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    蝦肝腸胞蟲(EHP)在凡納濱對(duì)蝦養(yǎng)殖水環(huán)境中的分布情況及傳播途徑初步研究

    2018-05-16 06:35:17丁慧昕謝建軍王庚申許文軍
    關(guān)鍵詞:排水渠對(duì)蝦孢子

    丁慧昕,施 慧,謝建軍,王庚申,汪 瑋,何 杰,許文軍

    (1.浙江海洋大學(xué)海洋與漁業(yè)研究所,浙江省海洋水產(chǎn)研究所,浙江省海水增養(yǎng)殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江舟山 316021;2.浙江海洋大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院,浙江舟山 316022)

    蝦肝腸胞蟲Enterocytozoon hepatopenaei(EHP)歸屬于孢子蟲綱Sporozoa,隱孢子蟲目Cryptosporidium,腸上皮微孢子蟲科,是目前凡納濱對(duì)蝦養(yǎng)殖過程中出現(xiàn)的一種重要寄生蟲病原,主要寄生于對(duì)蝦肝胰腺小管的上皮細(xì)胞內(nèi),已被證實(shí)與對(duì)蝦生長緩慢癥關(guān)系密切。其最早發(fā)現(xiàn)于泰國養(yǎng)殖的生長緩慢的斑節(jié)對(duì)蝦,感染該寄生蟲的對(duì)蝦往往吃料正常,不會(huì)發(fā)生爆發(fā)性死亡,但生長緩慢或停滯,并出現(xiàn)大小不一的情況[1]。自2013年以來,我國所有的凡納濱對(duì)蝦養(yǎng)殖主產(chǎn)區(qū)均已發(fā)現(xiàn)了蝦肝腸胞蟲病[2],并造成重大危害,嚴(yán)重影響對(duì)蝦養(yǎng)殖業(yè)的健康與持續(xù)發(fā)展。

    EHP的個(gè)體微小,大小為(1.1±0.2)~(0.7±0.1)μm,臨床上普通的光學(xué)顯微鏡很難觀察或診斷,主要依靠實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)才可確診。關(guān)于EHP的檢測(cè)方法的研究報(bào)道較多,SANTHOSHKUMAR,et al[3]運(yùn)用組織病理學(xué)方法觀察到了在人工感染試驗(yàn)對(duì)蝦體內(nèi)處于不同發(fā)育階段的EHP;TANGPRASITTIPAP,et al[4]建立了套式PCR檢測(cè)法和地高辛標(biāo)記核酸探針原位雜交法;劉珍等[2]將實(shí)時(shí)熒光定量PCR法運(yùn)用于EHP的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè);SUEBSING,et al[5]建立EHP的LAMP技術(shù)方法,使臨床檢測(cè)EHP更簡(jiǎn)單、快速;但目前尚無有關(guān)EHP在養(yǎng)殖水環(huán)境中分布情況的報(bào)道。為了了解EHP在水環(huán)境中分布情況以及傳播途徑,本研究采用巢式PCR檢測(cè)方法,對(duì)舟山地區(qū)凡納濱對(duì)蝦養(yǎng)殖水環(huán)境中采集的其它水生生物以及水樣等樣本進(jìn)行EHP檢測(cè),初步分析了EHP在對(duì)蝦養(yǎng)殖水體環(huán)境中的分布情況;同時(shí)以不同方式保存的病蝦對(duì)健康對(duì)蝦進(jìn)行了人工感染試驗(yàn),分析了EHP在養(yǎng)殖水環(huán)境中的傳播方式。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 試驗(yàn)材料

    水樣分別為出現(xiàn)生長緩慢的對(duì)蝦養(yǎng)殖場(chǎng)進(jìn)水、養(yǎng)殖塘水、養(yǎng)殖塘排水渠中尾水,生物樣本主要為養(yǎng)殖場(chǎng)排水渠中魚、蝦類和蟹類。EHP感染蝦采集自浙江省海洋水產(chǎn)研究所試驗(yàn)場(chǎng);人工感染試驗(yàn)所用的健康凡納濱對(duì)蝦取自舟山市旭旺養(yǎng)殖場(chǎng),體長為7.5±0.5 cm。

    1.1.2 試劑

    組織DNA提取試劑盒QlAampDNA Mini Kit購自Qiagen公司;高保真Ex Taq DNA聚合酶、dNTPs、DL 2000 Marker、UNIQ-10柱式膠回收試劑盒購買自TAKARA公司;其它均為國產(chǎn)分析純級(jí)試劑。

    1.2 儀器和設(shè)備

    實(shí)驗(yàn)使用的主要儀器:AL204型電子天平,瑞士梅特勒-托利多儀器有限公司;Centrifuge 5424R臺(tái)式冷凍離心機(jī),德國Eppendorf公司;Nikon Eclipse 50i生物顯微鏡,美國尼康公司;Bio-Rad DNA Engine多槽PCR儀和Bio-Rad GDXI型凝膠成像系統(tǒng),美國伯樂公司;漩渦振蕩器,德國IKA公司。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 養(yǎng)殖水環(huán)境樣本的采集

    于2017年4月至2017年10月,分3批次采集,共4個(gè)種類的108個(gè)樣;其中,魚類共采集了鯔魚7尾,彈涂魚10尾;蟹類共采集寄居蟹11只,招潮蟹12只;蝦類采集綠籽蝦26尾,口蝦蛄1尾。將樣本冰鮮保存帶回實(shí)驗(yàn)室,每種采樣信息和分析樣本數(shù)量見表1。

    表1 養(yǎng)殖環(huán)境中生物采樣信息Tab.1 Biological sampling information in aquaculture environment

    1.3.2 人工感染試驗(yàn)方法

    采用巢式PCR檢測(cè)健康蝦體內(nèi)EHP攜帶情況,經(jīng)PCR確認(rèn)EHP核酸陰性后,暫養(yǎng)1周備用;感染用病蝦運(yùn)用巢式PCR檢測(cè)EHP,確認(rèn)EHP核酸陽性后,一部分病蝦-20℃凍存,一部分暫養(yǎng)備用。

    從采集的健康凡納濱對(duì)蝦中挑選大小均一、體格健壯的對(duì)蝦用于感染實(shí)驗(yàn),試驗(yàn)期間連續(xù)充氣,水溫為24~26℃。感染實(shí)驗(yàn)共設(shè)A、B、C、D四組,每組均設(shè)立平行對(duì)照,A組投喂冰凍病蝦的肝胰腺組織,B組投喂鮮活病蝦的肝胰腺組織,C組為健康蝦與病蝦混合飼養(yǎng),D組為對(duì)照組,每組24尾蝦。試驗(yàn)期間前2周,A組和B組只投喂病蝦的肝胰腺組織,C組和D組投喂正常人工配合飼料,每日早晚投喂1次。實(shí)驗(yàn)期間每天清理試驗(yàn)對(duì)蝦的殘餌和排泄物,隔天換水1次。連續(xù)投喂兩周以后,全部投喂正常人工配合飼料,1周之后隨機(jī)取樣,每組3尾,每周取樣1次,共采集4周。

    1.3.3 PCR模板制備

    水樣本使用0.22 μm濾膜進(jìn)行抽濾,濾膜用適量生理鹽水沖洗,洗液離心后棄上清,取沉淀提取DNA樣本;采集的魚樣本取腸道組織提取DNA樣本;采集的蝦蟹樣本和人工感染試驗(yàn)組對(duì)蝦,取肝胰腺組織提取DNA樣本;上述樣本分別稱取20~25 mg,使用QlAamp DNA Mini Kit,按照說明書提取總基因組DNA。

    1.3.4 巢式PCR擴(kuò)增

    樣品檢測(cè)主要采用亞太水產(chǎn)養(yǎng)殖中心網(wǎng)絡(luò)(NACA)推薦的巢式PCR檢測(cè)方法,引物包括一對(duì)外引物ExF/ExR 和一對(duì)內(nèi)引物 InF/InR:ExF:5′–TTG ACG TGA AGC AAT TGG AG–3′;ExR:5′–AAG CAG CAC AAT CCA CTC CT–3′;InF:5′–GGT GGG CAA AGA ATG AAA TC–3′;InR:5′–CGA GCG TAC TAT CCC CAG AG–3′,由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。PCR 反應(yīng)體系(25 μL)為:2.5 μL 10×buffer、2 μL dNTP(2.5 mM)、Primer 1 和 2(10 μM)各 0.25 μL、0.25 μL Taq DNA 聚合酶、5 μL DNA模板,用滅菌去離子水補(bǔ)充反應(yīng)總體積至25 μL,將混合物置PCR儀中反應(yīng)。PCR循環(huán)參數(shù):94℃預(yù)變性5 min后開始循環(huán),94℃ 45 s,55℃ 45 s,72℃ 1 min,共35個(gè)循環(huán),最后72℃延伸7 min。取5 μL PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后,在紫外凝膠成像儀中照相記錄。二次PCR模板為一次PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,PCR反應(yīng)體系及循環(huán)參數(shù)同一次PCR,獲得的PCR產(chǎn)物用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定。

    2 結(jié)果

    2.1 養(yǎng)殖場(chǎng)采集樣品檢測(cè)結(jié)果

    從攜帶EHP對(duì)蝦養(yǎng)殖塘中采集的水樣,經(jīng)PCR檢測(cè),EHP均呈核酸陽性,但養(yǎng)殖塘進(jìn)水口和排水渠中采集的水樣未有EHP檢出,采集的水生生物樣本中蝦和蟹類的部分樣本PCR檢測(cè)EHP呈核酸陽性,采集的魚類樣本未有EHP檢測(cè),具體結(jié)果見表2。

    表2 養(yǎng)殖環(huán)境采集樣品的PCR結(jié)果以及陽性檢出率Tab.2 Detection of EHP in samples of aquaculture environment by PCR and positive rates

    2.2 樣品檢測(cè)基因擴(kuò)增測(cè)序結(jié)果

    采集樣本的二次PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳后,在250~500 bp處可見特異性單一條帶。將獲得的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行序列測(cè)定,應(yīng)用DNAMAN軟件進(jìn)行比對(duì)分析,獲得一個(gè)223 bp大小的基因片段。該序列經(jīng)BLAST同源檢索分析,與TANGPRASITTIPAP,et al[4]之前報(bào)道的感染斑節(jié)對(duì)蝦Penaeus monodon的EHP的基因序列(KF362130)結(jié)果一致。

    圖1 養(yǎng)殖場(chǎng)采集蝦、蟹類樣本EHP PCR檢測(cè)結(jié)果Fig.1 Detected results of the E.hepatopenaei infection of P.vannamei samples by PCR

    2.3 人工感染實(shí)驗(yàn)樣品檢測(cè)結(jié)果

    病蝦肝胰腺組織投喂組投喂2周后停止投喂,改為投喂正常飼料,1周后開始取樣,每隔7 d取樣1次進(jìn)行PCR檢測(cè),前3次每次3尾,最后一次6尾,共計(jì)24個(gè)樣本,陽性檢出率為12.5%;混合飼養(yǎng)組混養(yǎng)1周后開始取樣,7 d取樣1次,每次3尾,共取樣5次,共計(jì)24個(gè)樣本,陽性檢出率為54.2%;對(duì)照組取樣次數(shù)和尾數(shù)同混合飼養(yǎng)組,未有EHP檢出,結(jié)果見表3。

    3 討論

    微孢子蟲是一類古老的細(xì)胞內(nèi)寄生微生物,所有微孢子蟲的生活史均起始于成熟孢子在適當(dāng)環(huán)境下擠出極絲,釋放出具有侵染性的孢原質(zhì),孢子在被寄主吞入消化道后迅速活化并在寄主體內(nèi)迅速增殖并繼續(xù)侵染[6-7]。TOURTIP,et al[8]研究發(fā)現(xiàn)EHP在斑節(jié)對(duì)蝦的肝胰腺管上皮細(xì)胞中發(fā)育成成熟的帶有極絲的孢子。本研究分別從攜帶EHP對(duì)蝦的養(yǎng)殖水體、蝦塘進(jìn)水口及排水渠中均采集了水和生物樣本,PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,發(fā)病蝦塘中水體中EHP陽性檢出率100%,雖然蝦塘的進(jìn)水口和排水渠水樣本中未有檢出EHP,但排水渠采集的蝦蟹等甲殼類樣本中檢出了EHP。在人工感染試驗(yàn)中,與健康蝦和病蝦混合飼養(yǎng)組陽性檢出率54.2%相比,冰凍或活蝦肝胰腺組織投喂組EHP陽性率檢出率相對(duì)比較低,分別只有12.5%和45.8%。這可能與孢子蟲的生活史特征也有關(guān)聯(lián),由于病蝦體內(nèi)EHP不可能都處于成熟階段,在養(yǎng)殖試驗(yàn)過程中,這些未成熟的EHP會(huì)繼續(xù)發(fā)育成熟,從而形成出更多成熟孢子并釋放到養(yǎng)殖環(huán)境中,增加了混養(yǎng)的健康蝦接觸這些具有侵染性的孢子的機(jī)會(huì),而投喂冰凍或活蝦肝胰腺組織組,投喂的組織中成熟孢子有限,健康蝦攝食到侵染性孢子的機(jī)會(huì)少,降低了感染機(jī)率。試驗(yàn)結(jié)果說明EHP感染對(duì)蝦后在蝦肝胰腺管細(xì)胞內(nèi)形成孢原質(zhì),成熟后又通過糞便排出體外,在水環(huán)境中形成孢子體,散在分布于水體或附著于藻類、碎屑、飼料表面以及池壁和底泥環(huán)境中,孢子可在養(yǎng)殖環(huán)境中累積,從而導(dǎo)致疫情的傳播。

    表3 人工感染樣品的PCR結(jié)果以及陽性檢出率Tab.3 Detection of EHP in samples of artificial infection by PCR and positive rates

    圖2 凡納濱對(duì)蝦樣本EHP PCR檢測(cè)結(jié)果Fig.2 Detected results of the E.hepatopenaei infection of P.vannamei samples by PCR

    本試驗(yàn)采集了感染EHP養(yǎng)殖塘排水渠中的蝦、蟹及魚類等水生動(dòng)物樣本進(jìn)行EHP攜帶情況檢測(cè),結(jié)果在蝦和蟹類樣本中檢出了EHP,但采集的所有魚類樣本中并未有EHP檢出。本試驗(yàn)結(jié)果表明對(duì)蝦可以通過攝食攜帶EHP的對(duì)蝦直接感染EHP,結(jié)果與劉珍等[2]試驗(yàn)結(jié)果相同。王維娜等[6]認(rèn)為感染對(duì)蝦的微孢子蟲其中間宿主主要是各種魚類,但本試驗(yàn)結(jié)果表明EHP的增殖并不需要中間宿主,但不排除魚類是EHP傳播過程中宿主的可能性。本研究中對(duì)蝦塘進(jìn)水口和排水渠水樣中沒有檢測(cè)出EHP,是因?yàn)檫M(jìn)水口和排水渠均為相對(duì)開放的的一個(gè)水環(huán)境,且流速一般比較大,附著孢子的浮游生物極易隨流水進(jìn)入外海,所以進(jìn)水口和排水渠水樣相對(duì)養(yǎng)殖塘比較難檢測(cè)到EHP。

    微孢子蟲表面包裹著一層致密特殊結(jié)構(gòu),使得微孢子蟲能抵御外界環(huán)境、維持自身形態(tài)和滲透壓等方面發(fā)揮著重要作用。游信毅等[9]利用10%的甘油、乙二醇、水等作為冷凍保護(hù)劑,將東方蜜蜂微孢子蟲的孢子在-80℃保存5個(gè)月后對(duì)意蜂工蜂進(jìn)行感染,結(jié)果幾種冷凍保存劑保存的孢子都能夠侵染意蜂。本試驗(yàn)中攝食冷凍保存的病蝦肝胰腺組織健康蝦在一段時(shí)間后,部分對(duì)蝦肝胰腺EHP檢測(cè)呈核酸陽性,但冰凍組總陽性檢出率低于鮮活病蝦肝胰腺組織投喂組,說明低溫環(huán)境使部分EHP喪失了侵染性,但仍然有部分EHP可以存活并仍具有感染力,結(jié)果與劉珍等[10]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果吻合。JAROENLAK,et al[10]研究發(fā)現(xiàn)輪蟲和鹵蟲可以攜帶EHP,而兩者又是對(duì)蝦苗種生產(chǎn)中主要餌料,這將增加對(duì)蝦感染EHP的可能性,因此建議在養(yǎng)殖生產(chǎn)中應(yīng)對(duì)投喂的鮮活餌料進(jìn)行巴氏消毒處理,以預(yù)防對(duì)蝦感染EHP。劉珍等[11]和陳祿芝等[12]研究認(rèn)為對(duì)蝦EHP的載量與養(yǎng)殖環(huán)境有緊密聯(lián)系,環(huán)境不同其EHP的載量指數(shù)不同。目前EHP對(duì)養(yǎng)殖對(duì)蝦的危害程度還不十分清楚,而感染EHP的對(duì)蝦缺乏可供判斷的特征性臨床病征,只有通過PCR等實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)手段才可以確診,同時(shí)由于EHP無有效治療措施,因此在對(duì)蝦養(yǎng)殖過程中,對(duì)養(yǎng)殖水體、飼養(yǎng)餌料以及養(yǎng)殖尾水等環(huán)境因素進(jìn)行嚴(yán)格把關(guān),對(duì)控制對(duì)蝦感染EHP病原極為重要。

    參考文獻(xiàn):

    [1]劉雅梅.蝦肝腸胞蟲Taqman熒光定量PCR檢測(cè)技術(shù)的建立及其與對(duì)蝦生長相關(guān)性的研究[D].上海:上海海洋大學(xué),2016.

    [2]劉 珍.蝦肝腸胞蟲實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)技術(shù)的建立及其與對(duì)蝦生長相關(guān)性的研究[D].上海:上海海洋大學(xué),2015.

    [3]SANTHOSHKUMAR S,SIVAKUMAR S,VIMAL S,et al.Biochemical changes and tissue distribution of Enterocytozoon hepatopenaei(EHP)in naturally and experimentally EHP-infected whiteleg shrimp,Litopenaeus vannamei(Boone,1931),in India[J].Journal of Fish Diseases,2016,40(4):529-539.

    [4]TANGPRASITTIPAP A,SRISALA J,CHOUWDEE S,et al.The microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei is not the cause of white feces syndrome in white leg shrimp Penaeus(Litopenaeus)vannamei[J].BMC Veterinary Research,2013,139(9):1-10.

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    [10]JAROENLAK P,SANGUANRUT P,WILLIAMS B A,et al.A Nested PCR Assay to Avoid False Positive Detection of the Microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei(EHP)in Environmental Samples in Shrimp Farms[J].Plos One,2016,11(11):e0166320.

    [11]劉 珍,張慶利,萬曉媛,等.蝦肝腸胞蟲(Enterocytozoon hepatopenaei)實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及對(duì)蝦樣品的檢測(cè)[J].漁業(yè)科學(xué)進(jìn)展,2016,37(2):119-126.

    [12]陳祿芝,余霞艷,胡一丞,等.粵西地區(qū)凡納濱對(duì)蝦蝦肝腸胞蟲、傳染性皮下和造血組織壞死病毒感染情況的初步調(diào)查[J].漁業(yè)研究,2016,38(4):273-280.

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