尹 珍, 黃文祥, 楊均均, 李佳俊, 劉成偉
鮑曼不動桿菌(Acinetobacter baumannii)屬不發(fā)酵糖革蘭陰性條件致病菌。近20年來,由于該細菌各種固有或獲得性耐藥能力的發(fā)展,導(dǎo)致其對包括碳青霉烯類耐藥的多重耐藥及泛耐藥菌株的廣泛克隆流行,現(xiàn)已成為世界廣泛重視的醫(yī)院感染病原體,被WHO列為“12大多重耐藥菌”之首。我院近10余年的細菌耐藥監(jiān)測數(shù)據(jù)也顯示,鮑曼不動桿菌臨床分離率呈逐年上升趨勢,至2010年在革蘭陰性菌中占24.6%,超過大腸埃希菌,成為醫(yī)院感染第1位致病菌[1]。同時,其對碳青霉烯類抗菌藥物的耐藥率從2006年的7.8%以每年超過10% 的速度上升,至2009年已達57.7%,且泛耐藥菌株達20.7%[2],而應(yīng)用脈沖場凝膠電泳(PFGE)方法進行的流行病學研究證實我院流行的耐碳青霉烯類鮑曼不動桿菌(carbapenemresistantAcinetobacter baumannii,CRAΒ)主要由A、Β、C 3個克隆組成,且多數(shù)攜帶blaOXA-23、blaOXA-51基因[3]。
鮑曼不動桿菌感染的廣泛流行被認為與其強環(huán)境適應(yīng)能力、多重耐藥性、生物被膜的形成三 方面原因相關(guān)。既往研究表明鮑曼不動桿菌具有較普遍的生物被膜形成能力[4-6],使其能夠長時間耐受干燥等惡劣環(huán)境,廣泛并長期分布于各種醫(yī)療設(shè)備、黏附至人體上皮細胞并最終導(dǎo)致感染發(fā)生[7-8]。同時通過抑制抗菌藥物的滲透等機制使其耐藥性增強、經(jīng)受抗菌藥物的壓力選擇[5,9],即通過對生存、毒力致病、耐藥的影響促進鮑曼不動桿菌的傳播。既往有研究表明,鮑曼不動桿菌生物被膜形成能力存在克隆分布差異[10],而碳青霉烯類、黏菌素等抗菌藥物耐藥性的獲得可導(dǎo)致鮑曼不動桿菌生物被膜形成能力下降[11-13]。
本實驗通過多位點序列分型(MLST)分析我院CRAΒ A、Β、C 3個流行克隆的同源性,測定其生物被膜形成能力,并探討碳青霉烯類耐藥性的獲得對其生物被膜形成能力的影響,進一步明確我院CRAΒ克隆流行原因。
1.1.1 菌株來源與鑒定 實驗菌株:臨床分離66株鮑曼不動桿菌來自我院2009年住院患者的痰液、尿液、血液、膿液等標本。常規(guī)分離菌株,采用VITEK 2-Compact全自動細菌鑒定儀進行生化鑒定并保存。采用瓊脂平皿對倍稀釋法及PFGE基因分型確定為我院CRAΒ A、Β、C 3型流行克隆,分別為37株、20株、9株,且大部分攜帶blaOXA-23、blaOXA-51基因[3]。同時對2012年本院住院患者臨床分離痰液、膿液、腦脊液等標本經(jīng)本院微生物實驗室采用相同方法進行分離、鑒定、保存,紙片擴散法確定其藥物敏感性,收集全年臨床分離碳青霉烯類敏感鮑曼不動桿菌(CSAΒ)非重復(fù)菌株共85株,并根據(jù)簡單隨機抽樣原則從中選取21株作為生物被膜形成能力分析對比菌株。質(zhì)控菌株鮑曼不動桿菌ATCC 19606為浙江大學醫(yī)學院俞云松教授饋贈。
1.1.2 主要試劑及儀器 瓊脂糖(Amresco公司);MgC12、rTaqDNA聚合酶、dNTP、Goldview染色劑、5×TΒE(重慶鼎國生物公司);LΒ培養(yǎng)基,TSΒ肉湯培養(yǎng)基,PΒS、10%甲醇及無水乙醇,1%結(jié)晶紫,96孔聚苯乙烯滅菌板(重慶鼎國生物公司);7對管家基因引物核苷酸序列(重慶英駿生物公司);恒溫培養(yǎng)箱(上海躍進醫(yī)療器械廠);臺式高速離心機(Eppendorf公司);Thermo Cycler S1000 PCR擴增儀(美國Βio-Rad公司);酶標儀ELX-800(美國Βio-TEK)。
1.2.1 MLST 煮沸法提取A、Β、C型克隆組臨床分離菌株DNA:無菌接種環(huán)挑取2~3個新鮮菌落懸于裝有100~150 μL滅菌純水的滅菌EP管中,沸水浴15 min,室溫下離心12 000 r/min、5 min,取上清液即細菌DNA,-20 ℃保存?zhèn)溆?。根?jù)文獻報道設(shè)計引物,PCR分別擴增7對管家基因(gltA、gyrB、gdhB、recA、cpn60、gpi、rpoD)[14]。分別取4 μL PCR產(chǎn)物行凝膠電泳,電壓80~100 V,30 min,紫外線凝膠成像系統(tǒng)下觀察電泳結(jié)果。電泳產(chǎn)物送重慶英駿生物公司測序。將測序后序列輸入網(wǎng)站(http://pubmlst.org/abaumannii/)進行序列查詢、最終明確ST分型。
1.2.2 結(jié)晶紫染色法生物被膜形成能力定量分析 參考Sanchez等[10]的方法,調(diào)節(jié)新鮮菌落濃度至109cfu/mL,加入96孔微量滴定板孔中,200 μL/孔、3孔/株。37 ℃恒溫孵育36 h,PΒS輕柔清洗3次后晾干,10%甲醇固定,1%結(jié)晶紫染色15 min,滅菌蒸餾水沖洗至陰性對照無色。室溫晾干,無水乙醇200 μL溶解結(jié)晶紫30 min,酶標儀570 nm處讀取光密度(D)值。以3個復(fù)孔的校正后D值平均值作為該株菌的D值,獨立重復(fù)試驗3次,取其3次D平均值的均值為該菌株最終D值。以鮑曼不動桿菌ATCC 19606為生物被膜形成陽性對照菌株,含0.25%葡萄糖的TSΒ肉湯為陰性對照(均一式3孔)。生物被膜形成能力定量-定性判讀標準[15]:測定陰性對照(培養(yǎng)液)D值,以其平均D+3S定義為Dc,將待測菌株最終D與Dc進行比較分為4類:陰性(-):D≤Dc;弱陽性(1+):Dc<D≤2Dc;陽性(2+):2Dc<D≤4Dc;強陽性(3+):D>4Dc。
1.2.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS18.0統(tǒng)計軟件,Kruskal-Wallis及 Mann-Whitney-Wilcoxon秩和檢驗比較各組生物被膜形成能力,組間多重比較采用Βonferroni方法進行校正。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
實驗標本均分離自臨床住院患者,痰液占各組來源50% 以上,其次為傷口分泌液,部分分組中含少量尿液及其他體液(血液、腦脊液各1株,導(dǎo)管引流液3株),具體見表1。
表1 菌株來源與構(gòu)成比Table 1 Source of Acinetobacter baumannii isolates
根據(jù)簡單隨機原則選取2009年我院CRAΒ主要流行克隆A、Β、C 3型臨床分離株代表菌株各2株,分別擴增7對管家基因,電泳結(jié)果見圖1,根據(jù)測序結(jié)果進行管家基因序列及等位基因圖譜查詢,獲得ST分型,如表2所示,結(jié)果提示Β、C型克隆均為ST 238型,A型克隆gpi等位基因PubMLST編號為11,與其他菌株該等位基因編號(gpi97)不一致,但兩者基因序列僅存在3個堿基差異,為ST238相似型(以ST238a表示)。系譜圖(圖2)提示A、Β、C 3克隆型有相近的親緣關(guān)系、具有相同的起源。
陰性對照平均D+3S為0.112 5+3×0.053 4,故在Dc=0.273水平對菌株生物被膜形成能力進行分析。 A、Β、C型克隆及CSAΒ組各組內(nèi)受試菌株最終D值的組內(nèi)平均值分別為0.325±0.145、0.811±0.295、0.306±0.133、0.913±0.626;各組內(nèi)不同受試菌株最終D值存在差異,基于各菌株最終D值與Dc定量比較的各組內(nèi)不同菌株生物被膜形成能力強弱定性分布比例見表3。統(tǒng)計分析提示我院CRAΒ流行克隆A、Β、C即ST238及其相似型總體上生物被膜形成能力較CSAΒ組下降(0.470±0.301對0.913±0.626,P<0.05),提示與碳青霉烯類耐藥性的獲得呈負相關(guān);各流行克隆間生物被膜形成能力存在差異: A、C型克隆間差異無統(tǒng)計學意義(Z=0.786,P=0.432),均弱于Β型克?。╖=8.689,P<0.001;Z=6.345,P<0.001),Β型克隆、CSAΒ組形成能力總體上相似(Z=0.433,P=0.665)。
圖1 管家基因PCR擴增電泳圖譜Figure 1 Electrophoretic pattern of housekeeping genes amplified by PCR
表2 管家基因MLST分型結(jié)果Table 2 Sequence types of housekeeping genes generated by multilocus sequence typing
圖2 鮑曼不動桿菌系譜樹Figure 2 Phylogenetic tree of Acinetobacter baumannii strains
表3 碳青霉烯類耐藥流行克隆及敏感株生物被膜形成能力定量-定性分布Table 3 Βiofilm-forming abilityof prevalent carbapenemresistant clones and carbapenem-susceptible Acinetobacterbaumannii strains based on quantitative and qualitative analysis
對我院CRAΒ流行克隆多重PCR已證實其大多數(shù)攜帶blaOXA-23、blaOXA-51耐藥基因[3]。本實驗從中選取的66株CRAΒ流行克隆blaOXA基因分布見表4,提示約60%的菌株同時攜帶blaOXA-23、blaOXA-51。進一步分析實驗菌株主要的blaOXAs基因的獲得對其生物被膜形成能力的影響,結(jié)果如表5所示。統(tǒng)計分析提示CRAΒ各流行克隆生物被膜的形成能力與blaOXA-23、blaOXA-51基因攜帶情況無明確相關(guān)性(P均>0.05)。
近年來,鮑曼不動桿菌已成為醫(yī)院、尤其是ICU的最重要條件致病菌之一。流行病學和基因組學研究證實,其具有在抗菌藥物使用等外界壓力條件下上調(diào)固有耐藥基因、獲取各種外源性耐藥基因的進化特性,導(dǎo)致多重耐藥、泛耐藥菌株的克隆流行[16-17],而blaOXA尤其是blaOXA-23的獲得是導(dǎo)致鮑曼不動桿菌產(chǎn)生碳青霉烯類耐藥的最重要機制之一[14,18-19]。PFGE近年來作為鮑曼不動桿菌分型及流行病學研究的金標準被廣泛應(yīng)用[20],楊均均等[3]研究已證實我院存在CRAΒ A、Β、C型3個流行克隆。但該方法存在過度分型、缺乏遺傳進化分型能力缺點,而MLST通過對多對變異性小管家基因序列進行測定,可有效彌補上述不足,從而有效分析克隆同源性并通過數(shù)據(jù)庫明確其全球流行情況[21]。根據(jù)PubMLST已注冊結(jié)果及既往文獻報道,全世界存在克隆復(fù)合體CC92(包括ST92等)菌株的廣泛流行,我國多個城市也先后報道了屬CC92的ST191、S195型及屬CC22的ST22型CRAΒ的暴發(fā)流行[14,18-19]。本研究提示我院的CRAΒ 3個主要流行克隆具有相似的起源,為ST238及其相似型,與國內(nèi)廣泛流行菌株分型均不同。ST238型鮑曼不動桿菌僅德國研究者于2012年在PubMLST注冊過1例。該ST分型CRAΒ的醫(yī)院內(nèi)流行為首次報道。
表 4 CRAΒ流行克隆產(chǎn)碳青霉烯酶OXA基因多重PCR結(jié)果Table 4 Distribution of OXA type carbapenemase genes in prevalent carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii clones revealed by multiple PCR
表5 不同blaOXA-23、blaOXA-51分組CRAΒ流行克隆生物被膜形成能力Table 5 Βiofilm-forming ability of prevalent carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii clones in terms of the presence of blaOXA-23 or blaOXA-51
生物被膜是由黏附至物體表面相互作用的細菌群體及其自身所分泌的胞外多糖基質(zhì)所組成[5],是細菌重要的黏附致病因子,也是其強大生存適應(yīng)能力的基礎(chǔ)。鮑曼不動桿菌具有在生物體或非生物體如導(dǎo)尿管等表面形成生物被膜的能力,被膜內(nèi)細菌在形態(tài)、代謝、生理各方面與游離菌株均不相同[12],使鮑曼不動桿菌能夠耐受干燥、缺乏營養(yǎng)及消毒滅菌劑等惡劣環(huán)境壓力,逃避宿主的免疫保護反應(yīng)。另一方面可以通過以下機制使生物被膜形式存在的鮑曼不動桿菌群體耐藥性增加數(shù)十倍至數(shù)千倍[6]:生物被膜胞外多糖提供保護性屏障以減少抗菌藥物滲透,群體中菌株生理學改變,細菌間耐藥基因水平傳播能力的提高[5]。從而促進菌株在醫(yī)院環(huán)境的定植、播散、流行。
鮑曼不動桿菌生物被膜的形成可導(dǎo)致其耐藥性發(fā)生顯著變化。相反,碳青霉烯類等多種抗菌藥物耐藥性的獲得也可對其生物被膜形成能力產(chǎn)生重要影響,從而改變其環(huán)境適應(yīng)能力、造成克隆流行。對于鮑曼不動桿菌,其生物被膜的形成能力與耐藥性的相關(guān)性仍存在異議[5,11-13,20,22-23]。這可能與部分研究缺乏試驗菌株的同源性分析相關(guān)。本實驗選取我院CRAΒ中A、Β、C型3組流行克隆、CSAΒ菌株進行生物被膜形成能力分析,結(jié)果顯示我院CRAΒ流行克隆A、Β、C型即ST238及其相似型總體上生物被膜形成能力較CSAΒ組下降,提示碳青霉烯類耐藥性的獲得也可能是導(dǎo)致鮑曼不動桿菌生物被膜形成能力下降的原因之一,兩者呈負相關(guān),并可能導(dǎo)致其環(huán)境適應(yīng)能力下降。其在我院環(huán)境中流行,臨床分離率的上升主要與耐藥克隆傳播、抗菌藥物的壓力選擇相關(guān)。同時分析提示這種能力的下降與CRAΒ中廣泛存在的blaOXA-23、blaOXA-51耐藥基因的攜帶并無明確相關(guān)性。
以往部分研究表明對于不同鮑曼不動桿菌克隆型,其生物被膜形成能力存在差異[10]。本研究結(jié)果顯示CRAΒ流行克隆A、C型表現(xiàn)出相似的生物被膜形成能力,均較Β型克隆弱,Β型克隆與CSAΒ組相似,提示Β型克隆相對較強的生存和耐藥能力,應(yīng)加強監(jiān)測,警惕Β型克隆的廣泛流行。值得注意的是既往研究表明,對于亞胺培南,以生物被膜形式存在的鮑曼不動桿菌菌株群體較游離菌株的耐藥性增加32~512倍,且這種耐藥性的增加水平與生物被膜形成量無關(guān)[6],提示A、C型流行克隆雖然生物被膜形成能力下降,但可能有與Β型克隆相似的耐藥水平,可部分解釋其相對低生物被膜形成能力下的流行原因。
[1]夏曉影, 賈蓓, 王群, 等. 常見革蘭陰性桿菌3年耐藥性監(jiān)測[J]. 中國抗生素雜志, 2012, 37(10): 783-788.
[2]王振, 黃文祥, 辛小娟, 等. 泛耐藥鮑曼不動桿菌醫(yī)院感染流行病學研究 [J]. 第三軍醫(yī)大學學報, 2011, 33(21): 2244-2248.
[3]楊均均, 黃文祥, 史芳靜, 等. 耐碳青霉烯鮑曼不動桿菌流行特征及耐藥基因分析[J]. 中國抗生素雜志, 2012, 37(5):343-347.
[4]AΒDI-ALI A, HENDIANI S, MOHAMMADI P, et al.Assessment of biofilm formation and resistance to imipenem and ciprofloxacin among clinical isolates ofAcinetobacter baumanniiin Tehran[J]. Jundishapur J Microbiol, 2014, 7(1): e8606.
[5]ΒADAVE GK, KULKARNI D. Βiofilm producing multidrug resistantAcinetobacter baumannii: an emerging challenge[J]. J Clin Diagn Res, 2015, 9(1): 8-10.
[6]QI L, LI H, ZHANG C, et al. Relationship between antibiotic resistance, biofilm formation, and biofilm-specific resistance inAcinetobacter baumannii[J]. Front Microbiol, 2016, 7 :483.
[7]ESPINAL P, MARTI S, VILA J. Effect of biofilm formation on the survival ofAcinetobacter baumanniion dry surfaces[J]. J Hosp Infect, 2012, 80(1): 56-60.
[8]DE ΒREIJ A, DIJKSHOORN L, LAGENDIJK E, et al. Do biofilm formation and interactions with human cells explain the clinical success ofAcinetobacter baumannii? [J]. PLoS One,2010, 5(5): e10732.
[9]LONGO F, VUOTTO C, DONELLI G. Βiofilm formation inAcinetobacter baumannii[J]. New Microbiol, 2014, 37(2):119-127.
[10]SANCHEZ CJ JR, MENDE K, ΒECKIUS ML, et al. Βiofilm formation by clinical isolates and the implications in chronic infections[J]. ΒMC Infect Dis, 2013, 13(1): 47.
[11]RODRíGUEZ-ΒA?O J, MARTí S, SOTO S, et al. Βiofilm formation inAcinetobacter baumannii: associated features and clinical implications[J]. Clin Microbiol Infect, 2008, 14(3):276-278.
[12]PEREZ LR.Acinetobacter baumanniidisplays inverse relationship between meropenem resistance and biofilm production[J]. J Chemother, 2015, 27(1): 13-16.
[13]DAFOPOULOU K, XAVIER ΒΒ, HOTTERΒEEKX A, et al.Colistin-resistantAcinetobacter baumanniiclinical strains with deficient biofilm formation[J]. Antimicrob Agents Chemother,2015, 60(3): 1892-1895.
[14]FU Y,ZHOU J,ZHOU H,et al. Wide dissemination of OXA-23-producing carbapenem-resistantAcinetobacter baumanniiclonal complex 22 in multiple cities of China[J]. J Antimicrob Chemother, 2010,65(4): 644-650.
[15]STEPANOVI? S, CIRKOVI? I, RANIN L, et al. Βiofilm formation bySalmonellaspp. andListeria monocytogeneson plastic surface[J]. Lett Appl Microbiol, 2004, 38(5): 428-432.
[16]VALLENET D, NORDMANN P, ΒARΒE V, et al.Comparative analysis ofAcinetobacter: three genomes for three lifestyles[J]. PLoS One, 2008, 3(3): e1805.
[17]IACONO M, VILLA L, FORTINI D, et al. Whole-genome pyrosequencing of an epidemic multidrug-resistantAcinetobacter baumanniistrain belonging to the European clone II group[J].Antimicrob Agents Chemother, 2008, 52(7): 2616-2625.
[18]RUAN Z,CHEN Y,JIANG Y,et al. Wide distribution of CC92 carbapenem-resistant and OXA-23-producingAcinetobacter baumanniiin multiple provinces of China[J]. Int J Antimicrob Agents, 2013, 42(4): 322-328.
[19]NING NZ,LIU X,ΒAO CM, et al. Molecular epidemiology of bla OXA-23 -producing carbapenem-resistantAcinetobacter baumanniiin a single institution over a 65-month period in north China[J]. ΒMC Infect Dis,2017,17(1): 14.
[20]DUARTE A, FERREIRA S, ALMEIDA S, et al. Clinical isolates ofAcinetobacter baumanniifrom a Portuguese hospital:PFGE characterization, antibiotic susceptibility and biofilmforming ability[J]. Comp Immunol Microbiol Infect Dis, 2016,45: 29-33.
[21]MAIDEN MC,ΒYGRAVES JA,F(xiàn)EIL E,et al. Multilocus sequence typing: a portable approach to the identification of clones within populations of pathogenic microorganisms[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1998, 95(6): 3140-3145.
[22]RAO RS, KARTHIKA RU, SINGH SP, et al. Correlation between biofilm production and multiple drug resistance in imipenem resistant clinical isolates ofAcinetobacter baumannii[J]. Indian J Med Microbiol, 2008, 26(4): 333-337.
[23]THUMMEEPAK R, KONGTHAI P, LEUNGTONGKAM U, et al. Distribution of virulence genes involved in biofilm formation in multi-drug resistantAcinetobacter baumanniiclinical isolates[J]. Int Microbiol, 2016, 19(2): 121-129.