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    大鼠牙胚來源外胚間充質(zhì)干細(xì)胞中p75NTR時(shí)鐘節(jié)律性表達(dá)*

    2018-10-26 01:48:22豐奇昊沈夢(mèng)杰陳謙謙羅雅馨溫秀杰遵義醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院牙周科貴州遵義563000遵義醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院種植科貴州遵義563000陸軍軍醫(yī)大學(xué)大坪醫(yī)院口腔科重慶40004
    現(xiàn)代醫(yī)藥衛(wèi)生 2018年20期
    關(guān)鍵詞:節(jié)律礦化胚胎

    楊 琨,李 駿,豐奇昊,沈夢(mèng)杰,陳謙謙,羅雅馨,劉 琪△,溫秀杰(.遵義醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院牙周科,貴州遵義 563000;.遵義醫(yī)科大學(xué)附屬口腔醫(yī)院種植科,貴州遵義 563000;3.陸軍軍醫(yī)大學(xué)大坪醫(yī)院口腔科,重慶 40004)

    顱神經(jīng)嵴來源的外胚間充質(zhì)干細(xì)胞(EMSCs),是除牙釉質(zhì)以外所有牙齒組織的生成細(xì)胞,被認(rèn)為是牙源性干細(xì)胞的始祖細(xì)胞。在胚胎發(fā)育過程中由顱神經(jīng)嵴遷移至上、下頜突,與牙源性上皮相互作用形成牙囊和牙乳頭,進(jìn)而分化為多種牙齒組織生成細(xì)胞,形成牙本質(zhì)、牙髓、牙骨質(zhì)、牙周膜和牙槽骨[1]。牙源性的EMSCs在牙齒發(fā)生、發(fā)育過程中起著至關(guān)重要的作用,并具有向多種牙齒組織細(xì)胞分化潛能的特點(diǎn)。2004年,國(guó)內(nèi)學(xué)者分離并成功培養(yǎng)出第一腮弓來源及頜突來源的顱神經(jīng)嵴源性EMSCs[2?3],使研究者對(duì)牙胚發(fā)育時(shí)期的始祖細(xì)胞研究有了長(zhǎng)足的發(fā)展。針對(duì)EMSCs的研究發(fā)現(xiàn),在體外培養(yǎng)過程中,EMSCs能夠自然向成骨細(xì)胞及平滑肌細(xì)胞分化,細(xì)胞的成分比較復(fù)雜,不太適合作為單純來源的組織細(xì)胞進(jìn)行研究[4]。

    但是,以往的研究已經(jīng)認(rèn)為p75神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子受體(p75NTR)是神經(jīng)嵴源性干細(xì)胞的特異性表面標(biāo)志物[5]。因此,前期研究對(duì)牙胚來源的EMSCs用p75NTR抗體進(jìn)行流式分選與純化,獲得了細(xì)胞形態(tài)較為均一,代表高純度神經(jīng)嵴源性的p75NTR陽性EMSCs(p75+EMSCs),為研究牙齒發(fā)生、發(fā)育機(jī)制提供了一個(gè)良好的體外細(xì)胞模型[6]。進(jìn)一步研究顯示,p75+EMSCs體外未發(fā)現(xiàn)明顯的自然分化跡象,且其增殖能力強(qiáng)、穩(wěn)定,顯示了其較適合作為種子細(xì)胞應(yīng)用于牙組織工程[7?8]優(yōu)勢(shì)。并且有前期研究還證明,p75NTR與Mage?D1的結(jié)合能夠影響EMSCs的礦化能力[9],這就進(jìn)一步引發(fā)了作者的思考:牙齒發(fā)育過程中形成的周期性礦化間隙紋路—牙體硬組織生長(zhǎng)線的形成機(jī)制是否受到p75NTR的調(diào)控。

    1 材料與方法

    1.1 一般材料 DMEM?F12培養(yǎng)基、胰酶(Gibco,美國(guó)),胎牛血清(Gibco,美國(guó)),鼠抗人 CD14、CD29、CD44、CD45、CD90、CD105、CD146、CD166,p75NTR 單克隆抗體(Abcam,美國(guó)),細(xì)胞RNA提取試劑盒、RT?PCRmix試劑盒(Takara,日本),體式顯微鏡、倒置相差顯微鏡及照相系統(tǒng)(OLYMPUS,日本),流式細(xì)胞分析儀(Beckmen Coulter,美國(guó)),實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Real Time?PCR)儀器(Applied Biosystems,美國(guó))。

    1.2 方法

    1.2.1 大鼠胚胎發(fā)育18.5 d牙胚來源EMSCs培養(yǎng)和分離及表面分子鑒定 SD大鼠孕18.5 d牙胚來源EMSCs(胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs):在大鼠孕18.5 d午間以40 mg∕kg腹腔注射2%戊巴比妥鈉,取出數(shù)個(gè)胚胎,置入6 cm培養(yǎng)皿,剝離羊膜后頭身分離,后分離上下頜,于體式顯微鏡下固定點(diǎn)位,剝開軟骨組織,眼科鑷取出牙胚組織,置入裝有5 mL磷酸緩沖鹽溶液(PBS)的15 mL離心管,搖晃清洗后離心,加入1 mL 1%Ⅰ型膠原酶置入孵箱內(nèi)消化30 min,中和離心(1 000 r∕min)3 min,去上清液后將組織均勻平鋪于6 cm培養(yǎng)皿中,加入含100 mL∕L胎牛血清的DMEM?F12培養(yǎng)液4~5 mL,置于含5%CO2的恒溫箱中靜置貼壁培養(yǎng),37℃,約24 h后顯微鏡下可見細(xì)胞從組織塊中爬出并貼壁生長(zhǎng)。

    取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的第3代胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs,常規(guī)消化離心后,稀釋并計(jì)數(shù),細(xì)胞數(shù)量為每1.5毫升EP管5×105個(gè),加入已配制好的含3%胎牛血清(FBS)?PBS 重懸細(xì)胞,加入 CD14、CD29、CD44、CD45、CD90、CD105、CD146、CD166 及 p75NTR 單克隆抗體 2 μL,4℃冰箱避光孵育 12 h(過夜),12 000 r∕min離心 5 min,加入單抗相對(duì)應(yīng)的熒光二抗避光孵育2 h,無須熒光,加入等量PBS。加入含3%FBS的PBS混合均勻溶液,吹勻,3%FBS?PBS 清洗,12 000 r∕min 離心 5 min,清洗 2~3 次后加 300 μL 3%FBS?PBS,重懸,流式細(xì)胞儀檢測(cè)各組細(xì)胞表面分子。實(shí)驗(yàn)重復(fù)次數(shù)大于3次。

    1.2.2 大鼠胚胎發(fā)育18.5 d牙胚來源EMSCs流式分選 取P1代EMSCs生長(zhǎng)至匯集率90%,按照抗體使用說明書,用自帶熒光p75NTR抗體標(biāo)記消化均勻的EMSCs,4℃孵育半小時(shí)后,流式細(xì)胞技術(shù)分選,收集p75NTR陽性細(xì)胞,進(jìn)行相應(yīng)實(shí)驗(yàn)研究。

    1.2.3 p75NTR陽性EMSCs血清休克實(shí)驗(yàn) 取分選后培養(yǎng)至第3代的p75NTR陽性EMSCs,按照以往文獻(xiàn)[13]方法進(jìn)行血清休克實(shí)驗(yàn)?zāi)M體內(nèi)節(jié)律性,簡(jiǎn)要說明:50%馬血清加入細(xì)胞中2 h進(jìn)行血清高濃度刺激后棄除,用無血清單純的DMEM∕F12進(jìn)行培養(yǎng)至指定時(shí)間點(diǎn) 0、4、8、12、16、20、24 h 進(jìn)行細(xì)胞收集。實(shí)驗(yàn)重復(fù)次數(shù)大于3次。

    1.2.4 RealTime?PCR 檢測(cè) p75NTR、NGF、clock、per1、per2、Bmal1在24 h內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)量 p75NTR陽性細(xì)胞培養(yǎng)不同時(shí)間(0、4、8、12、16、20、24 h)點(diǎn)后進(jìn)行細(xì)胞收集,按TRIzol說明書方法提取EMSCs總RNA,并用反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA。參照GenBank數(shù)據(jù)庫,以Primer primer 5.0計(jì)算機(jī)軟件設(shè)計(jì)引物;以甘油醛?3?磷酸脫氫酶(GAPDH)為內(nèi)參照,采用 RealTime?PCR 檢測(cè),反應(yīng)體系為:premix 10 μL、dye 0.4 μL、ddH2O 6.6 μL、上下游引物各 0.5 μL、樣本模板 2.0 μL;反應(yīng)條件參照產(chǎn)品說明。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,所用引物均由上海生工公司合成,各引物基因序列見表1。

    表1 各引物基因序列

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 使用SPSS11.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料以表示,多組間比較用ONE?WAY ANOVA方法,用Bonferroni校正法進(jìn)行多組間均數(shù)比較的校正,檢驗(yàn)水平α=0.05。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 胚胎發(fā)育18.5dEMSCs原代培養(yǎng)與分選后培養(yǎng) 通過組織塊法及膠原酶消化法成功獲得并培養(yǎng)了胚胎發(fā)育18.5 d胚胎時(shí)期牙胚來源EMSCs,與分選后第3代的p75NTR陽性EMSCs比較,利用p75NTR抗體分選后的細(xì)胞形態(tài)更為規(guī)則均一,為間充質(zhì)干細(xì)胞紡錘樣形態(tài),呈梭形或多邊形。見圖1。

    圖1 胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs原代及分選后培養(yǎng)

    2.2 胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs流式表面分子鑒定 通過流式細(xì)胞儀檢測(cè)胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs表面分子,細(xì)胞陽性表達(dá)的結(jié)果分別為CD14(93.58%)、CD29(95.16%)、CD44(98.66%)、CD90(92.72%)、CD105(28.50%)、CD146(95.21%)、CD166(97.23%)和 p75NTR(90.18%),陰性表達(dá) CD45(0.43%)。

    2.3 RealTime?PCR 檢測(cè) p75NTR、NGF、clock、per1、per2、Bmal1在血清休克實(shí)驗(yàn)后24 h內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)量 p75NTR與NGF的表達(dá)在血清休克后出現(xiàn)與per1、per2節(jié)律性基因表達(dá)趨勢(shì)相一致性的節(jié)律性震蕩,從0 h開始至16 h時(shí)間點(diǎn)呈下降趨勢(shì),而表達(dá)最低點(diǎn)在16 h左右,之后逐漸呈表達(dá)升高趨勢(shì);clock基因表達(dá)未出現(xiàn)周期性的節(jié)律震蕩,而Bmal1節(jié)律性表達(dá)出現(xiàn)提前性,表達(dá)最低點(diǎn)在12 h時(shí)間點(diǎn),要比其他基因表達(dá)時(shí)間提前4 h左右。見圖2。

    圖2 RealTime?PCR檢測(cè)各指標(biāo)在24 h內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)表達(dá)量

    3 討 論

    為研究p75NTR與EMSCs在牙發(fā)育中存在的重要作用,作者選擇SD大鼠胚胎頜突組織作為培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)主要對(duì)象EMSCs的來源。胚胎第12.5天的EMSCs是選擇作為牙發(fā)育啟動(dòng)期代表的EMSCs。前期研究中,課題組選擇牙發(fā)育啟動(dòng)期EMSCs作為實(shí)驗(yàn)研究主要對(duì)象,對(duì)此EMSCs群進(jìn)行純化,即采用p75NTR[9]被認(rèn)為是神經(jīng)嵴源性EMSCs的特異性標(biāo)志物[3]。對(duì)EMSCs進(jìn)行流式分選,所獲得細(xì)胞形態(tài)均一,能代表高純度神經(jīng)嵴源性 p75NTR 陽性的頜突 EMSCs(p75+EMSCs)[6]。進(jìn)而對(duì)p75+EMSCs進(jìn)行體外增殖及分化潛能的觀察,發(fā)現(xiàn)其在體外擴(kuò)增十代后p75+EMSCs增殖活性和細(xì)胞表型穩(wěn)定。并未發(fā)現(xiàn)明顯的自然分化現(xiàn)象,保持了良好的多項(xiàng)分化潛能。而要討論整個(gè)頜面部及牙發(fā)育初期及礦化節(jié)律線形成時(shí)期EMSCs存在的重要作用,只利用牙發(fā)育啟動(dòng)期(胚胎發(fā)育12.5 d)的EMSCs來進(jìn)行討論存在一定缺陷性。所以本研究以牙齒周期節(jié)律性礦化線形成作為主要研究目的,選擇牙發(fā)育鐘狀期(胚胎發(fā)育18.5 d)EMSCs,即來源于牙胚的頜突 EMSCs(即牙發(fā)育礦化前期)作為牙發(fā)育后期的代表,討論研究相關(guān)內(nèi)容。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),經(jīng)過分選的胚胎發(fā)育18.5 d EMSCs的形態(tài)呈更為均一、純度較高的梭邊形或多邊形,或間充質(zhì)干細(xì)胞紡錘樣形態(tài),流式細(xì)胞儀神經(jīng)嵴來源的EMSCs表面分子的鑒定,更確定了本研究主體細(xì)胞的身份。

    p75NTR作為腫瘤壞死因子超家族(TNFR)的成員,廣泛表達(dá)在神經(jīng)系統(tǒng)及外周系統(tǒng)里[14]。p75NTR參與了多種細(xì)胞內(nèi)信號(hào)分子的傳導(dǎo)并且調(diào)控多種生物學(xué)功能包括感覺神經(jīng)元的發(fā)生,肝組織及肌肉的再生,細(xì)胞外基質(zhì)的重建,糖代謝及礦化能力的調(diào)控。而大多數(shù)能夠調(diào)節(jié)代謝功能的基因都能夠被時(shí)鐘節(jié)律性所調(diào)控,而代謝的異常也與時(shí)鐘節(jié)律調(diào)控的紊亂存在相關(guān)性[15?17]。近年來,有研究表明,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)及外周系統(tǒng)中,p75NTR的節(jié)律性震蕩表達(dá)受到clock∕Bmal1復(fù)合體基因的調(diào)控,主要是clock∕Bmal1直接結(jié)合到p75NTR基因啟動(dòng)子中非經(jīng)典的E?BOX元件上對(duì)其節(jié)律性表達(dá)進(jìn)行干預(yù),而這二者復(fù)合體也大量地表達(dá)在除了視神經(jīng)上核之外的外周組織中[15,18],證明在外周組織中不同細(xì)胞中p75NTR受到的節(jié)律性調(diào)控也是由clock∕Bmal1主導(dǎo)。血清休克實(shí)驗(yàn)廣泛運(yùn)用在造成時(shí)鐘基因節(jié)律性震蕩表達(dá)[19],本研究中也利用血清休克實(shí)驗(yàn)體外模擬時(shí)鐘環(huán)境,證實(shí)了p75NTR在牙胚來源的EMSCs中也存在節(jié)律性表達(dá),并且震蕩模式與其配體NGF及時(shí)鐘節(jié)律相關(guān)基因per1[20]、per2[21]相一致,表明在外周組織包括牙發(fā)育相關(guān)組織中,p75NTR及其相關(guān)配體也存在時(shí)鐘節(jié)律性表達(dá)。NGF作為神經(jīng)生長(zhǎng)因子,不僅僅是對(duì)神經(jīng)細(xì)胞分化生長(zhǎng)存在促進(jìn)關(guān)系,而對(duì)細(xì)胞礦化分化也存在一定的影響,當(dāng)NGF的表達(dá)量在牙槽骨愈合時(shí)候能不斷升高[22],并且NGF能夠促進(jìn)下牙槽神經(jīng)及牙槽骨的愈合[23]。而本研究結(jié)果顯示,NGF也參與到時(shí)鐘節(jié)律性表達(dá)中,從一方面也支持了作者的猜想:p75NTR及其配體NGF參與到牙組織發(fā)育礦化節(jié)律線的形成中;本課題組前期研究也表明,p75NTR與NGF通過結(jié)合Mage?D1能夠調(diào)控EMSCs的礦化能力[13]。

    牙體硬組織的生長(zhǎng)線反映了基質(zhì)及相關(guān)蛋白生成,分泌在礦化過程中的節(jié)律性變化,并且受到多方面因素的調(diào)控。下丘腦視交叉上核是節(jié)律性的神經(jīng)中樞,在人類的各種生理活動(dòng)的節(jié)律中發(fā)揮決定性作用。在外周振蕩器接受下丘腦的節(jié)律性信號(hào),做出反應(yīng),調(diào)整相關(guān)基因表達(dá)形成節(jié)律。釉質(zhì)的橫紋及內(nèi)線與釉柱垂直,均代表了釉質(zhì)形成的晝夜節(jié)律性,內(nèi)線是釉柱橫紋間的 2~3 條線,而釉柱橫紋在人類中為 5.3 μm[10,24]。而人的牙齒牙本質(zhì)生長(zhǎng)線平均間隔為4~8 μm,周期也為1 d[10?11]。而不僅僅是牙體硬組織的鈣化,包括牙齒的萌出也存在晝夜節(jié)律性的變化[25?26],因此本研究及結(jié)合課題組前期研究[13]均支撐了p75NTR及其配體可能參與到牙體硬組織形成的節(jié)律性表象中,然而研究在繼續(xù)深入的過程中仍然可以對(duì)礦化相關(guān)基因、細(xì)胞外基質(zhì)形成,以及外泌體等對(duì)礦化線存在影響的因素進(jìn)行監(jiān)測(cè),進(jìn)一步完善牙發(fā)育及組織工程應(yīng)用的基本理論。

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