周 莊 ,劉望予 ,婁云云 ,湯錦周 ,王建榮 ,陳錦緞
(1.福州市第二醫(yī)院,福建 福州 350007;2.福建中醫(yī)藥大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合研究院,福建 福州 350122;3.福建中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,福建 福州 350122)
大腸癌發(fā)病率和死亡率均呈逐年上升趨勢,每年新增病例高達(dá)120萬,死亡病例也遠(yuǎn)超60萬人[1-2]。 化療是大腸癌晚期患者、轉(zhuǎn)移性患者等不適合手術(shù)患者的主要治療方式[3],5-氟尿嘧啶(5-FU)是大腸癌化療的基礎(chǔ)用藥[4],廣泛應(yīng)用于大腸癌治療。然而,耐藥的產(chǎn)生和毒副作用的存在是影響其臨床療效并最終導(dǎo)致治療失敗的主要原因[5]。因此,抑制耐藥性將有助于提高化療藥物療效和降低化療藥物使用濃度,從而降低化療導(dǎo)致的毒副作用。
大腸癌屬中醫(yī)“腸癖”“腸覃”范疇,以“濕熱蘊(yùn)毒下迫大腸、熱傷腸絡(luò)、毒邪成癰”為主要病機(jī),“清熱解毒、消癰散結(jié)”是其治法治則之一[6-7]。 敗醬草屬敗醬科植物黃花敗醬、白花敗醬的干燥全草,具有清熱解毒、祛瘀止痛、消癰排膿的功效,符合大腸癌“清熱解毒、消癰散結(jié)”治法治則[8-9],已有研究報(bào)道,敗醬草在臨床中廣泛應(yīng)用于大腸癌等惡性腫瘤的治療,且療效確切[10]?;A(chǔ)研究也證實(shí)了敗醬草具有顯著抑制大腸癌細(xì)胞增殖、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡、抑制血管新生以及抑制炎癥相關(guān)因子的作用[11-15]。然而,對大腸癌治療藥物5-FU耐藥的影響尚未見報(bào)道,因此,本課題探討了敗醬草對5-FU耐藥性的影響。
1.1 細(xì)胞株和藥物 人源性腸癌細(xì)胞株HCT-8和耐5-FU的HCT-8/5-FU細(xì)胞株均購于江蘇南京凱基生物科技發(fā)展有限公司;敗醬草全草購于福建中醫(yī)藥大學(xué)國醫(yī)堂。
1.2 試劑 胎牛血清(FBS)、RPMI 1640空白培養(yǎng)基、含 EDTA(0.25%)的胰蛋白酶(美國 GBICO公司);PBS、青霉素-鏈霉素(美國 Hyclone公司);結(jié)晶紫、MTT(美國 Amresco公司);5-FU粉末、阿霉素(美國Sigma公司)。
1.3 儀器 細(xì)胞培養(yǎng)工作臺(蘇州凈化設(shè)備公司);CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher公司);離心機(jī)(德國Eppendorf公司);全自動酶標(biāo)儀(美國Bio-Tek公司);熒光倒置顯微鏡系統(tǒng)(德國徠卡公司)。
2.1 藥物配制 敗醬草全草500 g溶入4 000 mL 80%乙醇中,加熱回流提取2次,每次30 min,提取液過濾,濾液減壓濃縮(50℃,0.01MPa)至相對密度1.05,噴霧干燥(進(jìn)出口溫度為 140℃/80℃)得干粉[16];稱量適量提取物,用 50%DMSO 和 50%PBS溶解,配制成 250 mg/mL的儲存溶液,經(jīng)震蕩和超聲后,-20℃分裝保存?zhèn)溆茫皇褂们爸檬覝鼗謴?fù),用RPMI 1640完全培養(yǎng)基稀釋成所需的濃度并過濾,并用 DMSO 補(bǔ)齊[16]。
2.2 5-FU溶液配制 采用DMSO溶解適量的5-FU粉末,并配制成1M的存儲液,置于-20℃冰箱保存?zhèn)溆?。使用時(shí)采用倍比稀釋法將5-FU儲存液用完全培養(yǎng)基配制成所需的使用濃度,用于細(xì)胞干預(yù)。
2.3 細(xì)胞培養(yǎng) 將細(xì)胞置于25 cm2的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),待細(xì)胞覆蓋率達(dá)80%~90%時(shí),用含EDTA的胰酶消化(每瓶加入0.8 mL胰酶,消化2~3 min);待細(xì)胞消化下來后,加入2~3倍體積的新鮮完全培養(yǎng)基(完全培養(yǎng)基含10%FBS、100 U/mL青霉素和100 μg/mL 鏈霉素的 RPMI 1640 培養(yǎng)液)中和,將上述細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到15 mL的離心管中離心(1 000 轉(zhuǎn) /min,3~5 min);離心結(jié)束后,棄上清,并加入5 mL新鮮培養(yǎng)基,重懸、計(jì)數(shù),用于后續(xù)的接種、傳代。HCT-8細(xì)胞用RPMI 1640完全培養(yǎng)基培養(yǎng),HCT-8/5-FU 用含 15 μg/mL RPMI 1640 完全培養(yǎng)基培養(yǎng),實(shí)驗(yàn)前改用不含5-FU的RPMI 1640完全培養(yǎng)基培養(yǎng)。
2.4 倒置顯微鏡觀察細(xì)胞生長 HCT-8和HCT-8/5-FU 分別按 2×105/mL接種于 6孔板中(2 mL/孔),置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜,并給予不同濃度的5-FU 干預(yù)(0~200 μM)或敗醬草干預(yù)(0~2 mg/mL)。藥物干預(yù)24 h后通過倒置顯微鏡(×200)觀察細(xì)胞生長。
2.5 MTT法檢測細(xì)胞活力 取對數(shù)生長期的HCT-8/5-FU細(xì)胞及其親本細(xì)胞HCT-8,分別接種于96孔板(100 μL /孔,0.8×105/mL);細(xì)胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜后,分別加入終濃度為 0、50、100和200 μM 5-FU 溶液 (HCT-8/5-FU 細(xì)胞和 HCT-8細(xì)胞)或 0、0.5、1、2 mg/mL 敗醬草溶液(HCT-8/5-FU細(xì)胞)干預(yù)24 h,每個(gè)劑量各3各復(fù)孔。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,棄上清液,每孔加入 MTT 溶液(100 μL/孔,0.5 mg/mL)并在培養(yǎng)箱中避光孵育4 h;孵育結(jié)束后,棄 MTT 溶液,并加入 DMSO(100 μL/孔)溶解,采用全自動酶標(biāo)儀(波長為570 nm)測定OD值,并根據(jù)OD值計(jì)算細(xì)胞的活力。以對照組細(xì)胞活力為100%,實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞活力=實(shí)驗(yàn)組OD值/對照組OD值×100%。
2.6 熒光倒置顯微鏡觀察阿霉素(ADM)蓄積情況取對數(shù)生長期HCT-8/5-FU細(xì)胞接種于6孔板(1×105/mL,2 mL/孔),細(xì)胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜后,分別給予不同濃度的敗醬草溶液(0~2 mg/mL)干預(yù)24 h。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,棄上清,PBS清洗3遍,加入適量的阿霉素染色溶液(5 μM,1 mL/孔),培養(yǎng)箱避光孵育后,用預(yù)冷的PBS清洗3遍,用熒光倒置顯微鏡觀察拍照(×200)。
2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件分析。計(jì)量資料屬正態(tài)分布的以(x±s)表示,2組數(shù)據(jù)和多組數(shù)據(jù)分別采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)和多因素方差分析。
3.1 HCT-8/5-FU細(xì)胞株對5-FU具有耐藥性驗(yàn)證 HCT-8和HCT-8/5-FU細(xì)胞分別經(jīng)不同濃度5-FU(0、50、100、200 μmol/L)干預(yù)后,倒置顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn)HCT-8細(xì)胞數(shù)目逐漸減少,部分細(xì)胞出現(xiàn)皺縮、變圓和漂浮等現(xiàn)象,而HCT-8/5-FU細(xì)胞未見明顯細(xì)胞形態(tài)和細(xì)胞數(shù)量改變,可見其具有一定的耐藥性(圖1A)。這一現(xiàn)象進(jìn)一步通過MTT實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,MTT檢測結(jié)果如圖1B所示:HCT-8細(xì)胞經(jīng)不同濃度5-FU干預(yù)后,細(xì)胞活力顯著降低;而HCT-8/5-FU細(xì)胞在不同濃度5-FU干預(yù)后,細(xì)胞活力下降不明顯;在相同濃度5-FU干預(yù)下,HCT-8的細(xì)胞活力顯著低于HCT-8/5-FU細(xì)胞。進(jìn)一步證實(shí)了HCT-8/5-FU細(xì)胞對5-FU具有一定的耐藥性。
圖1 HCT-8/5-FU細(xì)胞耐藥性驗(yàn)證圖(×200)
3.2 敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞生長的影響 倒置顯微鏡的觀察結(jié)果如圖2所示:不同濃度敗醬草(0.5~2 mg/mL)干預(yù)后,HCT-8/5-FU 細(xì)胞覆蓋率明顯降低,可見部分細(xì)胞變小、變圓,提示敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞的生長有一定的抑制作用。
3.3 敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞活力的影響 如圖3所示:用不同濃度的敗醬草溶液干預(yù)24 h,HCT-8/5-FU細(xì)胞株細(xì)胞活力明顯降低,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05);且濃度越高,細(xì)胞活力越低。實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞生長的抑制作用。
圖2 敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞形態(tài)的影響(×200)
3.4 敗醬草溶液對HCT-8/5-FU細(xì)胞阿霉素蓄積的影響 阿霉素具有自帶熒光的特性,阿霉素在細(xì)胞內(nèi)的熒光強(qiáng)度可以反映其在細(xì)胞內(nèi)的濃度從而反映細(xì)胞膜的外排功能。本研究采用阿霉素染色和倒置熒光顯微鏡觀察不同濃度敗醬草干預(yù)對阿霉素蓄積的影響。如圖4所示:與對照組比較(熒光較弱),不同濃度敗醬草溶液(0.5~2 mg/mL)干預(yù)后,可顯著增加阿霉素(紅色熒光)在HCT-8/5-FU細(xì)胞株細(xì)胞內(nèi)的蓄積。結(jié)果提示敗醬草具有抑制HCT-8/5-FU細(xì)胞膜藥物外排的作用。
圖3 敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞活力的影響
圖4 敗醬草對HCT-8/5-FU細(xì)胞阿霉素蓄積的影響(×200)
5-FU是大腸癌化療基礎(chǔ)用藥,在體內(nèi)會轉(zhuǎn)化成氟尿嘧啶核苷酸,具有抑制DNA、RNA合成的作用[17],臨床上廣泛應(yīng)用于消化系統(tǒng)腫瘤的治療[4]。然而化療過程產(chǎn)生耐藥是影響化療療效和最終導(dǎo)致治療失敗的最主要原因。腫瘤化療導(dǎo)致的耐藥機(jī)制極其復(fù)雜,其中ABC家族蛋白高表達(dá)介導(dǎo)的細(xì)胞膜的外排功能異常增強(qiáng)和細(xì)胞凋亡增殖蛋白異常表達(dá)介導(dǎo)的凋亡抵抗是腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生耐藥功能的主要機(jī)制之一[18],因此,抑制腫瘤細(xì)胞生長和藥物外排功能是抑制耐藥的重要途徑之一。
中藥治療惡性腫瘤的歷史悠久,療效可佳,而且相對化療藥物,具有毒副作用較小和作用靶點(diǎn)多等特點(diǎn)?;A(chǔ)研究已證實(shí)敗醬草具有顯著抑制大腸癌細(xì)胞增殖、誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡和抑制血管新生的作用[10-12]。本研究進(jìn)一步研究了敗醬草具有顯著抑制HCT-8/5-FU細(xì)胞的作用,同時(shí)也初步證實(shí)了敗醬草干預(yù)能夠抑制HCT-8/5-FU細(xì)胞的外排功能。可見,敗醬草對大腸癌耐藥具有一定的抑制作用。
大腸癌耐藥的發(fā)生發(fā)展過程極為復(fù)雜,其發(fā)生機(jī)制與多條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的異常調(diào)控密切相關(guān),而敗醬草治療大腸癌具有多成分、多靶點(diǎn)的作用特點(diǎn)。本研究僅從細(xì)胞層面觀察敗醬草對于大腸癌耐藥的影響,敗醬草對于大腸癌耐藥細(xì)胞的調(diào)控作用及復(fù)雜機(jī)制的研究仍有待進(jìn)一步深入。
參考文獻(xiàn):
[1] JEMAL A,BRAY F,CENTER M M,et al.Global cancer statistics [J].CA Cancer J Clin,2011,61(2):69-90.
[2] BRENNER H,KLOOR M,POX C P.Colorectal cancer [J].Lancet,2014,383(9927):1490-1502.
[3] 徐珊,徐昌芬.腫瘤多藥耐藥性發(fā)生機(jī)制及中藥逆轉(zhuǎn)作用的研究進(jìn)展[J].中國腫瘤生物治療雜志,2006,13(6):404-411.
[4] CARRILLO E,NAVARRO S A,RAMIREZ A,et al.5-Fluorouracil derivatives:a patent review [J].International Society of Amyloidosis,2015,25(10):1-14.
[5] OHTSU A.Chemotherapy for metastatic gastric cancer:past,present,and future [J].Gastroenterol,2008,43(4):256-264.
[6] 陳葉,劉金濤,朱源,等.大腸癌中醫(yī)辨證及治療概況[J].中國腫瘤生物治療雜志,2015,11(3):243-251.
[7] 楊靜,劉洪斌,李東華.清熱解毒方改善膿毒癥大鼠臟器功能的比較[J].中國中西醫(yī)結(jié)合外科雜志,2012,18(2):157-160.
[8] 趙棟,丁青,肖藝.敗醬草的研究進(jìn)展[J].中醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2009,15(10):76-78.
[9] 王蒨.敗醬草的研究進(jìn)展[J].醫(yī)學(xué)綜述,2009,15(13):2021-2022.
[10]高學(xué)敏.中藥學(xué)[M].7版.北京:中國中醫(yī)藥出版社,2002:140-142.
[11] CHEN L,LIU L,YE L,et al.Patrinia scabiosaefolia inhibits colorectal cancer growth through suppression of tumor angiogenesis [J].Oncol Rep,2013,30(3):1439-1443.
[12] LIU L,SHEN A,CHEN Y,et al.Patrinia scabiosaefolia induces mitochondrial-dependent apoptosis in a mouse model of colorectal cancer [J].Oncol Rep,2013,30(2):897-903.
[13] PENG J,CHEN Y,LIN J,et al.Patrinia scabiosaefolia extract suppresses proliferation and promotes apoptosis by inhibiting the STAT3 pathway in human multiple myeloma cells [J].Mol Med Rep,2011,4(2):313-318.
[14] ZHANG M,SUN G,SHEN A,et al.Patrinia scabiosaefolia inhibits the proliferation of colorectal cancer in vitro and in vivo via G1 /S cell cycle arrest [J].Oncol Rep,2015,32(2):856-860.
[15] LEE E J,KIM C,KIM J Y,et al.Inhibition of LPS-induced inflammatory biomarkers by ethyl acetate fraction of Patrinia scabiosaefolia through suppression of NF-κB activation in RAW 264.7 cells [J].Immunopharmacol Immunotoxicol,2012,34(2):282-291.
[16]黃煒,楊斌,陳陽,等.敗醬草乙醇提取物對人結(jié)腸癌細(xì)胞Caco-2 凋亡與增殖的影響[J].福建中醫(yī)藥,2013,44(3):57-59.
[17] TOLBA M F,ABDEL-RAHMAN S Z.Pterostilbine,an active component of blueberries,sensitizes colon cancer cells to 5-fluorouracil cytotoxicity [J].Sci Rep,2015,16(5):15239.
[18] BROXTERMAN H J,GOTINK K J,VERHEUL H M.Understanding the causes of multidrug resistance in cancer:a comparison of doxorubicin and sunitinib [J].Drug Resist Updat,2009,12(5):114-126.