苗華榮,楊偉強(qiáng),胡曉輝,張勝忠,崔鳳高,陳 靜
(山東省花生研究所,山東 青島 266100)
栽培種花生(A.hypogaeaL.)為異源四倍體,是世界上重要的油料作物,廣泛分布于世界半干旱區(qū)域。2010-2014年,全球種植面積為25.27百萬(wàn)hm2,產(chǎn)量達(dá)到42.27百萬(wàn)t[1]。分子遺傳圖譜廣泛應(yīng)用于基因定位、圖位克隆以及分子標(biāo)記輔助育種。目前,遺傳圖譜通常包含RFLP、AFLP、SSR、SNP標(biāo)記。自2001年以來(lái),共27個(gè)四倍體花生遺傳連鎖圖譜公布,其中23個(gè)遺傳圖譜是基于栽培種花生構(gòu)建的,4個(gè)是栽培種花生與合成四倍體花生構(gòu)建的[2-17]?;谶z傳圖譜,花生重要性狀的QTL定位取得了一定進(jìn)展,張新友[18]運(yùn)用栽培種RIL群體和F2群體定位了與產(chǎn)量、品質(zhì)等性狀相關(guān)的62個(gè)QTL;Shirasawa等[12]基于栽培種花生遺傳圖譜,獲得了與開(kāi)花日期、分枝角度、主莖高、莢果長(zhǎng)、莢果厚、莢果寬的QTL;Wang等[19]利用栽培種花生Tifrunner×GT-C20構(gòu)建的群體定位到與番茄斑萎病毒(TSWV)、葉斑病相關(guān)的QTL;Huang等[8]利用RIL群體對(duì)3個(gè)環(huán)境下花生株高進(jìn)行了QTL分析;Pandey等和Wang等[9,20]分別利用SunOleic97R×NC94022和Tifrunner×GT-C20構(gòu)建的RIL群體對(duì)花生脂肪酸和油脂含量進(jìn)行了QTL分析;成良強(qiáng)等[21]利用富川大花生×ICG6375構(gòu)建的F2群體和F3家系對(duì)花生主莖高和總分枝數(shù)進(jìn)行了QTL分析。
目前,花生耐鹽性研究主要集中在不同耐鹽鑒定方法的探索[22-23]、花生耐鹽性種質(zhì)資源鑒定和評(píng)價(jià)[24]、鹽脅迫下花生生理特性變化以及鹽脅迫對(duì)花生品質(zhì)影響等方面[25-26],但是對(duì)花生耐鹽分子遺傳機(jī)理的研究鮮見(jiàn)報(bào)道。本研究利用花育28號(hào)和P76構(gòu)建的RIL群體,對(duì)2013,2014年2個(gè)年份鹽脅迫下的表型進(jìn)行調(diào)查,基于構(gòu)建的高密度遺傳連鎖圖譜,開(kāi)展花生鹽脅迫下相關(guān)性狀的QTL分析,對(duì)花生耐鹽基因的挖掘具有重要意義。
以花育28號(hào)和P76為親本構(gòu)建的RIL群體為試材?;ㄓ?8號(hào)由山東省花生研究所育成,通過(guò)了山東省農(nóng)作物品種審定委員會(huì)審定;P76為來(lái)源于山東省花生研究所的高油酸品系,RIL群體包含146個(gè)株系。2013年(F2∶9)和2014年(F2∶10)材料種植于山東省花生研究所試驗(yàn)站,2013,2014年收獲后晾干備用。
1.2.1 幼苗期耐鹽性鑒定 選取親本和RIL群體各株系飽滿種子40粒于雙層濾紙的培養(yǎng)皿中,置于黑暗條件下人工培養(yǎng)箱(28~30 ℃)中進(jìn)行培養(yǎng),3 d后選擇芽長(zhǎng)約2 cm生長(zhǎng)狀況良好且相對(duì)一致的花生種子移栽至2組裝滿純水的花生種子發(fā)芽盒A、B中,放置在人工氣候室內(nèi),在29 ℃條件下培養(yǎng)至幼苗長(zhǎng)成“兩葉一心”后對(duì)A、B這2組進(jìn)行處理,種子發(fā)芽盒中溶液的鹽濃度分別為0,0.75%,之后每2 d換一次鹽溶液和純水,處理7~9 d后從A、B 2組中各挑選不同株系的長(zhǎng)勢(shì)大致相同的花生幼苗3株為樣本進(jìn)行測(cè)量,測(cè)定各株高、主根長(zhǎng)、莖葉干質(zhì)量、根干質(zhì)量、莖葉鮮質(zhì)量、根鮮質(zhì)量;重復(fù)3次。
花生耐鹽性指標(biāo):耐鹽指數(shù)=鹽處理值/對(duì)照值。將各指標(biāo)轉(zhuǎn)化為相對(duì)值;利用Excel對(duì)各耐鹽堿指標(biāo)進(jìn)行分析。
1.2.2 圖譜構(gòu)建和QTL分析 利用RIL群體構(gòu)建了包含2 334個(gè)標(biāo)記的高密度遺傳圖譜,該圖譜包含68個(gè)SSR標(biāo)記和2 266個(gè)SLAF標(biāo)記,覆蓋全基因組圖距為2 586.37 cM,分布于20個(gè)連鎖群,標(biāo)記間的平均距離為2.25 cM。應(yīng)用完備區(qū)間作圖軟件IciMapping v3.0(http://www. isbreeding.net/)[27]對(duì)表型值進(jìn)行QTL分析。LOD閾值經(jīng)1 000次模擬計(jì)算后得到,其中將 LOD 值低于 2.5 的 QTL 忽略,以增加 QTL 檢測(cè)的準(zhǔn)確性與可靠性。
QTL 命名方法按照 QTL+性狀+群體名稱+染色體+QTL 數(shù)。其中,QTL 以 q 表示,性狀和群體以英文縮寫(xiě)表示,染色體以花生染色體表示,染色體上 QTL 數(shù)目以數(shù)字表示,性狀與群體名稱間加“-”,群體名稱和染色體間加“-”,染色體和 QTL 數(shù)間加“.”。如qSmsh-HP-A10.1表示A10 染色體上鹽脅迫株高(SMSH)的 QTL,HP為花育28號(hào)×P76構(gòu)建的 RIL 群體的縮寫(xiě),1 表示該染色體上的第一個(gè)鹽脅迫株高的 QTL。
在0.75%鹽濃度條件培育下,花育28號(hào)和P76各測(cè)定指標(biāo)的絕對(duì)值和相對(duì)值表現(xiàn)有一定差異(表1)。鹽脅迫下花育28號(hào)株高、主根長(zhǎng)(2013年除外)、莖葉干質(zhì)量、根干質(zhì)量、莖葉鮮質(zhì)量、根鮮質(zhì)量的相對(duì)值均高于P76。各指標(biāo)的偏度和峰度絕對(duì)值表現(xiàn)有差異,鹽脅迫下根干質(zhì)量(2014年)絕對(duì)值的峰度為3.72,其他指標(biāo)的峰度絕對(duì)值均小于1或接近1;鹽脅迫下根系相關(guān)指標(biāo)相對(duì)值的峰度偏高,而地上指標(biāo)相對(duì)值的峰度較低;這些性狀表現(xiàn)為連續(xù)變異,每個(gè)性狀都表現(xiàn)超親分離,且多數(shù)性狀頻數(shù)分布基本符合正態(tài)分布;表明為多基因控制的數(shù)量性狀,適合進(jìn)行 QTL 定位分析。
表1 RIL 群體及其親本的鹽脅迫相關(guān)性狀在不同環(huán)境下的表現(xiàn)Tab.1 Evaluation of traits related to salt stress of the RIL populations and their parents in different environments
利用IciMapping對(duì)鹽脅迫下各表型絕對(duì)值進(jìn)行分析,獲得13個(gè)相關(guān)的QTL,分布于10個(gè)連鎖群上。其中,株高相關(guān)的QTL 3個(gè):qSmsh-HP-A10.1、qSmsh-HP-B02.1和qSmsh-HP-B05.1分別位于A10、B02和B05染色體,解釋的表型變異分別是4.13%,4.79%和6.69%,加性效應(yīng)分別為0.36,0.40和-0.44,其中qSmsh-HP-A10.1、qSmsh-HP-B02.1的增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào),qSmsh-HP-B05.1的增效等位基因來(lái)源于P76。主根長(zhǎng)相關(guān)的QTL 2個(gè):qSrl-HP-A03.1和qSrl-HP-A06.1分別位于A03、A06染色體,解釋的表型變異分別是5.63%,4.17%,加性效應(yīng)分別為0.32,0.21,二者的增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào)。莖葉干質(zhì)量相關(guān)的QTL 2個(gè):qSwdp-HP-A08.1和qSwdp-HP-A07.1分別位于A08、A07染色體,解釋的表型變異分別是4.99%,3.08%,二者的增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào)。莖葉鮮質(zhì)量相關(guān)的QTL 4個(gè):qSwfp-HP-A04.1、qSwfp-HP-B02.1、qSwfp-HP-B03.1、qSwfp-HP-B07.1分別位于A04、B02、B03和B07染色體,解釋的表型變異分別是6.13%,5.73%,6.88%和5.30%,qSwfp-HP-A04.1的增效等位基因來(lái)源于P76,qSwfp-HP-B02.1、qSwfp-HP-B03.1、qSwfp-HP-B07.1的增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào)。根鮮質(zhì)量相關(guān)的QTL個(gè):qSwfr-HP-B03.1、qSwfr-HP-B03.2均位于B03染色體,解釋的表型變異分別是2.81%,3.12%,二者的增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào)。
對(duì)鹽脅迫下各指標(biāo)相對(duì)值進(jìn)行分析表明,檢測(cè)到株高相對(duì)值相關(guān)的QTL 3個(gè):qRmsh-HP-A06.1、qRmsh-HP-B02.1和qRmsh-HP-B04.1分別位于A06、B02和B04染色體,解釋的表型變異分別是3.01%,2.80%和3.47%,其增效等位基因均來(lái)源于花育28號(hào)。檢測(cè)到主根長(zhǎng)相對(duì)值相關(guān)的QTL 2個(gè):qRrl-HP-A08.1、qRrl-HP-B06.1分別位于A08、B06染色體,解釋的表型變異分別是16.72%,22.42%,其增效等位基因來(lái)源于P76。檢測(cè)到莖葉鮮質(zhì)量相對(duì)值相關(guān)的QTL 1個(gè):qRwfp-HP-B02.1位于B02染色體,解釋的表型變異分別是5.43%,其增效等位基因來(lái)源于花育28號(hào)。
對(duì)比發(fā)現(xiàn),在B02染色體上檢測(cè)到4個(gè)QTL(表2、圖1),分別為qSmsh-HP-B02.1、qSwfp-HP-B02.1、qRmsh-HP-B02.1、qRwfp-HP-B02.1,其控制鹽脅迫下絕對(duì)株高、相對(duì)株高、絕對(duì)莖葉鮮質(zhì)量和相對(duì)莖葉鮮質(zhì)量,qSmsh-HP-B02.1、qSwfp-HP-B02.1、qRwfp-HP-B02.1兩端的標(biāo)記為Ah1TC1B02和Marker774175,qRmsh-HP-B02.1兩端的標(biāo)記為Marker774175和Marker911824,4個(gè)QTL的增效等位基因均來(lái)源于花育28號(hào)。
表2 鹽脅迫相關(guān)性狀的 QTL 檢測(cè)結(jié)果Tab.2 QTLs for traits related to salt stress
圖1 鹽脅迫下絕對(duì)株高、相對(duì)株高、絕對(duì)莖葉鮮質(zhì)量和相對(duì)莖葉鮮質(zhì)量相關(guān)QTL在全基因組上的分布Fig.1 QTL overviews of absolute and relative value of main stem height and shoot fresh weight on salt stress
花生生長(zhǎng)的各個(gè)時(shí)期耐鹽性表現(xiàn)不同。吳蘭榮等[23]對(duì)花生全生育期進(jìn)行耐鹽性鑒定,表明花生芽期和幼苗期是對(duì)鹽害最敏感時(shí)期,花生芽期耐鹽性與后期耐鹽性無(wú)明顯相關(guān)。因此,本試驗(yàn)將幼苗期作為花生耐鹽性重要時(shí)期進(jìn)行QTL定位。根據(jù)前期大量不同鹽濃度處理結(jié)果,選用0.75%鹽濃度作為水培條件下花生耐鹽性鑒定濃度。對(duì)于花生耐鹽性鑒定指標(biāo),慈敦偉等[22]采用盆栽試驗(yàn),開(kāi)展花生苗期耐鹽性評(píng)價(jià)及耐鹽指標(biāo)篩選,認(rèn)為地上部形態(tài)和生物量可作為耐鹽評(píng)價(jià)的首選指標(biāo),而主根長(zhǎng)和出苗速度可作為輔助指標(biāo)用以判斷花生品種的綜合耐鹽能力。本研究選用鹽脅迫下主莖高、莖葉鮮質(zhì)量、莖葉干質(zhì)量、主根長(zhǎng)、根鮮質(zhì)量、根干質(zhì)量作為調(diào)查指標(biāo)研究花生的耐鹽性。
花生耐鹽性分子生物學(xué)的研究集中于轉(zhuǎn)外源基因?qū)τ诨ㄉ望}性影響和花生耐鹽相關(guān)基因的克隆。王亞等[28]通過(guò)花粉管通道法,將攜帶條斑紫菜PyTPS基因的pCAMBIA2300-PyTPS重組載體導(dǎo)入花生;宗自衛(wèi)等[29]將甜茶堿BADH基因轉(zhuǎn)入花生;表明轉(zhuǎn)基因植株比對(duì)照植株耐鹽性有所提高。王寶枝[30]克隆出了花生中的2種耐鹽基因液泡膜 Na+/H+逆轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白NHX1 基因和多胺生物合成中的一個(gè)關(guān)鍵的調(diào)節(jié)酶SAMDC基因;Chen等[31]通過(guò)序列分析及同源性比對(duì)方法從花生已有cDNA文庫(kù)中篩選到6個(gè)AP2/ERF家族轉(zhuǎn)錄因子基因,并獲得其全長(zhǎng),轉(zhuǎn)基因擬南芥表明,AhERF6轉(zhuǎn)入擬南芥中能夠增強(qiáng)轉(zhuǎn)基因植株鹽脅迫下鹽脅迫相關(guān)關(guān)鍵基因的表達(dá)。而目前關(guān)于花生耐鹽性QTL的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。本研究檢測(cè)到13個(gè)鹽脅迫下各指標(biāo)絕對(duì)值相關(guān)的QTL,分布于10個(gè)連鎖群上;檢測(cè)到6個(gè)鹽脅迫下各指標(biāo)相對(duì)值相關(guān)的QTL。在B02染色體上檢測(cè)到1個(gè)QTL熱點(diǎn)區(qū),包含4個(gè)QTL:qSmsh-HP-B02.1、qSwfp-HP-B02.1、qRmsh-HP-B02.1、qRwfp-HP-B02.1,控制鹽脅迫下株高和莖葉鮮質(zhì)量,其貢獻(xiàn)率分別4.79%,5.73%,2.80%和5.43%,增效等位基因均來(lái)源于花育28號(hào),qRmsh-HP-B02.1兩端標(biāo)記為Marker774175和Marker911824,其他3個(gè)QTL兩端標(biāo)記為Ah1TC1B02和Marker774175。這種熱點(diǎn)區(qū)對(duì)于深入研究花生耐鹽機(jī)制具有重要意義。
本研究基于RIL群體表型數(shù)據(jù)和高密度遺傳圖譜,檢測(cè)到19個(gè)鹽脅迫下相關(guān)的QTL。檢測(cè)到1個(gè)QTL熱點(diǎn)區(qū),位于B02染色體,包含4個(gè)QTL:qSmsh-HP-B02.1、qSwfp-HP-B02.1、qRmsh-HP-B02.1、qRwfp-HP-B02.1,鹽脅迫下株高和莖葉鮮質(zhì)量,增效等位基因均來(lái)源于花育28號(hào)。這種熱點(diǎn)區(qū)對(duì)于深入研究花生耐鹽機(jī)制具有重要意義。
參考文獻(xiàn):
[1] Hu X X, Zhang S Z, Miao H R, et al. High-density genetic map construction and identifcation of QTLs controlling Oleic and Linoleic acid in peanut using SLAF-seq and SSRs[J]. Scientific Reports,2018,8(1): 5479.
[2] Bertioli D J,Cannon S B,F(xiàn)roenicke L,et al. The genome sequences ofArachisduranensisandArachisipaensis,the diploid ancestors of cultivated peanut[J]. Nature Genetics,2016,48(4):438-446.
[3] Chen W,Jiao Y,Cheng L,et al. Quantitative trait locus analysis for pod-and kernel-related traits in the cultivated peanut(ArachishypogaeaL.)[J].BMC Genetics,2016,17:25.
[4] Foncéka D,Hodo-Abalo T,Rivallan R,et al. Genetic mapping of wild introgressions into cultivated peanut:a way toward enlarging the genetic basis of a recent allotetraploid[J].BMC Plant Biology,2009,9(1):103.
[5] Gautami B,F(xiàn)oncéka D,Pandey M K,et al. An international reference consensus genetic map with 897 marker loci based on 11 mapping populations for tetraploid groundnut(ArachishypogaeaL.)[J]. PLoS One,2012,7(7):e41213.
[6] Hong Y,Chen X,Liang X,et al. A SSR-based composite genetic linkage map for the cultivated peanut(ArachishypogaeaL.)genome[J]. BMC Plant Biology,2010,10:17.
[7] Huang L,He H,Chen W,et al. Quantitative trait locus analysis of agronomic and quality-related traits in cultivated peanut(ArachishypogaeaL.)[J]. Theoretical and Applied Genetics,2015,128(6):1103-1115.
[8] Huang L,Ren X,Wu B,et al. Development and deployment of a high-density linkage map identified quantitative trait loci for plant height in peanut(ArachishypogaeaL.)[J]. Scientific Reports,2016,6:39478.
[9] Pandey M K,Wang M L,Qiao L,et al. Identification of QTLs associated with oil content and mappingFAD2 genes and their relative contribution to oil quality in peanut(ArachishypogaeaL.)[J].BMC Genetics,2014,13315(1):1-14.
[10] Qin H D,F(xiàn)eng S P,Chen C,et al. An integrated genetic linkage map of cultivated peanut(ArachishypogaeaL.)constructed from two RIL populations[J]. Theoretical and Applied Genetics,2012,124(4):653-664.
[11] Shirasawa K,Bertioli D J,Varshney R K,et al. Integrated consensus map of cultivated peanut and wild relatives reveals structures of the A and B genomes of Arachis and divergence of the legume genomes[J]. DNA Research :an International Journal for Rapid Publication of Reports on Genes and Genomes,2013,20(2):173-184.
[12] Shirasawa K,Koilkonda P,Aoki K,et al. In silico polymorphism analysis for the development of simple sequence repeat and transposon markers and construction of linkage map in cultivated peanut[J]. BMC Plant Biol,2012,12(1):80.
[13] Sujay V,Gowda M V,Pandey M K,et al. Quantitative trait locus analysis and construction of consensus genetic map for foliar disease resistance based on two recombinant inbred line populations in cultivated groundnut(ArachishypogaeaL.)[J]. Molecular Breeding:New Strategies in Plant Improvement,2012,30(2):773-788.
[14] Varshney R K,Bertioli D J,Moretzsohn M C,et al. The first SSR-based genetic linkage map for cultivated groundnut(ArachishypogaeaL.)[J]. Theoretical and Applied Genetics,2009,118(4):729-739.
[15] Wang H,Penmetsa R V,Yuan M,et al. Development and characterization of BAC-end sequence derived SSRs,and their incorporation into a new higher density genetic map for cultivated peanut(ArachishypogaeaL.)[J].BMC Plant Biol,2012,12(1):10.
[16] Zhao Y,Zhang C,Chen H,et al. QTL mapping for bacterial wilt resistance in peanut(ArachishypogaeaL.)[J].Molecular Breeding,2016,36(2):13.
[17] Zhou X,Xia Y,Ren X,et al. Construction of a SNP-based genetic linkage map in cultivated peanut based on large scale marker development using next-generation double-digest restriction-site-associated DNA sequencing(ddRADseq)[J].BMC Genomics,2014,15(1):351.
[18] 張新友. 栽培花生產(chǎn)量、品質(zhì)和抗病性的遺傳分析與QTL定位研究[D]. 杭州:浙江大學(xué),2011.
[19] Wang H,Pandey M K,Qiao L X,et al. Genetic mapping and QTL analysis for disease resistance using F2and F5generation based genetic maps derived from Tifrunner GT-C20 in peanut(ArachishypogaeaL.)[J]. The Plant Genome,2013.DOI:10.3835.
[20] Wang M L,Khera P,Pandey M K,et al. Genetic mapping of QTLs controlling fatty acids provided insights into the genetic control of fatty acid synthesis pathway in peanut(ArachishypogaeaL.)[J]. PLoS One,2015,10(4):e0119454.
[21] 成良強(qiáng),唐 梅,任小平,等. 栽培種花生遺傳圖譜的構(gòu)建及主莖高和總分枝數(shù)QTL分析[J]. 作物學(xué)報(bào),2015,41(6):979-987.
[22] 慈敦偉,張智猛,丁 紅,等. 花生苗期耐鹽性評(píng)價(jià)及耐鹽指標(biāo)篩選[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),2015,35(3):805-814.
[23] 吳蘭榮,陳 靜,許婷婷,等. 花生全生育期耐鹽鑒定研究[J]. 花生學(xué)報(bào),2005,34(1):20-24.
[24] 沈 一,劉永惠,陳志德,等. 花生幼苗期耐鹽品種的篩選與評(píng)價(jià)[J]. 花生學(xué)報(bào),2012,41(1):10-15.
[25] 魏光成,閆苗苗. 3種花生鹽脅迫下生理指標(biāo)變化的研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(19):10026-10027.
[26] 石運(yùn)慶,胡曉輝. 苗華榮,等.鹽堿脅迫對(duì)花生脂肪酸品質(zhì)的影響[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,49(2):44-47.
[27] Lei M,Li H,Zhang L et al. QTL IciMapping:Integrated software for genetic linkage map construction and quantitative trait locus mapping in biparental populations[J]. The Crop Journal,2015,3(3):14.
[28] 王 亞,郭寶太,喬利仙,等.PyTPS轉(zhuǎn)化花生對(duì)其后代耐鹽性和品質(zhì)性狀的影響[J]. 華北農(nóng)學(xué)報(bào),2014,29(5):175-179.
[29] 宗自衛(wèi),常陸林. 轉(zhuǎn)BADH基因花生幼苗抗鹽性研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(15):5867-5868.
[30] 王寶枝. 花生耐鹽基因的克隆與表達(dá)譜分析[D]. 濟(jì)南:山東師范大學(xué),2010.
[31] Chen N,Yang Q L,Su M W,et al. Cloning of six ERF family transcription factor genes from peanut and analysis of their expression during abiotic stress[J]. Plant Molecular Biology Reporter,2012,30(6):1415-1425.