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    Caco-2細(xì)胞單層模型中水飛薊賓吸收機(jī)制研究

    2018-05-04 07:58:21王湛博尤淋君
    關(guān)鍵詞:薊賓水飛母液

    胡 林,童 煥,丁 茹,王湛博,尤淋君,楊 勁*

    (中國(guó)藥科大學(xué) 1藥物代謝動(dòng)力學(xué)研究中心,南京210009;2新藥安全評(píng)價(jià)研究中心,南京211198)

    水飛薊素是菊科植物水飛薊(Silybum marianum(L.)Gaertn.)干燥果實(shí)的活性提取物。水飛薊賓(silybin)是水飛薊素的黃酮木質(zhì)素類(lèi)化合物的主要活性成分[1],水飛薊賓葡甲胺為水飛薊賓的成鹽衍生物,結(jié)構(gòu)見(jiàn)圖1。水飛薊賓是公認(rèn)的具有保肝作用的藥物,在國(guó)內(nèi)臨床上應(yīng)用于急慢性肝炎、脂肪肝的肝功能異常的恢復(fù)。目前國(guó)內(nèi)市售的制劑有水飛薊賓膠囊和水飛薊賓葡甲胺片,其中膠囊劑是水飛薊賓和卵磷脂復(fù)合物[2]。水飛薊賓具有低水溶性和低脂溶性的物理特性,原料藥口服生物利用度低[3]。通過(guò)在比格犬體內(nèi)比較市售的水飛薊賓膠囊和水飛薊賓葡甲胺片、水飛薊賓原料藥羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)混懸液的絕對(duì)生物利用度(bioavailablity,BA)發(fā)現(xiàn),水飛薊賓原料藥的絕對(duì)BA小于5%,膠囊劑和成鹽片劑的絕對(duì)BA相比于原料藥有很大的提高,但兩者提高BA的程度有較大差異(結(jié)果另文發(fā)表)。目前僅有少數(shù)文獻(xiàn)有部分水飛薊賓的吸收機(jī)制的相關(guān)報(bào)道。水飛薊賓的胃腸道吸收分?jǐn)?shù)為20%~47%[4],在大鼠單向腸灌流試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)水飛薊賓在小腸吸收良好[5-6],水飛薊賓的表觀滲透系數(shù)(Papp(AP-BL))約為3×10-7cm/s[7],跨膜通透性低。這些研究結(jié)果不全面、不系統(tǒng)、機(jī)制不明確,且結(jié)論彼此矛盾。已證實(shí)藥物在Caco-2單層細(xì)胞的滲透性與藥物在人體中胃腸道吸收有良好的相關(guān)性,它是預(yù)測(cè)藥物在人體吸收的金標(biāo)準(zhǔn)[8-9]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用 Caco-2單層細(xì)胞模型研究不同濃度的水飛薊賓和水飛薊賓葡甲胺的雙向跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)通透性,為進(jìn)一步改良水飛薊賓的劑型,增加生物利用度,并減少生物利用度的變異提供理論基礎(chǔ)。

    Figure 1 Structure of silybin and silybin-N-meglumine

    1 材 料

    1.1 藥品和細(xì)胞株

    水飛薊賓原料藥(純度:98%,南京澤郎醫(yī)藥科技有限公司);水飛薊賓葡甲胺原料藥(純度:83.45%,南京宸翔醫(yī)藥研究有限責(zé)任公司);氯唑沙宗對(duì)照品(純度:99.99%,批號(hào):100364-201302,中國(guó)食品藥品檢定研究院);熒光黃[西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司];鹽酸普萘洛爾(純度:99.00%)、阿替洛爾(純度:99.00%)購(gòu)于 Biochemistry公司;Caco-2細(xì)胞株購(gòu)于中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)院細(xì)胞庫(kù),實(shí)驗(yàn)中所用的代數(shù)在20~45代之間。

    1.2 試劑和材料

    DMEM培養(yǎng)基(含 4.0 mmoL/L谷氨酰胺,4 500 mg/L葡萄糖)、胎牛血清(以色列Biological Industries公司);青鏈霉素(美國(guó) Hyclone公司);0.25%胰蛋白酶、非必需氨基酸(美國(guó) Gibco公司);甲醇、乙腈(色譜純,德國(guó)Merck公司);甲酸(色譜純,美國(guó)ROE Scientific公司);其他試劑均為分析純;Millicell懸掛式培養(yǎng)小室(材料:聚酯膜,孔徑:1.0μm,膜面積:0.3 cm2;美國(guó) Millipore公司);培養(yǎng)皿、24孔細(xì)胞培養(yǎng)板(上海圣納堡生物科技開(kāi)發(fā)有限公司)。

    1.3 儀 器

    LC/MS/MS液質(zhì)聯(lián)用儀(4000 Q-Trap質(zhì)譜儀,美國(guó)AB公司;Agilent 1290超高效液相儀,美國(guó)Agilent公司);跨膜電阻儀(Millcell?-ERS-2,美國(guó)Millipore公司);恒溫振蕩儀(浙江卓恒公司);生物安全柜和CO2培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司);細(xì)胞計(jì)數(shù)儀(美國(guó)Nexcelom Bioscience公司);多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)Perkin Elmer公司)。

    2 方 法

    2.1 HBSS緩沖液中水飛薊賓的檢測(cè)

    2.1.1 色譜條件 色譜柱:Kinetex XB-C18(2.1×50 mm,2.6μm,Phenomenex公司);流速:0.3 mL/min;柱溫:30℃;進(jìn)樣盤(pán)溫度:6℃;進(jìn)樣體積10μL;洗針液:甲醇-水(1∶1);流動(dòng)相:純水(含0.1%甲酸,A相);乙腈(B相);梯度洗脫:0~0.5 min,20%B;0.5~1 min,20~65%B;1~2.4 min,65%B,2.4~2.5min,65% ~90%B;2.5~3.4 min,90%B;3.4~3.5 min,90% ~20%B;3.5~4.5 min,20%B。

    2.1.2 質(zhì)譜方法 離子采集方式為多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式(MRM)??倳r(shí)間4.5 min,切入質(zhì)譜時(shí)間為1.2 min,切出質(zhì)譜時(shí)間為2.8 min。氣路參數(shù):CUR:25 psi(1 ps=6 894.8 Pa);IS:-4 500 V;TEM:500℃;GS1:50 psi;GS2:50 psi。化合物參數(shù):水飛薊賓:定量離子對(duì) 481.2/300.8;DP:-100 V;CE:-28 V;CXP:-15 V;EP:-10 V。氯唑沙宗(內(nèi)標(biāo)):定量離子對(duì) 168.1/131.7;DP:-65 V;CE:-27.6 V;CXP:-6 V;EP:-10 V。

    2.1.3 水飛薊賓標(biāo)準(zhǔn)曲線和質(zhì)控樣品的制備 精密稱(chēng)取2份水飛薊賓10.20 mg于10 mL量瓶中,用乙腈定容到刻度線,即得1 mg/mL的母液。其中一份稀釋為標(biāo)準(zhǔn)曲線工作液:0.02,0.1,0.2,1,2,10,20,30μg/mL。另一份稀釋為質(zhì)控樣品工作液:0.04,1.6,8,24μg/mL。分別精密移取標(biāo)曲工作液和質(zhì)控工作液10μL,加細(xì)胞溫孵過(guò)空白HBSS緩沖液190μL,渦旋混勻,即得模擬標(biāo)準(zhǔn)曲線樣品(1,5,10,50,100,500,1 000,1 500 ng/mL)和質(zhì)控樣品(2,80,400,1 200 ng/mL)。

    2.1.4 前處理方法 移液槍移取樣品30μL加氯唑沙宗乙腈溶液(內(nèi)標(biāo),54 ng/mL)10μL,混勻后,加乙腈(析出緩沖鹽)270μL渦旋混勻,12 000 r/min,4℃,離心 5 min,取上清液 75μL與超純水75μL混勻進(jìn)樣。

    2.2 HBSS緩沖液中阿替洛爾和普萘洛爾的檢測(cè)

    2.2.1 色譜條件 色譜柱:Poroshell 120 EC-C18(3.0 mm×50 mm,2.7μm);流速:0.3 mL/min;柱溫:30℃;進(jìn)樣盤(pán)溫度:6℃;進(jìn)樣體積5μL;洗針液:甲醇-水(1∶1);流動(dòng)相:純水(含0.1%甲酸,A相);乙腈(B相);梯度洗脫:0~0.6 min,10%B;0.6~0.8min,10% ~65%B;0.8~2.4min,65%B,2.4~2.5min,65% ~90%B;2.5~3.1min,90%B;3.1~3.2 min,90% ~10%B;3.2~4.5 min,10%B。

    2.2.2 質(zhì)譜方法 氣路參數(shù):CUR:28 psi;IS:4 500 V;TEM:400℃;GS1:10 psi;GS2:10 psi?;衔飬?shù):阿替洛爾:定量離子對(duì)267.6/145.3;DP:60 V;CE:40 V;CXP:13 V;EP:15 V。普萘洛爾:定量離子對(duì) 260.6/116.4;DP:47 V;CE:25 V;CXP:10 V;EP:10 V。奧美拉唑(內(nèi)標(biāo)):定量離子對(duì)346.7/198.3;DP:35 V;CE:15 V;CXP:10 V;EP:10 V??倳r(shí)間4.5 min,切入質(zhì)譜時(shí)間為0.5 min,切出質(zhì)譜時(shí)間為2.5 min。

    2.2.3 普萘洛爾和阿替洛爾的標(biāo)準(zhǔn)曲線和質(zhì)控樣品的制備 精密稱(chēng)取阿替洛爾10.00 mg、鹽酸普萘洛爾11.45 mg,分別放置于10 mL量瓶中,用甲醇定容到刻度線,即得1 mg/mL的母液。分別精密移取阿替洛爾母液(1 mg/mL)和普萘洛爾母液(1mg/mL)1mL置于10mL量瓶中,用甲醇定容到刻度線即得100μg/mL的混合母液。使用混合母液依次稀釋標(biāo)準(zhǔn)曲線工作液:0.04,0.1,0.2,0.4,1,2,4,10μg/mL。按上述操作制備另一份混合母液依次稀釋為質(zhì)控樣品工作液:0.1,0.8,8μg/mL。分別精密移取標(biāo)曲工作液和質(zhì)控工作液10μL,加細(xì)胞溫孵過(guò)空白HBSS緩沖液190μL,渦旋混勻,即得模擬標(biāo)準(zhǔn)曲線樣品和質(zhì)控樣品。

    2.3 熒光黃的檢測(cè)

    精密稱(chēng)取熒光黃15.65 mg于100 mL量瓶中,使用HBSS緩沖液定容至刻度,即得300μmol/L熒光黃溶液。用HBSS逐級(jí)稀釋300μmol/L熒光黃為 5,10,50,100,500,1 000 nmol/L標(biāo)曲工作溶液,采用多功能酶標(biāo)儀,激發(fā)波長(zhǎng)466 nm,發(fā)射波長(zhǎng)522 nm測(cè)量標(biāo)準(zhǔn)曲線和樣品的熒光強(qiáng)度。

    2.4 Caco-2細(xì)胞模型的建立和評(píng)價(jià)

    小室中的接種與培養(yǎng):取狀態(tài)良好的復(fù)蘇第4代之后的細(xì)胞,用細(xì)胞計(jì)數(shù)儀計(jì)數(shù),并調(diào)整細(xì)胞密度至每毫升1.0×105個(gè),接種24 h后更換培養(yǎng)液,第1周隔天換液,1周后每天換液,培養(yǎng)21 d。細(xì)胞單層完整性的形成:將Caco-2細(xì)胞按上述接種密度接種到直徑為35 mm的培養(yǎng)皿,在接種后第1,3,7,12,21天使用倒置顯微鏡拍照。細(xì)胞單層致密性的形成:使用Millicell?-ERS跨膜電阻儀測(cè)定Caco-2細(xì)胞接種到小室后的第1,3,7,12,21天的電阻值。檢測(cè)細(xì)胞單層的滲透性:測(cè)定300μmol/L熒光黃AP-BL側(cè)的通透性。

    2.5 給藥組和陽(yáng)性對(duì)照組的轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)

    2.5.1 藥物的配制

    給藥組:分別精密稱(chēng)取水飛薊賓102.04 mg和水飛薊賓葡甲胺119.83 mg于10 mL量瓶中,用DMSO溶液定容至刻度線即得10 mg/mL的母液。分別將給藥組母液用HBSS緩沖液稀釋成:水飛薊賓 HBSS(5,20,50μg/mL);水飛薊賓葡甲胺 HBSS(28μg/mL,體系中的 DMSO含量最終不超過(guò)0.5%)。

    陽(yáng)性對(duì)照組:分別精密稱(chēng)取鹽酸普萘洛爾148.00 mg和阿替洛爾133.20 mg于10 mL量瓶中,用甲醇定容到刻度線即得50 mmoL/L的母液,轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)時(shí)取上述母液50μL于50 mL量瓶中,用HBSS緩沖液分別稀釋1 000倍即得所需實(shí)驗(yàn)濃度的普萘洛爾(50μmoL/L)和阿替洛爾(50μmoL/L)的HBSS溶液。

    2.5.2 最大藥物濃度和溶劑對(duì)單層電阻值的影響

    細(xì)胞在小室中培養(yǎng)21 d后,分別在給予50μg/mL水飛薊賓的1 h和2 h測(cè)定Caco-2細(xì)胞單層的電阻值。給藥2 h后將給藥孔兩側(cè)更換為細(xì)胞培養(yǎng)液,在更換培養(yǎng)基后24 h再次測(cè)定給藥孔的電阻。

    2.5.3 正式轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn) 小室中細(xì)胞培養(yǎng)21 d后,選取電阻合格的孔室進(jìn)行正式的轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)。取出細(xì)胞板后倒掉小室兩側(cè)的培養(yǎng)基,用HBSS清洗3次,第3次在培養(yǎng)箱中孵30 min。對(duì)AP側(cè)到BL側(cè)的轉(zhuǎn)運(yùn):AP側(cè)加含藥的HBSS緩沖液200μL,作為給藥側(cè),BL側(cè)加入空白HBSS緩沖液1 000μL,作為接收側(cè);對(duì)于BL側(cè)到AP側(cè)的轉(zhuǎn)運(yùn):BL側(cè)加入含藥的 HBSS緩沖液1 000μL,作為給藥側(cè),AP側(cè)加入空白HBSS緩沖液200μL,作為接收側(cè)。給藥后將培養(yǎng)板置于37℃恒溫振蕩儀孵育,分別于30、60、90和120 min在接受側(cè)收取溶液100μL,取樣后同時(shí)加入空白預(yù)熱的HBSS液100μL。試驗(yàn)結(jié)束后收集兩側(cè)溶液,計(jì)算回收率。

    2.6 數(shù)據(jù)的計(jì)算與處理

    2.6.1 表觀通透系數(shù)(Papp)的計(jì)算

    dQ/dt為單位時(shí)間內(nèi)藥物通過(guò)Caco-2細(xì)胞單層的轉(zhuǎn)運(yùn)量,以藥物的累積轉(zhuǎn)運(yùn)量(Q)對(duì)取樣時(shí)間(t)作圖后,該直線的斜率為 dQ/dt;A為小室的膜面積,0.3 cm2;C0為給藥測(cè)藥物的初始濃度。

    2.6.2 藥物外排率的計(jì)算

    若藥物的ER大于2,說(shuō)明藥物的吸收過(guò)程可能有外排轉(zhuǎn)運(yùn)體參與。

    2.6.3 回收率的計(jì)算[10]

    計(jì)算公式中Mr-120是接受側(cè)120 min時(shí)藥物的累積轉(zhuǎn)運(yùn)量,包括取出樣品中的藥物量,Md-120給藥側(cè)剩余藥量,Md-0實(shí)驗(yàn)開(kāi)始時(shí)給藥側(cè)的總藥量。

    2.6.4 統(tǒng)計(jì)分析 所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以ˉx±s表示。采用兩獨(dú)立樣本的雙側(cè)t檢驗(yàn)對(duì)兩組數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,采用單因素方差分析對(duì)多組數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001表明差異有顯著性意義。

    3 結(jié) 果

    3.1 水飛薊賓HBSS緩沖液中方法學(xué)驗(yàn)證

    特異性:在本試驗(yàn)的LC-MS/MS條件下,水飛薊賓的出峰時(shí)間為1.80 min,內(nèi)標(biāo)氯唑沙宗的出峰時(shí)間為1.83 min。空白樣本、水飛薊賓以及內(nèi)標(biāo)的特異性色譜圖見(jiàn)圖2。

    殘留效應(yīng):在高濃度樣本ULOQ進(jìn)樣分析后,接著分析空白樣本,本方法未觀察到殘留效應(yīng)。

    標(biāo)準(zhǔn)曲線和定量下限:按“2.1.3”和“2.1.4”步驟處理標(biāo)準(zhǔn)曲線樣品并同時(shí)制備空白樣本及含內(nèi)標(biāo)的空白樣本,進(jìn)行LC-MS/MS分析。以待測(cè)物峰面積As和內(nèi)標(biāo)峰面積Ai的比值f(f=As/Ai),對(duì)待測(cè)物濃度c作權(quán)重回歸計(jì)算,選1/c2為權(quán)重因子得出標(biāo)準(zhǔn)曲線方程,水飛薊賓:y=0.012 5x+0.006 29,r=0.996 6(n=8)。表明水飛薊賓在 1~1 500 ng/mL內(nèi)線性關(guān)系良好。水飛薊賓LLOQ為 1 ng/mL,準(zhǔn)確度為 83.7% ~118.0%,RSD為13.8%。

    稀釋效應(yīng):考察了超限樣品稀釋5,20,50倍,其中 RSD在2.7~5.7%之間,RE在 -5.1% ~-9%。

    準(zhǔn)確度和精密度:按“2.2.3”和“2.2.4”步驟處理質(zhì)控樣品,2 d完成3個(gè)分析批,批間和批內(nèi)的RE在 -5.6%~2.9%,批間和批內(nèi) RSD在4.1%~14.5%。

    水飛薊賓在HBSS緩沖液中的穩(wěn)定性:準(zhǔn)確度在±15%,RSD均小于15%。各項(xiàng)結(jié)果均符合要求FDA生物樣本分析方法學(xué)驗(yàn)證的要求[11],表明此檢測(cè)方法穩(wěn)定可靠。

    3.2 Caco-2細(xì)胞單層的生長(zhǎng)過(guò)程

    倒置顯微鏡下觀察到的Caco-2細(xì)胞單層從接種到小室中的第1天到第21天的生長(zhǎng)過(guò)程見(jiàn)圖3。到第21天時(shí),Caco-2細(xì)胞基本無(wú)間隙,形成緊密連接。

    Figure 2 Representative MRM chromatograms of(A)silybin and(B)chlorzoxazone(IS)for(I)blank HBSS buffer and(II)blank sample spiked with silybin,chlorzoxazone.Arrows indicate retention time of silybin and IS

    Figure 3 Growth process of Caco-2 cellmonolayermodel after seeding(×100)

    3.3 Caco-2細(xì)胞單層形成過(guò)程中跨膜電阻值變化

    Caco-2細(xì)胞接種到小室后,從第1周到第2周TEER隨著接種的時(shí)間逐漸增大,直到第3周時(shí)TEER增長(zhǎng)極其緩慢,幾乎達(dá)到飽和,不再增長(zhǎng)。到第21天時(shí)TEER已超過(guò)350Ω·cm2。TEER值易受多種因素的影響,一般Caco-2細(xì)胞培養(yǎng)到15~21 d時(shí),達(dá)到一個(gè)穩(wěn)定值,不同的實(shí)驗(yàn)環(huán)境會(huì)得到不同的TEER,有的低至150Ω·cm2,有的高至900Ω·cm2。結(jié)合本實(shí)驗(yàn)中TEER已達(dá)穩(wěn)定的趨勢(shì)以及熒光黃的Papp呈現(xiàn)低滲透性的特點(diǎn),表明本實(shí)驗(yàn)中Caco-2細(xì)胞單層模型的致密性良好[12]。

    3.4 熒光黃、阿替洛爾和普萘洛爾細(xì)胞單層的滲透性結(jié)果

    Caco-2細(xì)胞在小室中培養(yǎng)21 d后,熒光黃(300μmoL/L)、阿替洛爾(50μmoL/L)、普萘洛爾(50μmoL/L)的細(xì)胞單層滲透性結(jié)果見(jiàn)表2。熒光黃的Papp在5.83~7.03×10-10cm/s之間,遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于1×10-7cm/s,表明此孔的緊密連接合格[7]。文獻(xiàn)中報(bào)道的阿替諾爾Papp約為2.01×10-7cm/s,普萘洛爾Papp約為 4.19×10-5cm/s[8,13],本研究所得的阿替洛爾的Papp遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于普萘洛爾,并且兩者的Papp與文獻(xiàn)中報(bào)道相接近。結(jié)果表明本實(shí)驗(yàn)成功建立了Caco-2細(xì)胞單層模型。

    Table 1 Change of TEER value during Caco-2 cellmonolayer formation

    Table 1 Change of TEER value during Caco-2 cellmonolayer formation

    TEER:Transepithelial eletrical resistance

    Time of cultivation/d TEER/(Ω·cm2)11.5±3.12 3 25.3±1.25 7 168.1±3.30 12 335.4±4.25 1 21 366.4±7.67

    Table 2 P app value of lucifer yellow and positive control drugsn=3)

    Table 2 P app value of lucifer yellow and positive control drugsn=3)

    AP:Apical;BL:Basal

    Group Direction:AP-BL P appˉx±s Propranolol(50μmoL/L) 15.12×10-6 (13.85±1.53)×10-6 14.28×10-6 12.16×10-6 Atenolol(50μmoL/L) 0.79×10-6 (0.77±0.04)×10-6 0.73×10-6 0.81×10-6 Lucifer yellow(300μmoL/L) 5.88×10-10 (6.25±0.68)×10-10 5.83×10-10 7.03×10-10

    3.5 水飛薊賓的最大濃度和溶劑對(duì)單層電阻值的影響

    在Caco-2細(xì)胞單層的AP側(cè)給予50μg/mL水飛薊賓后,使用跨膜電阻儀檢測(cè)細(xì)胞單層的電阻值變化,見(jiàn)表3。TEER變化很小,表明實(shí)驗(yàn)過(guò)程中細(xì)胞單層的完整性不受影響。

    Table 3 TEER of Caco-2 monolayer was observed after adding50μg/mL silybin in apical side

    Table 3 TEER of Caco-2 monolayer was observed after adding50μg/mL silybin in apical side

    The time after silybin added to apical side/h TEER/(Ω·cm2)0 366.4±7.67 1 358.2±5.74 2 333.6±3.24 24 354.7±3.15

    3.6 水飛薊賓雙向轉(zhuǎn)運(yùn)結(jié)果

    同一濃度水平的藥物,隨著時(shí)間的增加,藥物的累積轉(zhuǎn)運(yùn)量呈線性增加;同一時(shí)間點(diǎn),隨著濃度的增加,藥物的累積轉(zhuǎn)運(yùn)量也增加,見(jiàn)圖4,說(shuō)明藥物的轉(zhuǎn)運(yùn)量具有時(shí)間(r>0.99)和濃度的相關(guān)性。低、中、高3個(gè)濃度水平的水飛薊賓和中濃度的水飛薊賓葡甲胺Papp(AP-BL)平均值分別為 2.01×10-6cm/s;2.93×10-6cm/s;3.81×10-6cm/s;2.70×10-6cm/s,Papp(BL-AP)平均值分別為 14.52×10-6cm/s;13.09×10-6cm/s;11.86×10-6cm/s;9.77×10-6cm/s(圖5)。由Papp(AP-BL)大于2×10-6cm/s,可判斷水飛薊賓有良好的通透性[14],水飛薊賓溶解度低,在BSC系統(tǒng)中為Ⅱ類(lèi)藥物。結(jié)果顯示ER遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于2(圖6),表明水飛薊賓的吸收過(guò)程中可能有外排轉(zhuǎn)運(yùn)體的參與。低濃度組的Papp(AP-BL)與高濃度組的存在顯著性差異(P<0.05),隨著水飛薊賓濃度的增加ER值有減少的趨勢(shì),可能是由于藥物高濃度時(shí)外排轉(zhuǎn)運(yùn)體被飽和,這一現(xiàn)象與文獻(xiàn)中報(bào)道的水飛薊賓為P-gp底物,可抑制P-gp活性的結(jié)論相一致[15]。此外中濃度的水飛薊賓和水飛薊賓葡甲胺的Papp相近,表明水飛薊賓成鹽對(duì)于跨膜通透性沒(méi)有改變。

    Figure 4 Relationship between cumulative transport amount and time of silybin and silybin-N-meglumine(AP-BL)

    Figure5 P app valuesof silybin and silybin-N-meglumine(ˉx±s,n=3)*P<0.05

    Figure 6 Efflux ratio of silybin and silybin-N-meglumine**P<0.01,***P<0.001

    3.7 Caco-2細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)回收率的計(jì)算

    在Caco-2細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)的最后一個(gè)時(shí)間點(diǎn)同時(shí)取給藥測(cè)和接受測(cè)的樣品,檢測(cè)給藥初始濃度和給藥測(cè)濃度,由表4可知平均回收率在80%~94%之間,說(shuō)明細(xì)胞單層對(duì)藥物的吸附和溶劑的蒸發(fā)基本對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果無(wú)影響,實(shí)驗(yàn)中得到的Papp是準(zhǔn)確的[9]。

    Table 4 Recovery of in transport in Caco-2 cell

    Table 4 Recovery of in transport in Caco-2 cell

    M d-120:Residue of silybin at120 min on the administration side;M r-120:Cumulative transportamountof silybin at120 min in receiving side;M d-0:Total amount of silybin at the beginning

    Group Direction c/(μg/mL) M d-120/(ng) M r-120/(ng) M d-0/(ng)Recovery/%Silybin AP-BL 5 843±32 19±3 1 020±14 85±3 20 2 928±236 117±13 3812±7 80±6 50 8 597±1 480 365±81 10 700±11 84±13 Silybin-N-meglumine 28 2 590±139 103±9 3 342±6 81±4 Silybin BL-AP 5 4 480±160 144±12 5 100±69 91±3 20 16 880±216 475±7 19 060±37 91±1 50 44 733±2 380 1 062±153 53 500±57 86±4 Silybin-N-meglumine 28 15 340±1 588 372±16 16 710±30 94±9

    4 討 論

    本實(shí)驗(yàn)在Caco-2模型中初步考察了水飛薊賓吸收機(jī)制,為改良已有的上市劑型,增加生物利用度,并同時(shí)減少變異提供理論依據(jù)。水飛薊賓雙向轉(zhuǎn)運(yùn)實(shí)驗(yàn)表明水飛薊賓的跨膜通透性良好,可判斷水飛薊賓在BSC系統(tǒng)中為Ⅱ類(lèi)藥物,水飛薊賓在胃腸道中的釋放是其吸收過(guò)程的重要影響因素,增加水飛薊賓的溶解度和溶出速率,可提高其口服生物利用度。市售的水飛薊賓卵磷脂復(fù)合物的膠囊劑和水飛薊賓成鹽片劑在比格犬體內(nèi)生物利用度實(shí)驗(yàn)的結(jié)果表明膠囊劑和成鹽片劑的絕對(duì)生物利用度相比于原料藥均有極大的提高,這與本實(shí)驗(yàn)的結(jié)果相一致。為進(jìn)一步明確膠囊劑與成鹽片劑提高口服生物利用度的程度不同的原因,還需通過(guò)體外溶出實(shí)驗(yàn)考察藥物磷脂復(fù)合物的形成、成鹽、晶型、減小粒徑對(duì)藥物釋放的影響。此外,Caco-2細(xì)胞模型在研究由轉(zhuǎn)運(yùn)體參與和細(xì)胞旁介導(dǎo)的吸收時(shí)有其局限性[16],在本實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)可能有外排轉(zhuǎn)運(yùn)體參與水飛薊賓的吸收,因此除了Caco-2細(xì)胞模型外還需使用其他方法來(lái)進(jìn)一步研究水飛薊賓的吸收機(jī)制。

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