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    ghr-miR160負(fù)調(diào)控棉花葉片衰老機(jī)理研究

    2018-04-09 00:51:16段珊竇玲玲程帥帥郭亞寧龐朝友馬啟峰魏恒玲范術(shù)麗王寒濤喻樹迅
    棉花學(xué)報(bào) 2018年2期
    關(guān)鍵詞:子葉擬南芥棉花

    段珊 ,竇玲玲 ,程帥帥 ,郭亞寧 ,龐朝友 ,馬啟峰 ,魏恒玲 ,范術(shù)麗 ,王寒濤,喻樹迅*

    (1.西北農(nóng)林科技大學(xué)農(nóng)學(xué)院,陜西楊陵712100;2.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所/棉花生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南安陽455000)

    植物microRNA (miRNA)是1類長(zhǎng)度約為21 nt的內(nèi)源性無編碼功能的單鏈小分子RNA[1],通過降解靶基因或抑制其翻譯在轉(zhuǎn)錄后的水平上調(diào)節(jié)基因表達(dá)[2],從而廣泛參與植物生長(zhǎng)發(fā)育的一系列重要進(jìn)程,包括調(diào)控根的形成和發(fā)育、葉形態(tài)發(fā)生和極性及植物幼年期到生殖期轉(zhuǎn)變。同時(shí),miRNA在植物對(duì)外界環(huán)境應(yīng)答和非生物脅迫方面發(fā)揮重要的調(diào)控作用[3]。

    棉花是我國(guó)最重要的經(jīng)濟(jì)作物之一,葉片是棉花最重要的源器官,葉片早衰嚴(yán)重影響棉產(chǎn)量和纖維品質(zhì),進(jìn)而造成棉花減產(chǎn)[4]。葉片衰老是葉片發(fā)育的最后階段,多種激素參與了這一過程的調(diào)控,乙烯[5]、脫落酸[6]、茉莉酸[7]和水楊酸[8]可加速葉片衰老,細(xì)胞分裂素[9]、生長(zhǎng)素[10]和赤霉素[11]則延緩葉片衰老。

    miR160在植物的發(fā)育過程中起到了重要的調(diào)控作用。在擬南芥中,miR160通過靶向調(diào)控ARF10、ARF16和ARF17,參與調(diào)控植物生長(zhǎng)發(fā)育及生物脅迫等[12]。在大豆中,過表達(dá)gm-MIR160A可增加葉綠素含量,同時(shí)其靶基因GmARF和衰老標(biāo)記基因下調(diào),表明gma-miR160通過抑制靶基因表達(dá)對(duì)葉片的衰老進(jìn)程進(jìn)行負(fù)調(diào)控[13]。將普通野生稻MIR160f前體轉(zhuǎn)入擬南芥,可使蓮座葉數(shù)目減少,首次抽薹時(shí)間提前,表明MIR160f可能參與了植物花期的調(diào)控[14]。而在龍眼中,miR160及其靶基因不僅參與激素信號(hào)傳導(dǎo),還參與體細(xì)胞胚胎發(fā)生過程[15]。番茄的miR160a通過抑制其靶基因SLARF10可影響葉片的長(zhǎng)出和早期果實(shí)的發(fā)育[16]。

    棉屬A組、D組和AD組基因組測(cè)序已經(jīng)完成[17-19],可通過 psRNATarget(http://plantgrn.noble.org/psRNATarget/)預(yù)測(cè)miR160的靶基因。經(jīng)分析其為核酸外切體組分RRP41-like(Ribosomal RNA-processing protein 41),它的功能需要進(jìn)一步驗(yàn)證。

    本研究利用擬南芥內(nèi)源miR319a前體骨架[20],構(gòu)建了棉花miR160的過表達(dá)載體,通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)入擬南芥等方法,初步明確了ghr-miR160的作用,以期為棉花葉片衰老相關(guān)基因的研究提供新思路。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    棉花miR160及其靶基因GhRRP41L在葉片中的相對(duì)表達(dá)量分析所用材料為早熟早衰品種中棉所10號(hào) (CCRI 10)和早熟不早衰品種遼4086(Liao 4086),種植于中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所(河南省安陽市)溫室。擬南芥為哥倫比亞型,于本實(shí)驗(yàn)室溫室種植,生長(zhǎng)條件為22℃,16 h光照、8 h黑暗。pMD19-T載體購(gòu)于TAKARA公司,pBI121載體為本實(shí)驗(yàn)室保存,大腸桿菌DH5α購(gòu)于北京全式金有限公司,農(nóng)桿菌菌株LBA4404A為本實(shí)驗(yàn)室保存。

    1.2 取樣方法

    棉花子葉展平后,開始進(jìn)行第1次取樣,每隔1周取1次葉片,共取4次樣,3個(gè)重復(fù),于液氮中速凍后存于-80℃冰箱備用。

    1.3 DNA及RNA提取

    采用改良的CTAB法提取擬南芥基因組DNA[21],并將其保存于-20℃冰箱備用。使用Small RNA Purification Kit(Sigma)進(jìn)行 microRNA的提取,按照TransScript miRNA First-Strand cDNA Synthesis SuperMix(北京全式金公司)說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,microRNA及cDNA存于-20℃冰箱備用。RNA的提取參照多糖多酚類RNAprep pure plant kit(天根生化科技有限公司)說明書,應(yīng)用微量分光光度計(jì)和1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))瓊脂糖凝膠進(jìn)行濃度和質(zhì)量檢測(cè),合格的樣品使用 PrimeScriptRT reagent kit(TaKaRa)合成 cDNA模板后,于-20℃保存或直接用于反轉(zhuǎn)錄實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (Quantitative reverse transcription polymerase chainreaction,qRT-PCR)。

    1.4 MicroRNA160過表達(dá)載體的構(gòu)建

    從 miRBase (http://www.mirbase.org/,release 21)獲取擬南芥pre-miR319a序列,將ath-miR319a和ath-miR319a*替換為ghr-miR160和ghr-miR 160*,再?gòu)臄M南芥pre-miR319a上下游各取80 bp堿基,新的序列送于蘇州金唯智生物科技有限公司合成。以合成序列為模板,用AtmiR319a引物及 Mighty Amp○RDNA Polymerase Ver.2(TaKaRa)酶獲得所需序列后,回收目的片段并連接pMD19-T載體,轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞DH5α,用菌液PCR方法鑒定獲得陽性克隆,送至金維智公司進(jìn)行測(cè)序。

    對(duì)序列正確的菌液提取質(zhì)粒檢測(cè)后與經(jīng)過雙酶切 (酶切位點(diǎn)分別是BamHⅠ和SacⅠ)的pBI121載體進(jìn)行重組,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,用測(cè)序驗(yàn)證正確的大腸桿菌重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌。

    1.5 MicroRNA160過表達(dá)載體轉(zhuǎn)化擬南芥

    利用Bechtold等建立的蘸花法轉(zhuǎn)化擬南芥[22]。待種子成熟后收獲,為T0種子,消毒滅菌后種于具卡那霉素抗性的1/2 MS培養(yǎng)基,于4℃冰箱春化2 d后,移至16 h光照、8 h黑暗,21℃的培養(yǎng)箱中,生長(zhǎng)14 d后,將其移栽至營(yíng)養(yǎng)土中。待擬南芥生長(zhǎng)約40 d,取蓮座葉進(jìn)行PCR檢測(cè),分單株收獲陽性株,為T1種子,以此類推,直至T3純合株系。選取陽性純合株系,進(jìn)行g(shù)hr-miR160的轉(zhuǎn)錄水平分析及表型觀察。

    表1 引物序列Table 1 The primer sequences in this study

    1.6 qRT-PCR分析

    利用軟件Oligo7設(shè)計(jì)熒光定量引物(表1),以棉花葉片和擬南芥葉片的cDNA為模板,使用康為世紀(jì)的試劑盒UltraSYBR mixture with ROX在ABI7500 Real-time PCR system熒光定量?jī)x上進(jìn)行qRT-PCR分析,反應(yīng)條件為3步法,擴(kuò)增程序?yàn)椋侯A(yù)變性 95℃ 10 min;95℃ 10 s;60℃ 30 s;72℃32 s;40個(gè)循環(huán)。每個(gè)樣品技術(shù)重復(fù)3次,采用 2-△△Ct法,內(nèi)參基因?yàn)镚hU6 和GhActin。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 MicroRNA160家族分析

    在miRBase中共獲得pre-miR160數(shù)據(jù)141條,miR160數(shù)據(jù)150條,分布在19個(gè)物種共41種植物中。利用DNAMAN對(duì)150條miR160數(shù)據(jù)進(jìn)行多重序列比對(duì) (圖1-A),以棉花miR160為例,第11位、14位和16位的C、G和A堿基在所有miR160中高度保守。利用DNAMAN和i-TOL(http://itol.embl.de/index.shtml) 對(duì) 141 條pre-miR160數(shù)據(jù)進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析 (圖1-B),結(jié)果表明,棉花 miR160 和甜橙(Citrus sinensis)、木薯(Manihot esculenta)、葡萄(Vitis vinifera)、毛果楊(Populus trichocarpa)及番木瓜(Carica papaya)的miR160具有較高的同源性。

    2.2 棉花miR160的表達(dá)模式分析

    葉片衰老最顯著的變化是顏色由綠變黃,且葉片顏色越黃,衰老程度越嚴(yán)重[23]。觀察CCRI 10和 Liao 4086 在 4 個(gè)時(shí)期(7 d、21 d、35 d、49 d)的子葉表型,CCRI 10子葉生長(zhǎng)35 d時(shí)顏色明顯變黃,而同時(shí)期Liao 4086子葉并無明顯的黃化表型(圖2-A)。因此,此時(shí)期CCRI 10的衰老程度比Liao 4086更為嚴(yán)重。qRT-PCR測(cè)定ghr-miR160(圖 2-B)及其靶基因GhRRP41L(圖2-C)的相對(duì)表達(dá)量表明,在35 d的Liao 4086子葉中g(shù)hr-miR160表達(dá)量上調(diào),GhRRP41L表達(dá)量下調(diào),說明ghr-miR160可能通過作用于靶基因延緩子葉的衰老。

    圖1 miR160多重序列比對(duì)及進(jìn)化關(guān)系分析Fig.1 Multiple sequence alignment and phylogenetic analysis of miR160 family

    圖2 棉花miR160及其靶基因GhRRP41L在CCRI 10和Liao 4086不同時(shí)期子葉中的相對(duì)表達(dá)量Fig.2 qRT-PCR analysis of ghr-miR160 andGhRRP41Lin CCRI 10 and Liao 4086 at different development stages

    2.3 棉花miR160的功能驗(yàn)證分析

    提取轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥株系LR-1、LR-2、LR-3和野生型擬南芥葉片的 DNA和RNA,進(jìn)行PCR驗(yàn)證和表達(dá)量分析。在DNA水平,轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥的條帶和陽性質(zhì)粒條帶位置相同,而陰性對(duì)照和野生型擬南芥無條帶(圖3-A),說明ghr-miR160基因已經(jīng)插入擬南芥基因組中;在RNA水平,ghr-miR160在轉(zhuǎn)該基因擬南芥株系中表達(dá)量顯著上調(diào)45~390倍(圖3-B),說明ghr-miR160已在擬南芥中轉(zhuǎn)錄表達(dá)。表型觀察結(jié)果表明,轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥比野生型擬南芥要晚抽薹,晚開花,葉片衰老延緩(圖 4-A)。 分別取生長(zhǎng) 20 d、30 d、40 d和 50 d的轉(zhuǎn)ghr-miR160基因和野生型擬南芥蓮座葉,測(cè)定擬南芥衰老相關(guān)基因SAG12的表達(dá)量,同時(shí)測(cè)定葉綠素。結(jié)果表明,在擬南芥衰老進(jìn)程中,SAG12的表達(dá)量總體呈逐漸上升趨勢(shì),在擬南芥生長(zhǎng)的40 d和50 d,轉(zhuǎn)該基因擬南芥SAG12的表達(dá)量低于野生型擬南芥(圖4-B)。然而,擬南芥葉綠素含量隨著葉片衰老總體呈下降趨勢(shì),在生長(zhǎng)40 d和50 d時(shí),轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥的葉綠素含量高于野生型擬南芥(圖4-C)。

    圖3 轉(zhuǎn)基因擬南芥陽性檢測(cè)和ghr-miR160表達(dá)量變化Fig.3 The checking of transgenicArabidopsisby PCR and qRT-PCR of ghr-miR160

    3 討論

    葉片衰老是植物葉片發(fā)育的最后階段,在衰老過程中,葉綠素喪失,大分子物質(zhì)如蛋白質(zhì)、脂類、核酸等被降解,導(dǎo)致光合作用減弱,同時(shí)衰老組織的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)被運(yùn)輸?shù)接啄劢M織和生殖器官中[24]。棉花葉片衰老是1個(gè)普遍性的問題,發(fā)生于各國(guó)的產(chǎn)棉區(qū),導(dǎo)致棉花減產(chǎn)降質(zhì)[4]。目前對(duì)于棉花葉片衰老的研究主要集中在生理生化指標(biāo)上;因此,研究棉花早衰過程中的關(guān)鍵基因具有重要意義。

    根據(jù)Zhang等[25]對(duì)71個(gè)物種37個(gè)miRNA家族研究表明,至少存在于10個(gè)不同物種的miRNA家族是高度保守的。本研究發(fā)現(xiàn)植物miR160基因在進(jìn)化上高度保守,這與Zhang等[25]的研究一致。保守的miRNA基因往往形成復(fù)雜的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),功能具有多樣性[26]。在所有miR160分布中,玉米(Zea mays)、亞麻(Linum usitatissimum)、 小立碗蘚 (Physcomitrella patens)、 木薯(Manihot esculenta)中分別發(fā)現(xiàn) 13 個(gè)、10 個(gè)、9 個(gè)和 8 個(gè);而在菊芋(Helianthus tuberosus)、向日葵(Helianthus annuus)和小麥(Triticum aestivum)中分別發(fā)現(xiàn)1個(gè)。由此可見,miR160在低等植物和高等植物中都存在,是1個(gè)相對(duì)古老的家族;但是各個(gè)植物之間的存在數(shù)量有明顯差別,說明miR160基因在進(jìn)化中,有些舊的基因消失,也有些新的基因出現(xiàn),導(dǎo)致其在基因組呈分散分布,也進(jìn)一步說明miR160家族調(diào)控的復(fù)雜性和研究?jī)r(jià)值。

    為了探究棉花miR160的表達(dá)模式,本研究利用qRT-PCR分析了CCRI 10和Liao 40864各時(shí)期子葉的ghr-miR160及靶基因GhRRP41L的表達(dá)量。ghr-miR160在Liao 4086在子葉生長(zhǎng)35 d中表達(dá)量顯著高于CCRI 10。Xu等[27]也發(fā)現(xiàn)在水稻灌漿后期,miR160在不早衰品種的葉片中優(yōu)勢(shì)表達(dá)。這表明ghr-miR160可能調(diào)控棉花葉片的衰老。

    目前,對(duì)于miR160的研究主要集中于其在種子萌發(fā)、根冠發(fā)育及響應(yīng)逆境等方面的作用[12]。為了進(jìn)一步驗(yàn)證miR160在葉片衰老中的功能,用ghr-miR160過表達(dá)載體轉(zhuǎn)化擬南芥。在葉片衰老過程中,一些基因被激活,表達(dá)增強(qiáng),此類基因?yàn)樗ダ舷嚓P(guān)基因[28]。qRT-PCR檢測(cè)擬南芥衰老相關(guān)基因SAG12表達(dá)量結(jié)果顯示,生長(zhǎng)40 d的野生型擬南芥的SAG12表達(dá)量約為轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥的2倍,而至50 d時(shí)高達(dá)5倍。并且擬南芥生長(zhǎng)40 d、50 d時(shí),轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥葉綠素含量約為野生型擬南芥的18倍。以上結(jié)果表明,轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥的衰老速度遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于野生型擬南芥。張停停[29]發(fā)現(xiàn)miR160的靶基因ARF16突變體可使擬南芥提前衰老。以上研究表明,miR160負(fù)調(diào)控葉片衰老。

    4 結(jié)論

    通過對(duì)ghr-miR160進(jìn)行生物信息學(xué)分析、棉花子葉表達(dá)模式分析及過表達(dá)載體轉(zhuǎn)化擬南芥驗(yàn)證分析,結(jié)果表明:其在進(jìn)化過程中高度保守,且在35 d的早熟不早衰品種遼4086子葉中優(yōu)勢(shì)表達(dá);轉(zhuǎn)該基因擬南芥出現(xiàn)晚抽薹、晚開花和葉片衰老延遲現(xiàn)象。測(cè)定擬南芥葉片SAG12相對(duì)表達(dá)量和葉綠素含量結(jié)果進(jìn)一步表明,轉(zhuǎn)該基因擬南芥出現(xiàn)衰老延緩現(xiàn)象。以上結(jié)果初步證明棉花miR160基因可能對(duì)葉片衰老過程進(jìn)行負(fù)調(diào)控,為miRNA在葉片衰老進(jìn)程中發(fā)揮調(diào)控作用機(jī)制提供了新的思路,也為棉花分子育種提供了潛在的候選基因。

    圖4 轉(zhuǎn)ghr-miR160基因擬南芥衰老延緩表型及相關(guān)指標(biāo)測(cè)定Fig.4 PhenotypefordelayedleafsenescenceandresultsofrelateddetectioninArabidopsisoverexpressedghr-miR160

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