周小華,張 偉,黃志萍,張海忠,王炳南,湯建福,謝 恩
(1.福建生態(tài)工程職業(yè)技術(shù)學(xué)校,福建 福州 350008; 2.漳州市林業(yè)局,福建 漳州 363000;3.漳州長泰巖溪國有林場,福建 長泰 363900; 4.漳州平和天馬國有林場,福建 平和 363700)
大花序桉(Eucalyptus.cloeziana)又名昆士蘭桉、金皮楠、澳洲金皮楠,天然分布于澳大利亞,大喬木,樹高可達(dá)45 m[1],樹干通直,材質(zhì)好,是很好的家具、室內(nèi)裝飾、礦柱、坑木及建筑用材;大花序桉樹種耐干旱瘠薄、抗病蟲害能力強(qiáng),生長迅速,尤其是后期生長優(yōu)勢非常明顯,是極具培育價值的大徑材樹種。由于大花序桉引種的種源少,開花結(jié)實量也少,造成苗木緊缺,此外實生苗造林遺傳分化明顯,給造林管理帶來很大的挑戰(zhàn)和困難,因此制約了其大規(guī)模推廣與發(fā)展[2]。組織培養(yǎng)是桉樹種苗繁育的一種重要技術(shù)手段,即能規(guī)?;a(chǎn),又能夠保持母本的優(yōu)良特性。近幾年,唐再生[3]、唐慶蘭[4]、陳曉明等[5]都曾對大花序桉組織培養(yǎng)進(jìn)行研究,通過誘導(dǎo)得到無菌苗,繼而進(jìn)行繼代培養(yǎng),生根培養(yǎng)試驗,初步建立了“以芽繁芽”的組培快繁體系,但生根率不一,最高達(dá)86%[6]。目前,尚未見大花序桉組織培養(yǎng)苗產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)的報道,大花序桉組培苗產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)的瓶頸在于生根率偏低。本研究對大花序按組織培養(yǎng)快速繁殖進(jìn)行深入研究,主要以大花序桉莖段芽誘導(dǎo)后的無菌苗為材料,研究其外植體消毒、誘導(dǎo)、繼代增殖培養(yǎng),以獲得大量的組培苗,為生根培養(yǎng)打下基礎(chǔ)。目的在于建立大花序桉組織培養(yǎng)快速繁殖體系,為工廠化育苗奠定基礎(chǔ)。
試驗材料取自漳州市引種的大花序桉優(yōu)良單株,選擇連續(xù)晴天2 d以上且枝條無露水時(一般在上午9∶00—10∶00左右)進(jìn)行取樣,剪取正處生長季節(jié)、當(dāng)年生、幼嫩部分、無病蟲害、芽體飽滿、生長健壯的枝梢。保鮮帶回實驗室。
本研究在查閱大量相關(guān)文獻(xiàn)的基礎(chǔ)上,根據(jù)試驗的目的和計劃,著重探討大花序桉莖段外植體消毒及其芽誘導(dǎo)組織培養(yǎng)技術(shù),采用正交設(shè)計或完全組合設(shè)計安排試驗,探討外源激素的添加效果,篩選最有利的內(nèi)外源激素的組合和比例,篩選出最優(yōu)技術(shù)參數(shù)組合,從外源激素的協(xié)調(diào)上建立大花序桉最優(yōu)組培快繁體系。
1.2.1 外植體消毒 先用清水和軟毛刷洗凈外植體表面附著物,后放入洗衣粉稀釋液中逐個刷洗,再置于流水中徹底洗掉洗滌劑,將外植體修剪后放入無菌瓶中;隨后轉(zhuǎn)入超凈工作臺上,將所需莖段的葉柄部分剪去,剪成帶有1~2個腋芽莖段,用無菌濾紙吸干莖段表面水分。選擇2%次氯酸鈉、75%食用酒精、0.1% HgCl2為消毒劑,根據(jù)外植體消毒程序設(shè)計若干個消毒方案進(jìn)行滅菌(表1)。2~3種藥劑處理間均用無菌水浸洗3~5次,用HgCl2消毒時可加入2~3滴吐溫-80。藥劑處理完后,用無菌水浸洗3~5次,直到清澈無泡沫為止。且每次無菌水浸洗時間不少于2 min。藥劑處理與無菌水浸洗均在無菌培養(yǎng)瓶中密封振蕩處理,以便無菌水與組織材料充分接觸。
1.2.2 外植體誘導(dǎo) 全部接種工作均在經(jīng)嚴(yán)格滅菌的超凈工作臺上進(jìn)行。消毒后的莖段在無菌條件下接種誘導(dǎo),誘導(dǎo)試驗方案見表2。接種數(shù)量為每種配方33瓶,每個處理接種10~11瓶,每瓶接4~5塊外植體,重復(fù)2~3次,若由于一些外界或人為原因接種量適當(dāng)增加。
1.2.3 繼代培養(yǎng) 繼代培養(yǎng)試驗方案見表3。
1.2.4 培養(yǎng)條件 培養(yǎng)室溫度為(25±2) ℃,濕度為60%~70%,光照強(qiáng)度為1200~1400 lx,每天光照時間為12 h。
表1 消毒方法正交試驗設(shè)計
表2 不同培養(yǎng)基配方對莖段芽誘導(dǎo)正交試驗設(shè)計
*:培養(yǎng)基配方為蔗糖(分析純)30 g·L-1,瓊脂5.5 g·L-1,pH值在5.6~6.0范圍內(nèi)。下同。
運(yùn)用SPSS 17.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,大花序桉莖段外植體接入培養(yǎng)基后每2 d進(jìn)行觀察統(tǒng)計,誘導(dǎo)、繼代培養(yǎng)20 d時進(jìn)行調(diào)查。調(diào)查結(jié)果按下列方法統(tǒng)計相關(guān)指標(biāo)。褐化率(%)=褐化的莖段數(shù)/接種的莖段總數(shù)×100%;污染率(%)=污染的莖段數(shù)/接種的莖段總數(shù)×100%;誘導(dǎo)率(%)=誘導(dǎo)芽的莖段數(shù)/未感染的外植體數(shù)×100%;平均芽數(shù)量(%)=誘導(dǎo)的芽總數(shù)/未感染的外植體總數(shù)×100%;增殖系數(shù)=收獲時的芽苗數(shù)/接種時的芽苗數(shù);出芽率(%)=已出芽的莖段數(shù)/接種的莖段誘導(dǎo)數(shù)×100%。
不同消毒方法對大花序桉外植體的滅菌效果差別較大(表4),A5處理消毒效果較好,即2%次氯酸鈉浸泡20 min+75%食用酒精表面消毒30 s+0.1%HgCl2深層消毒6 min。這樣的消毒方式能夠保證較低的褐化率與污染率及較高的誘導(dǎo)成活率且生長良好。
表3 繼代培養(yǎng)正交試驗設(shè)計
*:植物生長調(diào)節(jié)劑單位均為mg·L-1。
表4 消毒方法對滅菌效果的影響 %
通過不同培養(yǎng)基對芽誘導(dǎo)效果的影響(表5)分析對比得出,培養(yǎng)基類型為改良MS+6-BA 0.3~0.5 mg·L-1+NAA 0.1~0.3 mg·L-1+KT 0.1~0.2 mg·L-1時,誘導(dǎo)出芽的效果最佳。其誘導(dǎo)率最高達(dá)到86%,出芽率最高達(dá)到58.1%。
表5 不同培養(yǎng)基對芽誘導(dǎo)效果的影響
表5(續(xù))
*:試驗數(shù)指參與試驗總數(shù);誘導(dǎo)數(shù)指除褐化株數(shù)外的誘導(dǎo)總數(shù)。
通過不同培養(yǎng)基對增殖系數(shù)的影響(表6)可以看出,E5、E6、E7、E8的增殖系數(shù)較高,可以達(dá)到4.5以上(圖1、圖2),平均增殖系數(shù)為3.6。通過增殖系數(shù)來判斷最佳的繼代增殖培養(yǎng)基配方為:改良MS+6-BA 0.2~0.3 mg·L-1+NAA 0.1~0.2 mg·L-1+KT 0.2~0.3 mg·L-1。
表6 不同培養(yǎng)基對增殖系數(shù)的影響
圖1 大花序桉1株瓶苗繼代增殖培養(yǎng)效果
圖2 大花序桉1株繼代培養(yǎng)瓶苗切割效果
1)外植體消毒試驗結(jié)果表明,大花序桉最好的消毒方法為A5處理,即2%次氯酸鈉浸泡20 min+75%食用酒精表面消毒30 s+0.1%HgCl2深層消毒6 min。這樣的消毒方式能夠保證較低的褐化率與污染率及較高的誘導(dǎo)成活率且生長良好。消毒時間過短,無法完全清除外植體上帶有的真菌、細(xì)菌等微生物;而消毒時間過長,可能會使外植體組織損傷失去活力,導(dǎo)致外植體褐化或死亡。
導(dǎo)致外植體污染的原因有很多,各種微生物可能附著在外植體上,也可能附著在植物體內(nèi)。組培中使用的培養(yǎng)基通常會添加較高濃度的糖分[7],從而為外植體上的微生物繁殖和生長提供條件。帶菌的外植體一旦接觸培養(yǎng)基便能迅速繁殖,并排泄出對外植體有害的代謝毒素,影響莖段芽的正常誘導(dǎo),導(dǎo)致外植體污染直至死亡。使用HgCl2消毒時,要注意消毒時間的控制,由于其具有較強(qiáng)的毒性,對微生物有很好的殺滅效果,若消毒時間過長,其毒性也會被外植體吸收,導(dǎo)致外植體中毒,甚至死亡。
2)誘導(dǎo)試驗結(jié)果表明,誘導(dǎo)出芽效果最佳的培養(yǎng)基為:改良MS+6-BA 0.3~0.5 mg·L-1+NAA 0.1~0.3 mg·L-1+KT 0.1~0.2 mg·L-1,誘導(dǎo)出芽的效果最佳?;九囵B(yǎng)基的選擇對大花序桉組培苗的生長起到關(guān)鍵作用。在選擇基本培養(yǎng)基時,除了要考慮植物的遺傳特性外,還應(yīng)考慮培養(yǎng)基總離子濃度、總氮水平及硝態(tài)氮和銨態(tài)氮的比例、鈣和氯化物的含量等。本研究對不同基本培養(yǎng)基和激素配比對芽的誘導(dǎo)培養(yǎng)影響(出芽率)進(jìn)行分析,可知4種因素對出芽率的影響較大,它們依次為培養(yǎng)基類型、6-BA濃度、NAA濃度、KT濃度。高濃度的KT能夠很好地刺激大花序桉組培苗誘導(dǎo)出芽,增殖系數(shù)高,但是組培苗莖段較紅,出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象等生長不正?,F(xiàn)象。
3)通過不同培養(yǎng)基對增殖系數(shù)的影響可以看出E5(改良MS+6-BA 0.3 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1+KT 0.3 mg·L-1)、E6(改良MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1+KT 0.3 mg·L-1)、E7(改良MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1+KT 0.5 mg·L-1)、E8(改良MS+6-BA 0.2 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+KT 0.5 mg·L-1)的增殖系數(shù)較高,可以達(dá)到4.5以上,平均增殖系數(shù)為3.6。通過增殖系數(shù)來判斷,最佳的繼代增殖培養(yǎng)基配方為:改良MS+6-BA 0.2~0.3 mg·L-1+NAA 0.1~0.2 mg·L-1+KT 0.2~0.3 mg·L-1。
為了獲得大量的繼代增殖培養(yǎng)組培苗,可選擇使用較高濃度的細(xì)胞分裂素和一定濃度的生長素配比,以提高芽體的增殖率并獲得生長良好的芽苗,但在此過程中必須控制好二者間的濃度關(guān)系[7],細(xì)胞分裂素的濃度高于一定程度將會降低芽苗的質(zhì)量,抑制繼代增殖效果。
*:本項目得到漳州市林業(yè)局韓金發(fā)、何水東2位高級工程師;福建農(nóng)林大學(xué)陳禮光副教授;長泰巖溪國有林場張友育高級工程師的大力支持與幫助。在此表示最誠摯的謝意!