王 萍
(紹興市人民醫(yī)院,紹興 312000)
小膠質(zhì)細胞(Microglia,MG)是中樞神經(jīng)系統(tǒng)(Central nervous system,CNS)中天然免疫和適應(yīng)性免疫的主要效應(yīng)細胞。小膠質(zhì)細胞的激活在神經(jīng)退行性疾病的病理發(fā)生過程中發(fā)揮了重要的作用,參與多種神經(jīng)退行性疾病進程,如阿爾茨海默病(AD)、帕金森病和多發(fā)性硬化癥等[1,2]。HSPA12B 是最近發(fā)現(xiàn)的HSP70 家族的新成員,與該家族其他成員相比較,有著自己特異的結(jié)構(gòu)和功能[3]。在CNS應(yīng)激過程中,HSPA12B發(fā)揮保護作用,可抑制神經(jīng)細胞凋亡,維持血腦屏障通透性,減少腦缺血缺氧梗死面積等[4,5]。課題組已報道了HSPA12B作為炎癥反應(yīng)蛋白在CNS炎癥過程中表達上調(diào),參與小膠質(zhì)細胞的炎性活化過程[8]。據(jù)報道,磷脂酰肌醇-3-激酶/絲氨酸-蘇氨酸蛋白kinase B(PI3K/Akt)途徑參與HSPA12B神經(jīng)保護作用的調(diào)節(jié)[5]。PI3K/Akt信號通路通過激活下游的NF-κB和GSK-3β/cyclin D1促進小膠質(zhì)細胞的活化和增殖[6,7]。本研究旨在評價PI3K/Akt途徑在小膠質(zhì)細胞炎性活化過程對HSPA12B表達的影響,為探討HSPA12B在CNS炎癥病程中功能的可能調(diào)節(jié)機制提供基礎(chǔ)。
1.1主要試劑及來源 HAPI大鼠小膠質(zhì)細胞由南通大學(xué)沈勤教授惠贈。DMEM培養(yǎng)基、胰蛋白酶(Gibco);LPS、TritionX-100(Sigma)。主要抗體抗HSPA12B多克隆抗體(Sigma);Akt、 phosphor-Akt (p-Akt)(Cell Signal);GAPDH、FITC Goat anti rabbit、Hoechst(Santa cruz)。
1.2方法
1.2.1細胞分組培養(yǎng) 細胞加入RPMI1640培養(yǎng)基(含100 U/ml青霉素、10 μg/ml鏈霉素、10 mmol/L-谷氨酰胺及10%小牛血清)于37℃、 5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。細胞達到80%融合時換成無血清的RPMI1640培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后進行實驗。
將處于對數(shù)生長期的小膠質(zhì)細胞隨機分為3組:①空白對照組。②LPS單一刺激組:取LPS終濃度均為0.1 μg/ml,刺激后繼續(xù)培養(yǎng)時間分別為2、4、6、8、12、24 h。③LY294002預(yù)處理1 h,再用LPS終濃度均為0.1 μg/ml刺激2 h組。
1.2.2Western blot 收獲各組培養(yǎng)細胞,1 ml 0.01 mol/L 預(yù)冷的 PBS刮下細胞。4℃,1 000 r/min離心15 min,棄上清。2×SDS蛋白裂解液溶解細胞沉淀,震蕩混勻后冰浴20 min。沸水煮10 min,4℃,12 000 r/min離心10 min,取上清。蛋白質(zhì)行10%SDS-PAGE,轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,PVDF膜用5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,TBST(10 mmol/L Tris-HCl,pH7.6,150 mmol/L NaCl,0.5%Tween 20)洗滌3次,兔抗Ab4112多克隆抗體室溫孵育1 h,4℃過夜,TBST洗滌3次,HRP-標記的山羊抗兔抗體室溫孵育1 h,TBST洗滌3次,用ECL(pierce)進行檢測,柯達膠片曝光顯影。
1.2.3免疫熒光細胞化學(xué) HAPI細胞種到蓋玻片上,貼壁后用1 μg/ml LPS刺激2 h,4%多聚甲醛,室溫固定1 h。0.01 mol/L PBS漂洗10 min×3次,加封閉血清,室溫2 h。吸去封閉血清,加入一抗混合液:兔抗大鼠Ab4112多克隆抗體(1∶100),室溫孵育1 h后4℃孵育過夜。0.01 mol/L PBS漂洗10 min×3次,加入二抗混合液: FITC偶聯(lián)的山羊抗兔IgG(1∶200),Hoechst(1∶200),避光,4℃孵育 1 h。0.01 mol/L PBS漂洗10 min×3次。熒光封片劑封片后熒光顯微鏡下觀察。
2.1LPS誘導(dǎo)的小膠質(zhì)細胞中HSPA12B的表達 用0.1 μg/ml LPS分別作用 0、2、4、6、8、12、24 h。經(jīng)不同時間刺激,HSPA12B的表達量不同。刺激2 h 后HSPA12B 蛋白表達開始增加,8 h后逐漸降至正常水平(見圖1)。
2.2LPS誘導(dǎo)小膠質(zhì)細胞中PI3K/Akt的磷酸化 用0.1 μg/ml LPS分別作用 0、 2、 4、6、8、12、24 h。經(jīng)不同時間刺激,磷酸化Akt(p-Akt)的蛋白表達量增加。刺激2 h后 p-Akt開始增加,6 h達到峰值,8 h 后逐漸降至正常水平(見圖2)。
圖1 不同作用時間的LPS對小膠質(zhì)細胞中HSPA12B蛋白表達的影響Fig.1 Effects of different stimulation terms of LPS on HSPA12B protein in microgliasNote: *.P<0.05,vs control.
圖2 不同作用時間的LPS對小膠質(zhì)細胞中Akt磷酸化蛋白表達的影響Fig.2 Effects of different stimulation terms of LPS on protein levels of phosphorylated Akt in microgliasNote: *.P<0.05,vs control.
圖3PI3K/Akt通路參與了LPS誘導(dǎo)的HSPA12B表達
Fig.3EffectsofPI3K/AktsignalingpathwayonLPS-inducedHSPA12Bproteinlevelsinmicroglias
Note: A.The effect of PI3K/Akt inhibitor LY294002 on the expression of phosphorylated Akt;B.The effect of LY294002 on the expression of HSPA12B;C.Quantitative analysis of the expressions of phosphorylated Akt and HSPA12B.*.P<0.05,versus the corresponding control;D.Immunocytochemical staining indicated that LY294002 could effectively inhibit the expression of HSPA12B induced by LPS in the cells.bar:10 μm.
2.3PI3K/Akt通路參與調(diào)節(jié)LPS誘導(dǎo)的小膠質(zhì)細胞中HSPA12B的表達 應(yīng)用PI3K/Akt特異的藥理抑制劑LY294002預(yù)處理小膠質(zhì)細胞1 h,再用LPS終濃度均為1 μg/ml刺激2 h組。檢測PI3K/Akt通路的激活在LPS誘導(dǎo)HSPA12B表達中的作用。LY294002(10、50 mmol/L)以濃度依賴方式不同程度抑制LPS誘導(dǎo)的HSPA12B的表達(見圖3A~C)。
免疫熒光染色顯示,應(yīng)用特異的藥理抑制劑LY294002(10 mmol/L),可顯著抑制LPS誘導(dǎo)的HSPA12B的表達增加。上述結(jié)果提示在LPS誘導(dǎo)HSPA12B表達的過程中,PI3K/Akt通路發(fā)揮了極其重要的作用(見圖3D)。
LPS作為小膠質(zhì)細胞刺激因子,已經(jīng)被大量用來研究AD與PD等病理發(fā)生發(fā)展過程中的炎癥進程,為之后的抗炎治療提供理論依據(jù)。在本研究中,我們報道了PI3K/Akt途徑參與調(diào)控LPS誘導(dǎo)小膠質(zhì)細胞HSPA12B表達。 LPS 0.1 μg/ml作用后,HSPA12B在2 h表達增加,表達活性最高;同時Akt的磷酸化水平增強,應(yīng)用PI3K/Akt通路抑制劑LY294002預(yù)處理小膠質(zhì)細胞,顯著抑制了LPS誘導(dǎo)HSPA12B蛋白水平的表達。
小膠質(zhì)細胞是常駐CNS的單核吞噬細胞家族成員之一,具有免疫和炎癥雙重功能。在LPS誘導(dǎo)的細胞因子應(yīng)答過程中,小膠質(zhì)細胞發(fā)生活化,通過炎癥放大和神經(jīng)元損失參與CNS神經(jīng)退行性變[9]。HSPA12B 是最近發(fā)現(xiàn)的HSP70 家族的新成員。HSP70在CNS應(yīng)激過程中高表達,這一現(xiàn)象被認為與炎癥過程中HSP70的神經(jīng)元保護作用密切相關(guān)[10]。文獻報道了過表達HSPA12B,能顯著縮小MCAO引起的腦梗塞面積,顯著減輕海馬神經(jīng)元損傷。在LPS誘導(dǎo)的炎癥過程中,HSPA12B的保護性作用也得到驗證,HSPA12B參與內(nèi)皮細胞的炎癥反應(yīng),過表達HSPA12B可以減弱血管內(nèi)皮細胞的炎性反應(yīng),從而保護心臟功能和抑制炎癥因子的合成[11]。本課題組曾首次報道HSPA12B 作為炎癥反應(yīng)蛋白參與CNS的炎癥進程,參與小膠質(zhì)細胞和星形膠質(zhì)細胞的活化,調(diào)節(jié)LPS活化的星形膠質(zhì)細胞中炎癥因子(TNF-α、IL-1β)的表達[12]。LPS活化小膠質(zhì)細胞,PI3K/Akt發(fā)生磷酸化增強。PI3K/Akt信號通路通過激活下游的NF-κB和GSK-3β/cyclin D1促進小膠質(zhì)細胞的活化和增殖。PI3K/Akt途徑參與介導(dǎo)HSPA12B的保護性作用過程:介導(dǎo)HSPA12B的心臟保護作用;調(diào)節(jié)HSPA12B誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞遷移;參與HSPA12B在腦缺血損傷中的抑制神經(jīng)細胞凋亡與腦缺血/腦保護再灌注損傷[13,14]。本研究通過抑制PI3K/Akt通路,檢測對LPS誘導(dǎo)的小膠質(zhì)細胞活化過程中HSPA12B表達的影響。應(yīng)用PI3K/Akt通路的抑制劑LY294002預(yù)處理小膠質(zhì)細胞,LPS誘導(dǎo)的HSPA12B的蛋白表達受到顯著抑制,細胞免疫熒光也顯示,細胞核內(nèi)表達明顯減弱。實驗結(jié)果表明,PI3K/Akt途徑參與調(diào)節(jié)LPS誘導(dǎo)活化的小膠質(zhì)細胞中HSPA12B的表達。
綜上所述,HSPA12B作為炎癥反應(yīng)蛋白參與小膠質(zhì)細胞活化過程,PI3K/Akt信號通路參與調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細胞炎性活化中HSPA12B的表達。這為進一步探討HSPA12B在小膠質(zhì)細胞炎癥過程中的作用及機制,為CNS神經(jīng)炎癥的治療尋找新的炎癥干預(yù)靶點提供基礎(chǔ)。
參考文獻:
[1] Daulatzai MA.Fundamental role of pan-inflammation and oxidative-nitrosative pathways in neuropathogenesis of Alzheimer′s disease in focal cerebral ischemic rats [J].Am J Neurodegener Dis,2016,5:102-130.
[2] Koch MW,Zabad R,Giuliani F,etal.Hydroxychloroquine reduces microglial activity and attenuates experimental autoimmune encephalomyelitis [J].J Neurol Sci,2015,358:131-137.
[3] Hu G,Tang J,Zhang B,etal.A novel endothelial-specific heat shock protein HspA12B is required in both zebrafish development and endothelial functions in vitro [J].J Cell Sci,2006,119:4117-4126.
[4] Kang L,Zhang G,Yan Y,etal.The role of HSPA12B in regulating neuronal apoptosis [J].Neurochem Res,2013,38:311-320.
[5] Ma Y,Lu C,Li C,etal.Overexpression of HSPA12B protects against cerebral ischemia/reperfusion injury via a PI3K/Akt-dependent mechanism [J].Biochim Biophys Acta,2013,1832:57-66.
[6] Saponaro C,Cianciulli A,Calvello R,etal.The PI3K/Akt pathway is required for LPS activation of microglial cells [J].Immunoph-armacol Immunotoxicol,2012,34:858-865.
[7] Dong H,Zhang X,Dai X,etal.Lithium ameliorates lipopolysac-charide-induced microglial activation via inhibition of toll-like receptor 4 expression by activating the PI3K/Akt/FoxO1 pathway [J].J Neuroinflammation,2014,11:140.
[8] Cui Z,Wang P,Sun L,etal.Lipopolysaccharide-evoked HSPA12B expression by activation of MAPK cascade in microglial cells of the spinal cord [J].J Neurol Sci,2010,294:29-37.
[9] Zhang X,Dong H,Li N,etal.Activated brain mast cells contribute to postoperative cognitive dysfunction by evoking microglia activation and neuronal apoptosis [J].J Neuroinflammation,2016,13:127.
[10] Dvoriantchikova G,Santos AR,Saeed AM,etal.Putative role of protein kinase C in neurotoxic inflammation mediated by extracellular heat shock protein 70 after ischemia-reperfusion [J].J Neuroinflammation,2014,11:81.
[11] Zhou H,Qian J,Li C,etal.Attenuation of cardiac dysfunction by HSPA12B in endotoxin-induced sepsis in mice through a PI3K-dependent mechanism [J].Cardiovasc Res,2011,89:109-118.
[12] Li XH,Huang J,Yuan DM,etal.HSPA12B regulates SSeCKS-mediated astrocyte inflammatory activation in neuroinflammation [J].Exp Cell Res,2015,339:310-319.
[13] Kong Q,Dai L,Wang Y,etal.HSPA12B Attenuated acute myocardial ischemia/reperfusion injury via maintaining end-othelial integrity in a PI3K/Akt/mTOR-dependent mechan-ism [J].Sci Rep,2016,6:33636.
[14] Wu J,Li X,Huang L,etal.HSPA12B inhibits lipopolysaccharide-induced inflammatory response in human umbilical vein endothelial cells [J].J Cell Mol Med,2015,19:544-554.