蔡東高 傅永慧 呂游 曾輝 孫旭
中國醫(yī)科大學附屬盛京醫(yī)院第四骨科(沈陽 110000)
近些年來,前交叉韌帶(anterior cruciate liga?ment,ACL)損傷重建術后本體感覺的恢復被廣泛重視。前交叉韌帶損傷導致的膝關節(jié)不穩(wěn)定,會引起繼發(fā)性關節(jié)炎和半月板損傷,嚴重影響患者的日常生活和運動功能[1-3]。膝關節(jié)穩(wěn)定性的重建,不僅需要前交叉韌帶生物力學的重建,更依賴于術后本體感覺的恢復[4,5]。神經(jīng)營養(yǎng)素3對傳導本體感覺的神經(jīng)的生長發(fā)育和生理功能的發(fā)揮起著重要作用[6],且前交叉韌帶重建術后的肌腱移植物內(nèi)能夠檢測到神經(jīng)營養(yǎng)素-3的表達[7,8],但神經(jīng)營養(yǎng)素-3與前交叉韌帶損傷后本體感覺恢復的關系尚不清楚。因此,本實驗通過構建帶有人神經(jīng)營養(yǎng)素-3(human neurotrophin3,NT3)基因的重組腺病毒載體,體內(nèi)轉染給自體半腱肌肌腱移植物,使得hNT-3在肌腱移植物內(nèi)過表達,而后測量體感誘發(fā)電位(somatosensory evoked potential,SEP)、腘繩肌肌電圖(electromyography,EMG)的改變和本體感受器數(shù)目的變化,旨在探討神經(jīng)營養(yǎng)素-3對前交叉韌帶損傷重建術后本體感覺的恢復是否有促進作用。
健康的日本大耳白兔42只,雌雄不限,體重2~3.1 kg,平均2.62 kg,由遼寧長生生物技術股份有限公司提供。
重組腺病毒載體(adenovirus-mediated human neurotrophin3,Ad hNT-3)與腺病毒空載體(adenovirusmediated green fluorescent protein,Ad GFP)的構建,腺病毒的包裝、濃縮以及滴度的測定均由上海漢恒生物科技有限公司完成,滴度1.26×1011PFU/mL。鼠抗兔S-100單克隆抗體(北京博士德生物技術有限公司),免疫組化試劑盒(福建邁新生物技術開發(fā)有限公司),OCT包埋劑(北京中杉金橋生物技術有限公司),石蠟切片機(Thermo,HM340E),冰凍切片機(Thermo,HM525),誘發(fā)電位儀(日本光電,MEB2200),熒光顯微鏡(Nikon,E800),圖像采集軟件(NIS-Elements F3.0)。
1.3.1 實驗動物分組
42只實驗動物隨機分成A、B、C三組,每組14只。A組:單側后肢膝關節(jié)前交叉韌帶損傷重建術后,自體半腱肌肌腱移植物內(nèi)用微量注射器多點注射20 μl滴度1.26×1011PFU/mL的Ad hNT-3。B組:單側膝關節(jié)前交叉韌帶損傷重建術后,自體半腱肌肌腱移植物內(nèi)用微量注射器多點注射20 μl Ad GFP。C組:單側膝關節(jié)前交叉韌帶損傷重建術后,自體半腱肌肌腱移植物內(nèi)用微量注射器多點注射20 μl的生理鹽水。
1.3.2 動物模型的建立
術前實驗動物禁食水12 h,稱量體重(kg),以3%戊巴比妥鈉溶液(1 ml/kg)耳緣靜脈注射進行麻醉,根據(jù)觀察角膜反射是否消失,適當增減麻醉劑量。用電動剃毛刀剃凈術肢膝關節(jié)手術區(qū)域毛發(fā),以手術切口為中心由內(nèi)向外用碘伏進行消毒,反復3次,鋪無菌洞巾。切開皮膚,采用髕旁內(nèi)側入路,切開髕韌帶,將髕骨外推暴露出關節(jié)腔及前交叉韌帶(圖1b),用手術刀將前交叉韌帶在脛骨和股骨止點處完全切斷(圖1c)。用鉆頭直徑2 mm的手工鉆取脛骨近端內(nèi)側和股骨遠端外側髁的骨隧道(圖1d、e)。在脛骨結節(jié)內(nèi)上方3~4 cm處切開肌肉表面筋膜,用止血鉗分離肌肉組織,暴露分離出半腱肌肌腱。取3 cm長度的半腱肌肌腱(圖1a),兩端用2-0外科縫合線縫合后牽引通過骨髓道,兩端固定于周圍骨膜和軟組織,使肌腱移植物保持適當?shù)膹埩Γ▓D1f)。前交叉韌帶重建后,根據(jù)以上分組情況對自體半腱肌肌腱移植物進行微量注射器多點注射(圖1g)。用生理鹽水配置的青霉素溶液清洗關節(jié)腔后,逐層關閉切口。術后不限制實驗動物活動,每天給予20萬單位的青霉素,持續(xù)1周。
1.4.1 一般情況
觀察術后實驗動物存活狀況、飲食狀況、關節(jié)活動情況以及傷口愈合情況;觀察各時間點取材時肌腱移植物兩端固定有無松解脫落。
1.4.2 綠色熒光蛋白檢測
術后48 h,分別從A、B、C三組中取2只兔,過量麻醉法處死后,取出肌腱移植物,放入4%的多聚甲醛中固定24 h,接著30%的蔗糖溶液沉底,最后放入液氮中保存?zhèn)溆?,整個過程要避光。將肌腱從液氮中取出來后,用OCT包埋劑包埋后進行冰凍切片,厚度為7 μm。暗室內(nèi),在熒光顯微鏡藍光激發(fā)下觀察綠色熒光蛋白(GFP)。
圖1 前交叉韌帶重建術
1.4.3 電生理學指標檢測
術后8、16、24周,分別從A、B、C 三組中各取4只兔子進行麻醉,角膜反射消失后固定頭部和四肢,沿原來的手術切口進入,打開關節(jié)腔并暴露半腱肌肌腱移植物。先確定兩眶后緣連線與前正中線的交點,由交點向后0.5 cm并旁開0.2 cm作為記錄電極點,并于鼻根部皮下放置皮層參考電極,后肢近端用皮下電極接地測定體感誘發(fā)電位(SEPs)。然后將記錄電極放置于腘繩肌肌腹,參考電極放置于內(nèi)踝部做肌電圖(EMG)檢查。雙極表面電極刺激肌腱移植物兩端脛骨和股骨附著點處,刺激強度 18~20 V。記錄并分析SEPs和 EMG潛伏期和波幅。
1.4.4 免疫組織化學染色和HE染色
上述電生理學指標檢測后,以過量麻醉法處死動物。取出半腱肌肌腱移植物,放入4%的多聚甲醛中固定24 h。經(jīng)不同濃度梯度的乙醇脫水、二甲苯透明、石蠟包埋后切片,切片厚度4 μm。每一個標本進行連續(xù)切片,切片后再分別進行HE染色和S-100抗體的免疫組化染色,來觀察組織切片的大體形態(tài)以及本體感受器的形態(tài)和數(shù)量。免疫組化大體步驟:石蠟切片脫蠟和水化后,PBS沖洗;檸檬酸鈉緩沖液組織抗原修復;阻斷內(nèi)源性過氧化物酶活性;PBS沖洗,滴加血清,室溫孵育;滴加鼠抗兔S-100單克隆抗體,4℃過夜;PBS沖洗,滴加生物素標記的二抗,室溫孵育10分鐘;PBS沖洗,滴加鏈霉素抗生物素-過氧化物酶溶液,室溫孵育10分鐘;PBS沖洗,DAB顯色;蘇木素復染,流水反藍;梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片觀察。
采用 SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進行分析。計量資料以均數(shù) ±標準差表示,各組間比較采用單因素方差分析,使用 K-S檢驗進行正態(tài)性檢驗,使用 Bartlett檢驗進行方差齊性檢驗。檢驗水準α=0.05。
術后A組中1只兔不明原因死亡,給予相應補充。取材時C組中1只兔肌腱移植物股骨端脫落,造模失敗,給予相應補充。其他實驗動物術后傷口愈合良好,肢體活動正常,取材時肌腱移植物張力良好。
轉染48 h后,A、B兩組中可見大量綠色熒光蛋白表達(圖2),C組中未見熒光。
圖2 熒光顯微鏡觀察(×20)
A、B、C三組中體感誘發(fā)電位和肌電圖的潛伏期隨著術后恢復時間的延長而縮短,波幅隨著術后恢復時間的延長而延長;術后8、16、24周的各個時間點,A組體感誘發(fā)電位和肌電圖的潛伏期短于B、C兩組,波幅高于B、C兩組(表1),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),而B、C兩組比較無明顯統(tǒng)計學差異(P>0.05)。
表1 3組 SEPs及 EMG 潛伏期和波幅變化比較(n=4,±s)
表1 3組 SEPs及 EMG 潛伏期和波幅變化比較(n=4,±s)
注:*P<0.05,B、C兩組在不同的時間段與A組比較;#P<0.05,表示3組內(nèi)第16 w、24 w與第8 w比較。
組別A組8 w 16 w 24 w B組8 w 16 w 24 w C組8 w 16 w 24 w SEPs EMG潛伏期(ms) 波幅(μV) 潛伏期(ms) 波幅(μV)30.89±1.22 24.93±0.49#20.69±1.01#6.48±0.75 8.41±0.49#12.97±1.16#19.71±1.25 16.63±0.99#12.86±1.28#0.22±0.04 0.25±0.02#0.34±0.02#35.37±1.21*29.09±0.59*#25.22±0.97*#3.79±0.96*5.63±0.90*#8.31±1.47*#25.07±1.28*21.03±1.42*#17.65±1.96*#0.12±0.02*0.17±0.02*#0.23±0.02*#0.12±0.02*0.18±0.02*#0.24±0.01*#34.61±1.39*29.06±1.76*#25.88±0.93*#3.94±0.23*5.76±0.93*#8.60±1.37*#24.80±1.61*21.30±0.50*#17.47±0.46*#
通過對組織石蠟切片的S-100抗體免疫組織化學染色和HE染色,可見4種形態(tài)結構的本體感受器:環(huán)層小體、魯菲尼小體、高爾基樣腱器官、游離神經(jīng)末梢(由于游離神經(jīng)末梢結構不典型,故在國內(nèi)外研究中不用于計數(shù),故僅在圖中用星形標記了一部分)(圖3、圖4、圖5)。A、B、C三組中本體感受器的數(shù)目隨著術后恢復時間的延長而增加;且相同的時間點,A組本體感受器的數(shù)目多于B、C兩組(表2),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),而B、C兩組本體感受器數(shù)目相比較無明顯統(tǒng)計學差異(P>0.05)。
圖3 A組免疫組織化學染色(×40)
圖4 B組免疫組織化學染色(×40)
表2 3組本體感受器的數(shù)目比較(n=4,±s)(不包括游離神經(jīng)末梢)
表2 3組本體感受器的數(shù)目比較(n=4,±s)(不包括游離神經(jīng)末梢)
*P<0.05,B、C兩組在不同的時間段與A組比較;#P<0.05,表示3組內(nèi)第16 w、24 w與第8 w比較。
A組B組C組8 w9.25±1.165.25±0.74*5.75±0.74*16 w13.25±0.97#9.5±1.00*#9.75±0.97*#24 w 18±1.10#12.25±0.97*#12.5±1.34*#
圖5 C組免疫組織化學染色(×40)
前交叉韌帶是維持膝關節(jié)穩(wěn)定的重要結構,除了其生物力學功能外,還有本體感覺功能。當關節(jié)受到牽拉刺激,前交叉韌帶中的機械感受器會將刺激信號通過相關神經(jīng)傳導通路,經(jīng)脊髓傳導至大腦皮質(zhì),大腦分析處理后發(fā)出指令調(diào)節(jié)關節(jié)活動[9,10]。Freeman[11]結合之前許多學者對機械感受器的研究,用改良氯化金染色法對ACL中的機械感受器進行了形態(tài)學分類:Ⅰ類為 Ruffini小體,呈樹狀或卵圓形,被膜較??;Ⅱ類為 Pacinian小體,呈圓形或橢圓形,被膜較厚;Ⅲ類為Golgi樣腱器官,呈梭形,被膜較薄;Ⅳ類為游離神經(jīng)末梢,無髓鞘神經(jīng)末梢,這種分類方法也是目前公認的分類標準。近年來,有研究者用S-100抗體進行ACL本體感受器的免疫組織化學染色,也能夠清晰地觀察到本體感受器[12,13],此方法跟傳統(tǒng)的氯化金染色法相比,特異性和敏感性更高。本實驗就是采用鼠抗兔S-100單克隆抗體進行免疫組織化學染色,觀察到了自體肌腱移植物內(nèi)4種不同類型的機械感受器:環(huán)層小體、魯菲尼小體、高爾基樣腱器官、游離神經(jīng)末梢,且主要分布在肌腱移植物兩端的股骨和脛骨附著點處,這與Zimny[14]等發(fā)現(xiàn)的人ACL的感受器主要分布 于ACL的股骨和脛骨附著點處的觀點相一致。
由于膝關節(jié)運動形式復雜多變 ,本體感覺測量的內(nèi)容也多種多樣,主要有主動或被動角度重現(xiàn)法、閾值測量法、視覺模型法、體感誘發(fā)電位和肌電圖測量法[15-17]。每種測量方法都有一定的局限性,而SEPs和EMG的測量在動物實驗中被廣泛應用。本研究中,hNT-3過表達的組別中,SEPs和EMG的潛伏期縮短,波幅升高,提示hNT-3能夠促進ACL重建術后本體感覺的恢復。在A、B、C各組中,術后16周的SEPs和EMG的潛伏期短于術后8周但長于術后24周,術后16周的SEPs和EMG的波幅高于術后8周但低于術后24周;術后16周的本體感受器數(shù)量多于術后8周但少于術后24周,這表明前交叉韌帶重建術后本體感覺的恢復有著很強的時間依賴性,隨著術后時間的延長,本體感覺逐漸恢復。
神經(jīng)營養(yǎng)素是一類參與神經(jīng)系統(tǒng)生長發(fā)育和損傷修復的蛋白質(zhì)家族,其功能包括促進神經(jīng)元軸突生長、突觸以及髓鞘的形成[18]。Narazaki[19]等的研究表明,神經(jīng)營養(yǎng)素-3能夠促進脊髓損傷修復,改善實驗動物的肢體活動;Sterne等[20]發(fā)現(xiàn)在大鼠坐骨神經(jīng)局部應用NT-3可促進坐骨神經(jīng)損傷的修復再生,說明NT-3對中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外周神經(jīng)系統(tǒng)都發(fā)揮著重要作用。相關研究表明存在肌梭源性NT-3[21],故外源性NT-3可能有利于建立局部微環(huán)境,促進神經(jīng)纖維的長入和本體感受器的再生過程。腺病毒結構簡單,感染率高,易于培養(yǎng)和純化,且不整合宿主基因組,具有較高的安全性,這些優(yōu)點使以腺病毒作為載體的基因治療迅速發(fā)展。本實驗研究發(fā)現(xiàn),腺病毒介導的hNT-3轉染能夠促進ACL損傷重建術后移植物內(nèi)本體感受器的再生和本體感覺的恢復,為臨床上前交叉韌帶損傷的治療提供新的思路。
本實驗存在的不足:實驗動物樣本量較少,缺乏足夠的說服力;術后觀察的時間較短,遠期效果有待進一步驗證;外源性NT-3促進前交叉韌帶重建術后本體感受器再生的機制有待進一步探究;本實驗中,腺病毒體內(nèi)最佳轉染滴度有待進一步探究;腺病毒體內(nèi)轉染后的具體表達時間及表達量尚不清楚。