丁玉春,林 玲,羅 林,張成剛,吳 夢
(重慶市畜牧科學(xué)院,重慶 402460)
山羊痘是由山羊痘病毒引起的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病,病原為痘病毒科、脊椎動物痘病毒亞科、山羊痘病毒屬,是一種大型病毒[1-3]。山羊痘又稱“羊天花”,可感染多個年齡段、不同品種的山羊,多發(fā)于羔羊,無明顯季節(jié)性,但冬末春初最易流行[4]。感染該病毒后羊只多見全身性的丘疹、結(jié)節(jié)或水泡,并伴隨內(nèi)臟性病變,嚴(yán)重者出現(xiàn)死亡,給養(yǎng)殖業(yè)造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[5-6]。整個病程經(jīng)丘疹、水泡和結(jié)痂一般可持續(xù)3~4周,病羊痊愈后可以獲得終身免疫[7]。山羊痘對宿主具有一定的特異性,自然感染多發(fā)生于山羊,其特異性與毒株自身特性密切相關(guān),僅有少量毒株使綿羊發(fā)病,偶爾感染人[8-9]。
目前,羊痘疫苗多為弱毒苗,由于國內(nèi)疫苗產(chǎn)品質(zhì)量參差不齊,弱毒苗常出現(xiàn)返強(qiáng),導(dǎo)致羊只發(fā)病,嚴(yán)重者造成疫病的流行[10-13]。并且,山羊痘病毒地區(qū)差異性較大,疫苗產(chǎn)品在不同地區(qū)的應(yīng)用效果各有差異[11],因此,對山羊痘病毒新毒株的研究十分必要,尤其對地方毒株的研究更加重要。筆者等對重慶地區(qū)山羊痘病毒進(jìn)行了分離鑒定,并構(gòu)建了動物模型,為羊痘致病機(jī)理的研究奠定了基礎(chǔ),也為羊痘疫苗新產(chǎn)品的研發(fā)提供了依據(jù)。
病毒DNA提取試劑盒、DNA膠回收試劑盒、DL 2000 DNA Marker、2×Taq PCR Master Mix 均 購 自Solarbio公司;依據(jù)NCBI中公布的山羊痘病毒P32基因設(shè)計特異性引物F1/F2,序列由上海生工生物工程有限公司合成,引物序列信息見表1。
表1 引物序列信息
病料及實驗動物均由重慶市榮昌區(qū)某羊場提供。
1.3.1 病料的處理 對疑似山羊痘感染羊只進(jìn)行臨床診斷,采集病變部位丘疹或痂皮,按1∶5的比例加入含有雙抗的PBS溶液,用研缽研磨,收集研磨液,反復(fù)凍融3次后,3 000 r/min離心30 min,將上清經(jīng)0.45 μm濾器過濾,收集濾液,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2 P32基因序列PCR鑒定及測序分析 參照病毒DNA提取試劑盒說明書,提取1.3.1中收集的樣本DNA。利用特異性引物F1/F2進(jìn)行羊痘病毒P32基因序列的PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系:2×Taq PCR Master Mix 25 μL,引物 F1/F2各 0.5 μL,模板 5 μL,ddH2O 19 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性2 min;95℃變性45 s,58℃退火 45 s,72℃延伸 45 s,30個循環(huán),72℃延伸 10 min。反應(yīng)結(jié)束后,進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,PCR產(chǎn)物經(jīng)DNA膠回收試劑盒回收后,送往生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測序分析。
1.3.3 遺傳進(jìn)化分析 將測序結(jié)果在NCBI中進(jìn)行BLAST比對,分析其與羊痘病毒P32基因的同源性,利用N-J法將分離株序列與其相關(guān)性較好的序列進(jìn)行比對,借助MEGA5.軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化發(fā)育樹。
1.3.4 病毒的純化培養(yǎng)
1.3.4.1 病毒細(xì)胞培養(yǎng) 將鑒定為陽性的病料研磨液接種單層BHK21細(xì)胞,接毒量與維持液的比例為1∶10,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀察記錄細(xì)胞病變情況。若細(xì)胞在接種病料后5 d內(nèi)未出現(xiàn)病變則連續(xù)盲傳3代,若第5代仍未出現(xiàn)病變則視為陰性,出現(xiàn)病變的反復(fù)凍融3次后收毒,置-80℃保存。
1.3.4.2 病毒TCID50測定 將BHK21在96孔板中培養(yǎng),待細(xì)胞長成單層時,將病毒液按照10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9、10-10濃度連續(xù) 10 倍稀釋后,接種于96孔板細(xì)胞培養(yǎng)板,每一稀釋濃度接種一列,第11、12列作為細(xì)胞空白對照,每孔接種100 μL,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每天觀察細(xì)胞產(chǎn)生病變孔數(shù),記錄結(jié)果,根據(jù)Reed-Muench氏法計算病毒TCID50值。
1.3.5 動物模型的構(gòu)建 選取未免疫山羊痘疫苗的3月齡健康羔羊2只,用皮下劃痕和多點(diǎn)皮內(nèi)注射法,將山羊痘病毒接種健康羔羊1只,接種量為0.5 mL,另外1只羔羊接種生理鹽水作為對照組,均正常飼喂,逐日觀察記錄羔羊發(fā)病情況,同時記錄羔羊體重、體溫(直腸溫度)變化。
PCR鑒定結(jié)果表明,在約800 bp的位置出現(xiàn)特異性條帶(見圖 1),經(jīng)測序,其大小為 815 bp(見圖 2),與預(yù)期結(jié)果一致。
圖1 山羊痘病毒P32基因PCR鑒定結(jié)果
將所得基因序列在NCBI中進(jìn)行BLAST比對后,發(fā)現(xiàn)其與山羊痘病毒(登錄號AY881707.1)P32基因序列同源性最高(99%),在系統(tǒng)進(jìn)化發(fā)育樹中也與其聚為一簇。結(jié)果見圖3。
圖2 山羊痘病毒P32基因測序結(jié)果
圖3 基于山羊痘病毒P32基因序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化發(fā)育樹(Isolate strain為分離株序列)
病毒接種BHK21細(xì)胞盲傳至F4代時,細(xì)胞開始出現(xiàn)病變,培養(yǎng)至48 h時,細(xì)胞出現(xiàn)拉絲結(jié)網(wǎng)、固縮變圓和脫落的現(xiàn)象,72 h時出現(xiàn)空斑,結(jié)果見圖4~6。對穩(wěn)定傳代的病毒進(jìn)行TCID50檢測,結(jié)果為1×10-4.5/mL。
圖4 正常BHK21細(xì)胞形態(tài)
圖5 接毒山羊痘病毒48 h BHK21細(xì)胞形態(tài)
圖6 接毒山羊痘病毒72 h BHK21細(xì)胞形態(tài)
2.4.1 發(fā)病情況 通過對羔羊人工感染山羊痘病毒發(fā)現(xiàn),羔羊在接毒10 d后,唇部和尾根部出現(xiàn)紅色丘疹和水泡(見圖7~8),食欲開始減退,精神不振,出現(xiàn)羊痘初期癥狀,第15天形成痂皮,進(jìn)入結(jié)痂期,第28天結(jié)痂開始脫落,第35天時,羔羊病情好轉(zhuǎn)。整個病程中,羔羊體重變化差異不大,未出現(xiàn)死亡。
2.4.2 體溫變化 通過對攻毒后羔羊直腸溫度進(jìn)行檢測發(fā)現(xiàn),接種部位劃痕在第4天愈合,第7天開始出現(xiàn)體溫升高,第16天達(dá)到最高(42℃),第26天時體溫趨于正常,體溫變化見圖9。
圖7 人工感染山羊痘病毒羔羊唇部初期癥狀
圖8 人工感染山羊痘病毒羔羊尾根部初期癥狀
圖9 人工感染山羊痘病毒羔羊體溫變化
本研究應(yīng)用臨床診斷、分子鑒定、細(xì)胞培養(yǎng)、遺傳進(jìn)化分析和構(gòu)建動物模型等方法,分離到一株重慶地區(qū)山羊痘病毒,并對其細(xì)胞培養(yǎng)特性和致病性進(jìn)行了初步研究,結(jié)果表明,分離純化到的山羊痘病毒可以在BHK21細(xì)胞中穩(wěn)定增殖,并出現(xiàn)典型的細(xì)胞病變,這為該病毒的進(jìn)一步研究奠定了基礎(chǔ)。研究表明,不同山羊痘病毒在攻毒家兔、豚鼠和雞胚時,表現(xiàn)出的癥狀各有差異,僅有部分毒株可以使家兔和豚鼠形成局部痘斑,少數(shù)毒株可以在雞胚尿囊膜上出現(xiàn)典型的痘斑[14-16],說明不同的山羊痘病毒存在較大差異,也表明本研究的必要性。將山羊痘病毒接種3月齡健康羔羊后,羔羊在攻毒第7天時,開始出現(xiàn)體溫升高、精神不振等癥狀,在第16天時體溫達(dá)到42℃;攻毒第10天,羔羊表現(xiàn)出山羊痘的初期癥狀,第35天時病情好轉(zhuǎn),整個病程中,羔羊體重變化差異不大。通過動物模型的構(gòu)建,發(fā)現(xiàn)羔羊未出現(xiàn)皮膚全身性的病理變化,也未出現(xiàn)死亡。目前,關(guān)于山羊痘重慶地區(qū)分離株的報道相對較少,本研究為山羊痘地方株疫苗的研究奠定了基礎(chǔ),也為重慶地區(qū)山羊痘的防控提供了理論依據(jù)。
[1]安維雪,龐方圓,王艷杰,等.羊痘病毒實時熒光定量PCR檢測方法的建立[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2016,36(4):572-578.
[2]Zhao Z,Wu G,Yan X,et al.Development of duplex PCR for differential detection of goatpox and sheeppox viruses [J].BMC Veterinary Research,2017,13(1):278-283.
[3]Yang Y,Qin X,Zhang X,et al.Development of real-time and lateral flow dipstick recombinase polymerase amplification assays for rapid detection of goatpox virus and sheeppox virus [J].Virology Journal,2017,14(1):131-137.
[4]Tulman E R,Afonso C L,Lu Z,et al.The genomes of sheeppox and goatpox viruses[J].Journal of Virology,2002,76(12):6054-6062.
[5]趙志荀,吳國華,顏新敏,等.羊痘病毒及其疫苗研究進(jìn)展[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2010,31(4):77-81.
[6]Hosamani M,Bhanuprakash V,Kallesh D J,et al.Cell culture adapted sheeppox virus as a challenge virus for potency testing of sheeppox vaccine[J].Indian Journal of Experimental Biology,2008,46(10):685-689.
[7]顏新敏,張強(qiáng).羊痘病毒免疫學(xué)研究進(jìn)展[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2009,30(12):67-70.
[8]Stanford MM,Mcfadden G,Karupiah G,et al.Immunopathogenesis of poxvirus infections:forecasting the impending storm[J].Immunology&Cell Biology,2007,85(2):93-102.
[9]Liu S W,Katsafanas G C,Liu R,et al.Poxvirus decapping enzymes enhance virulence by preventing the accumulation of dsRNA and the induction of innate antiviral responses [J].Cell Host&Microbe,2015,17(3):320-326.
[10]Zhou T,Jia H,Chen G,et al.Phylogenetic analysis of Chinese sheeppoxand goatpoxvirus isolates[J].VirologyJournal,2012,9(1):1-8.
[11]顏新敏,吳國華,李健,等.羊痘在中國的流行現(xiàn)狀分析[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2010,26(24):6-9.
[12]Hosamani M,Nandi S,Mondal B,et al.A Vero cell-attenuated goatpox virus provides protection against virulent virus challenge[J].Acta Virologica,2004,48(1):15-19.
[13]Wang W J,Yin S J,Guo R Q.Corrigendum PKR and HMGB1 expression and function in rheumatoid arthritis[J].Genetics&Molecular Research Gmr,2016,15(2):17864-17870.
[14]何亞鵬,張琪,史懷平,等.綿羊痘病毒、山羊痘病毒及羊口瘡病毒多重PCR檢測方法的建立和應(yīng)用[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2017,38(3):11-15.
[15]郝寶成,梁劍平,王學(xué)紅,等.山羊痘的流行及防治措施[J].中國畜牧獸醫(yī),2011,38(5):152-154.
[16]顏新敏,張強(qiáng),吳國華,等.兩種用于鑒別山羊痘病毒和綿羊痘病毒方法的應(yīng)用與比較研究[J].華北農(nóng)學(xué)報,2009,24(6):50-53.