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    河南省家畜家禽中弓形蟲感染狀況

    2018-12-21 12:35:24趙林靜張振超劉世國
    特別健康·下半月 2018年10期
    關(guān)鍵詞:弓形蟲家畜家禽

    趙林靜 張振超 劉世國

    【摘要】目的:分析河南省家畜、家禽和寵物中弓形蟲感染狀況。方法:隨機提取河南省各地動物樣品,酚氯仿法提取總DNA,弓形蟲529 重復(fù)序列為靶基因,巢式PCR檢測樣品目的基因。結(jié)果:各種動物弓形蟲陽性率不同,總陽性率是14.31%。結(jié)論:貓感染率最高,豬和鴿感染率最低。

    【關(guān)鍵詞】弓形蟲;家畜;家禽;寵物;巢式PCR

    【中圖分類號】R249 【文獻(xiàn)標(biāo)識碼】B 【文章編號】2095-6851(2018)10-168-01

    了解食用肉類中弓形蟲感染情況對弓形蟲預(yù)防很有意義。弓形蟲檢測包括血清學(xué)、形態(tài)學(xué)、動物接種和核酸檢測等,其中巢式PCR靈敏度高,適用于流行病學(xué)調(diào)查[1],目前基于529片段的巢式PCR被應(yīng)用于弓形蟲檢測。

    1 材料和方法

    1.1 試劑 蛋白酶K購自Merck公司,Tris飽和酚和PCR擴(kuò)增試劑購自康為公司,弓形蟲RH株保存在本實驗室,其余試劑均購自國內(nèi)。

    1.2 樣品采集和處理 共計1909例組織和血樣,隨機采自省內(nèi)的8個市場、12個家禽場和434位農(nóng)戶。采樣后均置于-80℃超低溫保存。

    1.3 提取樣品DNA 組織樣入液氮研粉,血樣去紅細(xì)胞離心獲取沉淀后于56°C蛋白酶K消化后次離心,留上清液提取樣品DNA和弓形蟲RH株。

    1.4 巢式PCR擴(kuò)增 樣品基因組DNA為模板,引物序列如下,外套引物F: 5'-CGC TGC AGG GAG GAA GAC GAA AGTTG-3' 和R:5'-CGC TGC AGA CAC AGT GCA TCT GGA TT-3';內(nèi)套引物F: 5'-AGA AGG GAC AGA AGT CGA AG–3' 和 R: 5'–CTC CAC TCT TCA ATT CTC TCC–3'。引物由生工公司合成,PCR條件:95℃2min; 95℃30s,68℃30s,72℃50s,共35個循環(huán);95℃30s,58℃30,72℃50s,72℃5min,共15個循環(huán)。弓形蟲RH株DNA為陽性對照,正常血樣DNA為陰性對照,ddH2O為空白對照。

    1.5 統(tǒng)計分析 SPSS19.0軟件,x2檢驗比較陽性率,P<0.05為差異有意義。

    2 結(jié)果

    2.1 擴(kuò)增結(jié)果 目標(biāo)條帶是260 bp,即弓形蟲529片段。RH株在260bp有明顯條帶,陰性對照和空白對照均無目標(biāo)條帶。

    2.2 河南省家畜家禽中弓形蟲陽性率

    2.3 河南省家畜肉類中弓形蟲陽性率

    2.4 河南省家禽肉類中弓形蟲陽性率 雞肉和鴨肉x2=38.594;雞肉和鵝肉x2=7.137;雞肉和鴿肉x2=82.972;鴨肉和鵝肉x2=11.512;鴨肉和鴿肉x2=6.015;鵝肉和鴿肉x2=36.684,差異均P<0.05。

    3 討論

    貓是弓形蟲的終宿主,貓糞便中的卵囊容易污染環(huán)境,狗的皮毛中卵囊也容易傳染給人類[2],寵物是人類弓形蟲感染的重要來源,另一個感染的途徑是食用被弓形蟲感染的肉類。蟲體在動物組織中形成包囊,烹飪不當(dāng)會導(dǎo)致人類弓形蟲感染。家畜和家禽的弓形蟲感染率在不同的國家和地區(qū)是不同的[3-5]。

    河南省位于中國中部,淡水湖泊等水域面積小,豬肉、牛肉、羊肉和雞肉是當(dāng)?shù)鼐用竦闹饕馐硜碓矗喓往Z的食用量比南方少。在河南省家畜中,豬弓形蟲感染率最低,而牛和羊的感染率最高,因為豬是人工飼養(yǎng),但牛和羊多是半放牧式飼養(yǎng),牛和羊更多接觸到草和土壤中的弓形蟲卵囊。

    在家禽中鵝的弓形蟲感染率最高。Maksimov 于2010年報道[6]在德國鴨和鵝的弓形蟲感染率相似。鵝的生長周期比鴨的長,因此鵝的弓形蟲感染率高于鴨。河南省雞的飼料是菜葉青草,也增加了雞的弓形蟲感染率。鴿子通常被籠養(yǎng),飼料是谷物,所以鴿的弓形蟲感染率最低。

    寵物最容易被弓形蟲感染,其次是家禽和家畜。貓和狗的特別健康婦幼天地弓形蟲感染率差別很明顯。貓是弓形蟲的終宿主并且接觸鼠類多,所以貓弓形蟲感染率高;而狗弓形蟲感染率比貓低。

    參考文獻(xiàn):

    [1] Aroussi A, Vignoles P, Dalmay F, Wimel L, Darde ML, Mercier A.Detection of Toxoplasma gondii DNA in horse meat from supermarkets in France and performance evaluation of two serological tests.Parasite.2015;22:14

    [2] Liu Y, He G, Cheng Z, Qi Y, Liu J, Zhang H, Liu G, Shi D, Yang D, Wang S, Wang Z.Seroprevalence of Toxoplasma gondii in dogs in Shandong, Henan, and Heilongjiang Provinces, and in the Xinjiang Uygur Autonomous Region, People's Republic of China.J Parasitol.2012;98:211-2

    [3] Cong W, Huang SY, Zhou DH, Xu MJ, Wu SM, Yan C, Zhao Q, Song HQ, Zhu XQ.First report of Toxoplasma gondii infection in market-sold adult chickens, ducks and pigeons in northwest China.Parasit Vectors.2012;5:110

    [4] Holec-Gasior L, Kur J, Hiszczynska-Sawicka E, Drapala D, Dominiak-Gorski B, Pejsak Z.Application of recombinant antigens in serodiagnosis of swine toxoplasmosis and prevalence of Toxoplasma gondii infection among pigs in Poland.Pol J Vet Sci.2010;13:457-64

    [5] Reiterova K, Spilovska S, Antolova D, Dubinsky P.Neospora caninum, potential cause of abortions in dairy cows: the current serological follow-up in Slovakia.Vet Parasitol.2009;159:1-6

    [6] Maksimov P, Buschtons S, Herrmann DC, Conraths FJ, Gorlich K, Tenter AM, Dubey JP, Nagel-Kohl U, Thoms B.Serological survey and risk factors for Toxoplasma gondii in domestic ducks and geese in Lower Saxony, Germany.Vet Parasitol.2011;182:140-9

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