菌株的室內(nèi)拮抗活性比較

      圖 1 光電折射儀下LH-L3的GFP標(biāo)記菌株 Fig.1 GFP-tagged LH-L3 under optical refract meter

      野生型菌株LH-L3對多種植物病原菌都有較強(qiáng)的室內(nèi)拮抗活性,從圖2可以看出,與野生型相比較,LH-L3-GFP對病原真菌稻瘟病菌、玉米大斑病菌、黃萎病菌的拮抗力無明顯差異,可用于定殖和生物防治的研究。

      2.3 LH-L3-GFP在棉花體內(nèi)和根際的回收監(jiān)測

      W.T為LH-L3野生型菌株,GFP為LH-L3-GFPW.T mean wild type,GFP mean LH-L3-GFP strain圖2 LH-L3及其GFP標(biāo)記菌株的抑菌效果Fig.2 Inhibitory effect of LH-L3 and its GFP-tagged strain on fungal pathogens

      通過灌根的方法,接種1 d后,標(biāo)記菌LH-L3-GFP在棉株各器官上的定殖如圖3-D、E、F,在激光共聚焦顯微鏡下清楚地觀察到主根伸長區(qū)、莖的薄壁組織,甚至葉部組織中都有標(biāo)記菌的存在;接種5 d后,熒光信號更加強(qiáng)烈,在莖表皮和皮層中大量聚集。在分離培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)中,結(jié)果與上述切片觀察的結(jié)果符合,由圖4可以看出在處理的第1天,標(biāo)記菌就能從下至上地侵入,在根表土、根、莖、葉、花朵等器官中回收到的菌落數(shù)分別為3.00×105,2.25×105,3.50×104,1.20×102,1.00×102cfu/g;第3、5天時(shí),根表土中標(biāo)記菌數(shù)量有所下降,但至第7天時(shí)又出現(xiàn)緩慢上升趨勢,定殖數(shù)量一直維持在104~105cfu/g;根中標(biāo)記菌數(shù)量除第3天時(shí)有所下降,之后一直維持在105cfu/g左右;莖中標(biāo)記菌數(shù)量隨處理時(shí)間的延長有所變化,但定殖數(shù)量一直維持在104cfu/g左右;葉片和花朵中標(biāo)記菌數(shù)量變化不大,后期基本保持不變,均在101~102cfu/g。處理的第50天,仍然可以從棉株體內(nèi)和根表土中回收到標(biāo)記菌,說明該GFP標(biāo)記菌具有很強(qiáng)的穩(wěn)定性,同時(shí)說明菌株LH-L3能夠在棉花體內(nèi)穩(wěn)定定殖。

      A、B、C分別為根、莖、葉對照;D、E、F分別為接種1 d后標(biāo)記菌在主根伸長區(qū)、莖的薄壁組織中、葉部組織中的定殖;G、H、I分別為接種5 d后標(biāo)記菌在主根伸長區(qū)、莖表皮和皮層的定殖、葉海綿組織的定殖A,B and C were root,steam and leaf control,respectively.D,E and F mean colonization in the main root elongation area,parenchyma of the stem and leaf tissue after 1 day of inoculation,respectively.G,H and I mean colonization in the main root elongation area,stem epidermis and cortex and leaf sponge tissue after 5 days of inoculation,respectively圖3 LH-L3-GFP在棉花根、莖、葉中的定殖Fig.3 The colonization of GFP-tagged strain,LH-L3-GFP in cotton root,stem and leaf tissues

      2.4 LH-L3-GFP在不同作物體內(nèi)外的回收監(jiān)測

      圖4 LH-L3-GFP在棉花體內(nèi)和根際的定殖Fig.4 The colonization of LH-L3-GFP in cotton parts and root rhizosphere

      采用葉面涂抹和灌根的接種方式,分別檢測生防菌從葉片定殖至根部、根部定殖至葉片的情況。結(jié)果(圖5)顯示,葉面涂抹標(biāo)記菌24 h,菌株可到達(dá)這4種作物幼苗的莖部;處理72 h菌株可到達(dá)小麥、甘藍(lán)幼苗的根部,在蠶豆幼苗體內(nèi)的定殖能力最強(qiáng),甚至在浸泡根部的水中都能回收到菌體,在玉米體內(nèi)的定殖能力稍弱,僅在葉片和莖部檢測到菌體的存在。采用灌根接種的方式,依然發(fā)現(xiàn)該菌株在蠶豆體內(nèi)定殖能力較強(qiáng),處理24 h即可在莖部回收到菌體。除此之外,甘藍(lán)莖部也可回收到菌體,而菌株在小麥、玉米體內(nèi)仍然只存在于根部;處理72 h菌株均到達(dá)這4種作物莖部,葉片上回收不到菌體。因此,該菌株能在蠶豆、小麥、玉米、甘藍(lán)體內(nèi)定殖,其中在蠶豆體內(nèi)的定殖能力比在其他3種作物體內(nèi)的定殖更強(qiáng)。

      A、B分別為葉面涂抹接種24,72 h標(biāo)記菌在不同作物體內(nèi)和體外的回收菌體數(shù)量;C、D分別為灌根接種24,72 h標(biāo)記菌在不同作物體內(nèi)和體外的回收菌體數(shù)量A and B mean the number of bacteria collected in different crops applied to the leaves for 24 hours and 72 hours,respectively.C and D mean the number of bacteria collected in different crops after drenching inoculation for 24 h and 72 h,respectively 圖5 LH-L3-GFP在不同作物體內(nèi)和體外的定殖Fig.5 The colonization of LH-L3-GFP in different crops

      3 討論

      從人類意識到化學(xué)農(nóng)藥對環(huán)境造成的嚴(yán)重危害開始,生物防治就越來越受到重視。目前,有益微生物介入在生物防治領(lǐng)域占有重要地位。這種措施能在改善作物生長和產(chǎn)量的同時(shí)確保人們消費(fèi)和生態(tài)環(huán)境的安全[10]。生防菌在根際土壤或植株體內(nèi)中不能成功地定殖,其他所有的抑菌機(jī)制都沒有真正的生防價(jià)值[11]。因此,研究菌株LH-L3在棉株及不同作物上的定殖情況極其重要。

      目前,在對生防菌株定殖能力的檢測中,使用較多的為抗生素標(biāo)記法[12]和GFP標(biāo)記法。與抗生素標(biāo)記法相比,GFP 標(biāo)記法具有易于檢測、靈敏度高、穩(wěn)定性較好、構(gòu)建載體方便等優(yōu)點(diǎn),從而受到了科研工作者的廣泛應(yīng)用[13]。由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的GFP質(zhì)粒pHT01-P43GFPmut3a,其芽孢桿菌復(fù)制子來源于低拷貝枯草芽孢桿菌質(zhì)粒pBS72。用該質(zhì)粒對菌株進(jìn)行GFP標(biāo)記,所得菌株穩(wěn)定性較高。近2個(gè)月的取樣調(diào)查中依然能在玉米組織中回收到標(biāo)記菌,并且標(biāo)記菌株生長速率較快[8]。本實(shí)驗(yàn)室已使用該質(zhì)粒對多個(gè)生防菌株進(jìn)行標(biāo)記[14],成為同時(shí)具有熒光特性和氯霉素抗性的標(biāo)記菌。

      本次實(shí)驗(yàn)基于前人的基礎(chǔ)上,成功對菌株LH-L3進(jìn)行了GFP標(biāo)記,并采用澆灌菌液的方法,研究標(biāo)記菌株LH-L3-GFP在棉株體內(nèi)的定殖,結(jié)果顯示菌株在24 h就實(shí)現(xiàn)了自下而上的轉(zhuǎn)移,定殖能力由大到小依次為根、莖、花朵和葉,數(shù)量呈現(xiàn)“減—增—減”的變化趨勢,且根部數(shù)量變化波動不大,在跟蹤了近兩個(gè)月的時(shí)間內(nèi),菌株在棉株的各個(gè)器官內(nèi)均還能檢測出,表明LH-L3菌株在棉株體內(nèi)定殖情況較好。

      此外,筆者還研究了菌株在蠶豆、玉米、小麥、油菜上的定殖能力。結(jié)果顯示菌株在這4種作物上均能定殖,定殖能力由大到小依次為蠶豆、甘藍(lán)、小麥和玉米。涂葉72 h能在整株蠶豆、甚至培養(yǎng)的水中檢測出菌的存在,灌根24 h能在蠶豆和甘藍(lán)的莖中檢測出菌的存在。出現(xiàn)這種差異可能與棉花、蠶豆、甘藍(lán)都屬于雙子葉作物有關(guān),因此猜測該菌株在雙子葉作物體內(nèi)的定殖能力優(yōu)于單子葉作物。而通過灌根接種,在這4種植株葉片上均回收不到菌體,這也有可能是因?yàn)榈竭_(dá)葉片里的菌量較少,而筆者仍然用同一尺度進(jìn)行檢測,經(jīng)過研磨稀釋后導(dǎo)致濃度過低未檢測出來,具體原因仍有待進(jìn)一步探究。LH-L3的良好定殖能力,為其用于多種作物病害生物防治和促生長提供了條件。

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