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    重組人表皮生長因子融合蛋白發(fā)酵條件優(yōu)化

    2018-07-02 08:27:28楊慧慈江曉霞張建張庭華周立成張淳
    特別健康·下半月 2018年4期

    楊慧慈 江曉霞 張建 張庭華 周立成 張淳

    【摘 要】目的:優(yōu)化GST-hEGF融合蛋白工程菌pGEX-EGF/BL21STAR(DE3)pLysS 30L發(fā)酵罐培養(yǎng)及表達條件。方法:上罐發(fā)酵采用M9-YT-Glu發(fā)酵培養(yǎng)基,IPTG誘導;通過還原SDS-PAGE法測定目標蛋白表達量、落計數(shù)法測定質粒丟失率,以確定表達溫度、時間以及IPTG添加量等參數(shù)。結果與討論:hEGF重組菌誘導溫度為30℃、加入終濃度0.2M IPTG誘導,維持誘導時間4hr,目的蛋白表達量占菌體蛋白總量的30%左右,為后續(xù)rEGF融合蛋白純化奠定了基礎。

    【關鍵詞】人表皮生長因子;融合蛋白;發(fā)酵條件優(yōu)化

    【中圖分類號】R786 【文獻標識碼】A 【文章編號】2095-6851(2018)04-0-01

    人表皮生長因子(hEGF)由Cohen等人于1975年從人體尿液中分離得到,又被稱為抑胃素(Urogastrone)[1]。hEGF在多種疾病(如角膜損傷和糖尿病足等)的治療中體現(xiàn)出顯著的效果[2],其藥用開發(fā)具有巨大的潛力;同時,EGF在美容方面的功效已被消費者廣泛認可,相關產品的市場需求日益增大。然而,天然提取高活性EGF售價近200萬美元/克,提取效率極低,無法大規(guī)模工業(yè)化制備,高質量EGF原料的生產供應遠不能滿足市場需求。因此,開發(fā)一種高效的EGF生產工藝不僅具有巨大的經濟價值,也為EGF進一步應用開發(fā)提供了最基本的保障。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株。pGEX-EGF/BL21STAR(DE3)工程菌由臨沂大學藥學院構建。

    1.1.2 培養(yǎng)基。(1)LB液體培養(yǎng)基:1.0%胰蛋白胨,0.5%酵母提取物,1.0% NaCl,pH 7.0,121℃滅菌20 min ;(2)LB固體培養(yǎng)基:在LB液體培養(yǎng)基中補加1.0%瓊脂;(3)含氨芐青霉素的LB(LA)液體(或固體)培養(yǎng)基:待LB液體(或固體)培養(yǎng)基滅菌后降溫至50℃以下,加入氨芐青霉素(100 μg/mL);(4)M9-YT-Glu發(fā)酵培養(yǎng)基:0.5%胰蛋白胨,0.3%酵母提取物,0.06%NaCl,0.5%KH2PO4,3%Na2HPO4·12H2O,1%葡萄糖,0.1%MgSO4,0.1%NH4Cl;(5)補料培養(yǎng)基:30%葡萄糖,5%胰蛋白胨,3%酵母提取物。

    1.1.3 主要試劑。胰蛋白胨、酵母提取物購自英國Oxoid公司,中分子量蛋白質Marker購自天根生化科技有限公司,IPTG購自索萊寶,無機鹽、葡萄糖等購自上海生工。

    1.1.4 主要儀器設備。HSX-150恒溫恒濕箱,上海申賢恒溫設備廠; HNY恒溫培養(yǎng)振蕩器,天津市歐諾儀器儀表有限公司;ChampGel 5000數(shù)碼凝膠成像分析系統(tǒng),北京賽智創(chuàng)業(yè)科技有限公司;TU-1810紫外可見分光光度儀,北京普析通用儀器有限責任公司。

    1.2 方法

    1.2.1 菌密度測定。用紫外可見光光度法測定發(fā)酵液600nm波長時光吸收值[3],以未接種培養(yǎng)基作參比。

    1.2.2 目標蛋白表達水平的測定。采用還原SDS-PAGE電泳考馬斯亮蘭染色法[4],電泳凝膠經掃描后分析重組蛋白占菌體總蛋白的百分含量。

    1.2.3 質粒丟失率的檢測方法。將待測發(fā)酵液測OD600值,以無菌水稀釋,使培養(yǎng)液均達到OD600為0.2。然后取200μl涂LB平板,37℃培養(yǎng)48hr。從培養(yǎng)好的LB平板上挑一單菌落同時轉接到LB和LA平板上,37℃培養(yǎng)48hr。計算菌落數(shù),LB平板上的菌落數(shù)為M,LA平板上的菌落數(shù)為N,則丟失率計算方法為(M-N)/M×100%。

    1.2.4 工程菌的培養(yǎng)方法(30升發(fā)酵罐規(guī)格)。(1)種子菌的活化:取-80℃,12.5%甘油保存的生產種子庫菌種,劃線接種于含氨芐(100μg/ml)的LB斜面,37℃培養(yǎng)過夜,挑菌苔于含氨芐(100μg/ml)LB培養(yǎng)基中,37℃,200rpm振搖培養(yǎng)至OD600 為0.4-0.5時,作為活化種子4℃保存。(2)種子液培養(yǎng):取活化種子,以1:100接種于400ml LB培養(yǎng)基中,30℃,150rpm,培養(yǎng)15hr,作為一級種子液。再以1:10接種于2L LB培養(yǎng)基的三角瓶中,37℃,250rpm,培養(yǎng)2hr,作為上罐種子液。(3)發(fā)酵工藝:發(fā)酵上罐培養(yǎng)基18L,培養(yǎng)基配方為 M9-YT-Glu。取種子液2000ml,加入發(fā)酵罐中,使終體積為20L。調整工藝參數(shù):設定溫度37℃,轉速300rpm,pH用50%氨水自動調至7.0。當發(fā)酵至3-4hr,開始流加營養(yǎng)液。待菌體OD600達到8-12,溶氧值開始上升時,降溫至30℃,以不同IPTG終濃度(0.1M、0.2M、0.3M )進行誘導,誘導時間2-6小時,每1小時取1次樣品。樣品離心、作SDS-PAGE電泳,觀察蛋白表達情況。

    2 結果與分析

    2.1 誘導溫度對蛋白表達的影響

    溫度在發(fā)酵過程中的影響一方面表現(xiàn)在工程菌產物合成的數(shù)量,另一方面表現(xiàn)在工程菌自身數(shù)量的增長。大腸桿菌的最適生長溫度為37℃,是使比生長率達到最大值的溫度。將種子液以1:10接入發(fā)酵罐中,37℃培養(yǎng)至菌體OD600達到10-12,加入終濃度為0.2M IPTG誘導,同時控制溫度至25℃、30℃、37℃,誘導時間4hr,收集菌體進行SDS-PAGE分析。

    M:marker;1:37℃表達菌體;2:37℃破菌溶解上清;3:30℃表達菌體;4:30℃破菌溶解上清;

    5:25℃表達菌體;6:25℃破菌溶解上清

    如圖1所示,三個溫度均可見明顯目標蛋白表達條帶,其中37℃和30℃對菌體數(shù)量增值及表達量明顯優(yōu)于25℃時表達量;37℃誘導表達后,破菌上清目標蛋白溶解度較低,提示溫度過高影響融合蛋白可溶性表達;30℃在不明顯降低目標蛋白表達量的同時,可溶性表達比例最高,綜上,選擇誘導溫度為30℃。

    2.2 不同IPTG濃度對蛋白表達的影響

    在發(fā)酵研究中,采用不同時間的多點抽樣,測定其菌體OD600值,逐點用計算機描繪出菌體生長曲線,當工程菌生長至對數(shù)中期(約4hr),降溫至30℃,用IPTG進行誘導,hEGF蛋白表達量可達30%左右。而IPTG作為一種不消耗的誘導物,僅需維持一定的濃度即可持續(xù)誘導。所以,本實驗篩選了終濃度分別為0.1M、0.2M和0.3M的IPTG進行誘導。

    1.對照;2.0.1M IPTG;3.0.2M IPTG; 4.0.3M IPTG

    實驗結果如圖2所示:除0.1M IPTG誘導目的蛋白表達量為20%外,其余兩種IPTG濃度誘導的目的蛋白表達量均為31%以上,無較大差別。三種不同IPTG濃度誘導獲得的目標蛋白破菌溶解性無較大差異。綜合考慮到成本和工藝的穩(wěn)定性,rEGF發(fā)酵IPTG終濃度選擇0.2M。

    2.3 不同誘導時間對蛋白表達的影響

    2.3.1 不同誘導時間質粒丟失率測定 分別在誘導前和誘導后1hr、2hr、3hr、4hr、5hr、6hr取發(fā)酵液測定發(fā)酵液上清中乙酸的含量,并通過平板培養(yǎng)法計算不同誘導時間的質粒的丟失率。結果如表1、圖3所示。

    2.3.3 不同誘導時間蛋白表達量測定 分別取誘導前和誘導后1hr、2hr、3hr、4hr、5hr、6hr的發(fā)酵液樣品,進行SDS-PAGE電泳,灰度掃描,并分析誘導時間與蛋白表達量之間的關系。結果如圖4所示:①誘導時間為1hr時的目的蛋白表達量為12%;2hr為18%;3hr為25%;4hr為30%;5hr為28.5%;6hr為28.0%。即隨誘導時間延長,蛋白表達量呈先增加后降低的趨勢,且4hr以后蛋白表達量趨于基本穩(wěn)定。②誘導4hr后,質粒丟失率為40%,5hr以后質粒丟失顯著增加,達到68%,即4hr以后質粒丟失率加快,穩(wěn)定性降低。

    3 結論與討論

    rEGF工程菌的發(fā)酵,選擇M9-YT-Glu鹽培養(yǎng)基作為生產發(fā)酵培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng),維持溶氧不低于30%,當菌體密度OD600=10-12時,降低溫度為30℃并加入終濃度0.2M IPTG誘導,維持誘導時間4hr,最終菌體密度均可達到OD600值20以上,目的蛋白表達量占菌體蛋白總量的30%左右,為后續(xù)rEGF融合蛋白純化奠定了基礎。

    參考文獻

    Gregory,H.,Isolation and structure of urogastrone and its relationship to epidermal growth factor.Nature 1975,257 (5524),325-7.

    Hong,J.P.; Jung,H.D.; Kim,Y.W.,Recombinant human epidermal growth factor (EGF)to enhance healing for diabetic foot ulcers.Ann Plast Surg 2006,56 (4),394-8; discussion 399-400.

    Sezonov,G.; Joseleau-Petit,D.; D'Ari,R.,Escherichia coli physiology in Luria-Bertani broth.J Bacteriol 2007,189 (23),8746-9.

    Pickles,J.; Rafiq,S.; Cochrane,S.A.; Lalljie,A.,In vitro pepsin resistance of proteins:Effect of non-reduced SDS-PAGE analysis on fragment observation.Toxicol Rep 2014,1,858-870.

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