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      MicroRNA-34a對小鼠氣道平滑肌細胞增殖和ORMDL3表達的影響

      2018-03-16 02:11:22趙龍王寧石曉嵐劉翠翠
      中國現(xiàn)代醫(yī)學雜志 2018年8期
      關鍵詞:平滑肌試劑盒氣道

      趙龍,王寧,石曉嵐,劉翠翠

      (陜西省西安市兒童醫(yī)院 呼吸哮喘科,陜西 西安 710003)

      支氣管哮喘疾病是由多種炎癥細胞、免疫細胞,以及多種細胞因子作用于肺氣道的常見慢性疾病[1-2]。調查顯示,近年全球兒童哮喘發(fā)病率持續(xù)上升[3]。血清類黏蛋白1樣蛋白3(orosomucoid1-like protein 3,ORMDL3)基因位于17q21,被MOFFATT等[4]首次發(fā)現(xiàn)并確定為兒童哮喘新的候選基因,此后集中于兒童哮喘的研究[5]。大量研究顯示,ORMDL3轉基因小鼠能夠增加氣道重塑和氣道反應等重要的哮喘病理特征,而該過程可能與microRNA(miRNA)的調控關系密切[6-7]。miRNA是一種非編碼短鏈RNA,可調控多種生物學過程[8]。研究顯示,大量miRNA對哮喘疾病引起的氣道平滑肌細胞(airway smooth muscle cells,ASMC)和肥大細胞異常增殖具有調節(jié)作用,如miR-10a和miR-133a通過調控其靶基因影響ASMC的增殖[9-10]。miR-34a可參與調節(jié)多種平滑肌細胞增殖[11]。SHIN等[12]發(fā)現(xiàn),結節(jié)性硬化癥相關基因TSC1通過抑制miR-34a水平參與調控哮喘疾病,然而miR-34a對ASMC增殖的調控仍然未知。本文旨在探索miR-34a對ASMC增殖和ORMDL3表達水平的調控效應及機制,為哮喘發(fā)病機制的研究提供新思路。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      成年雌性小鼠[上海斯萊克實驗動物中心,無特定病原體級別,SCXK(滬)2015-0001],ASMC(美國Cambrex Bioscience公司),卵清蛋白(Ovalbumin,OVA)、氫氧化鋁 Al(OH)3購自美國 Sigma公司,miR-34a-mimic、miR-34a-mimic購自上海吉瑪制藥技術有限公司,壓縮式霧化吸入器(德國PARI有限公司),MTT細胞增殖檢測試劑盒(美國Trevigen公司),Dharma FECT 1 Transfection Reagent(美國 Thermo Scientific公司),MTT試劑(廣州新視野生物科技有限公司),miR Neasy mini試劑盒、miScript 逆轉錄試劑盒購自德國Qiagen公司,M-MLV逆轉錄酶(美國Clontech公司),SYBR Green Master Mix(美國生命國際科技有限公司),聚氰基丙烯酸正丁酯(bicinchoninic acid,BCA)蛋白檢測試劑盒、anti-ORMDL3、anti-甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)購自美國Santa Cruz Biotechnology公司。

      1.2 動物模型的復制與分組

      小鼠體重22~38 g,共90只進行OVA誘導,復制哮喘模型[13]。動物處理分為4組:①OVA組(30只)注射后1、7和14 d每只小鼠左下腹腔注射2.5 mg Al(OH)3+25μg OVA的磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)(250μl),21 ~ 27d用100ml 2%OVA進行氣道霧化;②對照組(15只)1、7和14 d每只小鼠左下腹腔注射250μl PBS;③miR-34amimic組(30只)基礎處理同模型組,并于21~27 d左下腹腔注射50 nmol/50μl miR-34a-mimic,1次/d;④miR-34a-mimic-NC組(15只)左下腹腔注射50 nmol/50μl miR-34a-mimic-NC,1次 /d。

      1.3 蘇木精-伊紅染色

      取28 d小鼠肺組織固定于10%多聚甲醛,用石蠟包埋,制作石蠟切片,厚5μm,用常規(guī)蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色并觀察肺部氣道組織病理學改變。

      1.4 ASMC培養(yǎng)

      ASMC的培養(yǎng)嚴格按照試劑盒說明書進行操作。將凍存的ASMC細胞于37℃溫水浴融化進行復蘇。500 r/min離心5 min,加10 ml含1%青鏈霉素、1%谷氨酰胺、10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,并置于37℃、5%二氧化碳CO2細胞培養(yǎng)箱中。每隔3 d換液1次,待細胞生長至融合率達80%后用0.25%胰酶消化,進行傳代,用于后續(xù)指標檢測。

      1.5 MicroRNA寡核苷酸的瞬時轉染

      ASMC按2×107個細胞/孔的密度接種于6孔板,細胞融合率達60%時,使用Dharma FECT 1試劑盒轉染25 nmol miR-34a-mimic或者對應的陰性對照組miR-34a-mimic-NC處理72 h,隨后用實時熒光定量聚合酶鏈反應(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測miR-34a的表達,驗證轉染效率。

      1.6 ASMC增殖實驗

      MTT法檢測細胞活力,經(jīng)過轉染的細胞接種于96孔培養(yǎng)板,密度為5×103個/孔。細胞在接受轉染后的72 h進行MTT試劑孵育,孵育條件為37℃、4 h。隨后加入二甲基亞砜溶解形成的甲瓚,使用Aspectrophotometer系統(tǒng)檢測490 nm下的吸光值。

      1.7 qRT-PCR

      細胞或者組織進行裂解后,使用miR Neasy mini試劑盒抽提總RNA,抽提過程嚴格按照試劑盒說明書進行。采用M-MLV逆轉錄酶將cDNA逆轉錄合成mRNA。用miScript逆轉錄試劑盒逆轉錄合成miRNA。采用SYBR Green Master Mix對基因表達水平進行定量。采用GAPDH對mRNA的相對表達結果進行標準化處理,用U6對miRNA進行標準化處理,表達水平相對倍數(shù)關系和顯著性分析用2-ΔΔCt法計算。見表1。

      表1 引物序列

      1.8 Western blot檢測

      對28 d大鼠氣道組織或被轉染72 h的ASMC使用裂解緩沖液(0.5% v/v Nonidet P-40,50)進行裂解,使用BCA蛋白檢測試劑盒對總蛋白濃度進行檢測,并且統(tǒng)一濃度為6μg/μl。用10μl蛋白進行12%聚丙烯酰胺凝膠電泳,電泳分離后用聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜進行濕轉。37℃、5%脫脂牛奶封閉1.5 h,一抗(anti-ORMDL3,1∶600)孵育,4℃過夜。用TBST清洗3次,10 min/次。PVDF膜經(jīng)辣根過氧化物酶標記的二抗(1∶18 000)室溫孵育1.5 h,使用化學發(fā)光增強系統(tǒng)對膜進行曝光。采用Image-Pro Plus 6.0 軟件(美國Media Cybernetics公司)測量光密度,并使用內參蛋白GAPDH進行標準化處理。

      1.9 統(tǒng)計學方法

      數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,用單因素方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結果

      2.1 OVA誘導氣道平滑肌層異常增殖

      首先觀察OVA對肺部結構的影響,HE染色結果表明,OVA誘導雌性小鼠的肺部結構改變明顯。對照組肺部結構正常,平滑肌層厚度均勻,上皮細胞排列整齊。OVA組結果顯示,氣道平滑肌層加厚,上皮細胞排列紊亂,肺部結構明顯異常。表明OVA可誘導小鼠氣道組織平滑肌層異常增生。見圖1。

      2.2 OVA誘導氣道組織ORMDL3表達上調并抑制miR-34a水平

      ORMDL3在哮喘中扮演重要角色,第28天,OVA組ORMDL3 mRNA和蛋白的相對表達量分別為(4.562±0.481)和(4.064±0.598),對照組ORMDL3 mRNA和蛋白的相對表達量分別為(1.001±0.249)和(0.999±0.140),經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學意義(t=16.104和12.224,均P=0.000),與對照組比較OVA組ORMDL3的相對表達上調。見圖2。

      通過生物信息學分析,初步篩選并檢測在第28天可能調控ORMDL3表達的9種miRNA,包括miR-1、miR-20、miR-34a、miR-34b-5p、miR-34c、miR-106a、miR-133a、miR-302及miR-449。OVA組miR-34a表達水平與對照組比較,經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),OVA組低于對照組。而OVA組miR-1、miR-20、miR-34b-5p、miR-34c、miR-106a、miR-133a、miR-302及miR-449的表達水平與對照組比較,經(jīng)t檢驗,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表2和圖3。

      2.3 miR-34a-mimic減少氣道平滑肌層的增殖與ORMDL3的高表達

      將焦點放在被OVA顯著抑制的miR-34a,從第21天開始連續(xù)7 d在左下腹腔注射miR-34a-mimic,HE染色觀察小鼠氣道組織變化。與miR-34a-mimic-NC組相比,miR-34a-mimic組小鼠氣道平滑肌層的異常增殖明顯減緩。見圖4。

      圖1 小鼠肺組織 (HE×400)

      圖2 氣道組織中ORMDL3的表達變化 (n =6,±s)

      表2 OVA與對照組小鼠氣道組織中miRNA的表達水平比較 (n =6,±s)

      表2 OVA與對照組小鼠氣道組織中miRNA的表達水平比較 (n =6,±s)

      組別 miR-1 miR-20 miR-34a miR-34b-5p miR-34c miR-106a miR-133a miR-302 miR-449對照組 1.001±0.013 1.000±0.108 1.000±0.051 1.000±0.121 1.000±0.064 1.000±0.093 1.001±0.086 1.000±0.048 1.001±0.039 OVA 組 1.264±0.281 1.021±0.253 0.188±0.121 1.011±0.012 0.983±0.110 1.252±0.229 1.137±0.117 0.992±0.131 1.044±0.134 t值 1.294 0.043 -12.619 0.027 -0.435 2.017 1.795 -0.02 0.057 P值 0.225 0.981 0.000 0.994 0.983 0.071 0.103 0.985 0.956

      圖3 氣道組織中miRNA的相對水平變化(n =6,±s)

      對照組、OVA組、miR-34a-mimic-NC組 及miR-34a-mimic組的ORMDL3 mRNA表達量分別為(1.002±0.132)、(6.242±0.705)、(6.120±0.146)和(2.810±0.249),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=488.606,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=-28.089,P=0.000);而OVA組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異無統(tǒng)計學意義(t=0.415,P=0.687)。因此,ORMDL3的高水平表達可被miR-34a-mimic減弱。見圖5。

      圖4 miR-34a過表達處理的肺組織 (HE×400)

      對照組、OVA組、miR-34a-mimic-NC組 及miR-34a-mimic組的ORMDL3蛋白表達量分別為(1.001±0.012)、(5.238±0.217)、(5.481±0.852)和(1.983±0.113),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=23.350,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=-9.969,P=0.000);而OVA組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異無統(tǒng)計學意義(t=0.677,P=0.514)。結果表明,ORMDL3的高水平表達可被miR-34a-mimic減弱。見圖5。

      圖5 各組氣道組織中ORMDL3 mRNA和蛋白表達水平比較

      2.4 miR-34a-mimic抑制ASMC活性與ORMDL3的表達

      體外培養(yǎng)ASMC細胞并轉染miR-34a-mimic或miR-34a-mimic-NC,測得對照組、miR-34amimic組及miR-34a-mimic-NC組的miR-34a相對表達水平分別為(1.004±0.183)、(8.315±0.282)和(1.002±0.092),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=1322.616,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組分別與對照組、miR-34amimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=53.271和60.389,均P=0.000);而對照組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異無統(tǒng)計學意義(t=0.024,P=0.981)。表明miR-34a-mimic成功使miR-34a過表達。見圖6。

      對照組、miR-34a-mimic-NC組及miR-34amimic組490 nm下的吸光值分別為(1.347±0.132)、(1.363±0.047)和(0.794±0.053),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=84.103,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組分別與對照組和miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=9.523和19.675,均P=0.000);而對照組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異無統(tǒng)計學意義(t=0.280,P=0.785)。因此,miR-34a可抑制ASMC細胞490 nm下的吸光值。見圖6。

      對照組、miR-34a-mimic-NC組及miR-34amimic組的細胞活性率分別為(100.034±2.582)、(100.243±9.251)和(68.982±13.243)%,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=44.785,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組分別與對照組和miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=5.637和4.740,均P=0.000);而對照組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=0.053,P=0.959)。結果表明,miR-34a可抑制ASMC細胞的活性。見圖6。

      在培養(yǎng)的ASMC中,對照組、miR-34a-mimic-NC組及miR-34a-mimic組的ORMDL3 mRNA表達水平分別為(0.998±0.123)、(1.131±0.082) 和(0.232±0.101),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=2328.823,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組分別與對照組和miR-34amimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=11.789和16.927,均P=0.000);而對照組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異無統(tǒng)計學意義(t=2.204,P=0.052)。因此,miR-34a可以抑制ASMC的增殖活性,并下調ORMDL3基因的表達。見圖7。

      在培養(yǎng)的ASMC中,對照組、miR-34a-mimic-NC組及miR-34a-mimic組的ORMDL3蛋白表達水平分別為(1.001±0.032)、(1.014±0.053)和(0.254±0.006),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(F=876.739,P=0.000)。進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,miR-34a-mimic組分別與對照組和miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=56.201和34.902,均P=0.000);而對照組與miR-34a-mimic-NC組比較,差異有統(tǒng)計學意義(t=0.514,P=0.618)。結果表明,miR-34a可以抑制ASMC的增殖活性,并下調ORMDL3基因的表達。見圖7。

      圖6 miR-34a-mimic抑制ASMC增殖 (n =6,±s)

      圖7 各組ASMC細胞中ORMDL3 mRNA和蛋白表達水平比較

      3 討論

      ASMC的功能性失調是支氣管哮喘的關鍵因素,對該功能失調的內在分子與細胞機制仍無統(tǒng)一認識。本研究發(fā)現(xiàn),miR-34a可能調控ORMDL3基因表達并參與介導哮喘ASMC功能。本實驗結果顯示,在OVA誘導和刺激下小鼠的氣道組織中miR-34a的表達下降。以往研究表明,miRNA可通過自身水平的改變,參與哮喘動物模型氣道和平滑肌層功能的調控,miR-10a可以通過調控其靶基因PI3KCA促進ASMC增殖[9],miR-133a通過調節(jié)靶向調控IL-13,從而影響Ras同源基因家族成員A(ras homolog gene family member A,RhoA)的表達,并且RhoA的表達增加能夠參與平滑肌的收縮調節(jié)[10]。miR-1在肌肉生理功能中扮演重要角色。研究表明,下調miR-1可以調節(jié)哮喘疾病過程中的平滑肌肥大[14]。miR-155敲除小鼠表現(xiàn)出迅速地氣道重塑和平滑肌細胞中的膠原沉積[15]。本研究發(fā)現(xiàn),OVA誘導的小鼠氣道組織中miR-1、miR-133a有微弱上調趨勢。但是引人注目的是,miR-34a表達下調明顯,說明在哮喘小鼠氣道組織中miR-34a可能具有潛在調控作用。大量研究表明,miR-34a可調控多種細胞功能,如抑制腫瘤細胞的增殖、侵襲能力[16],以及平滑肌細胞增殖、遷移能力[11]。另外SHIN等[12]發(fā)現(xiàn),結節(jié)性硬化癥相關基因TSC1通過抑制miR-34a水平參與調控哮喘疾病,并顯著抑制肥大細胞的增殖和活力。與上述結果一致,本研究的結果顯示,過表達miR-34a可抑制哮喘小鼠氣道平滑肌層的異常增殖和ASMC的增殖。以上結果說明,miR-34a能夠在包括哮喘在內的多種病理過程中,抑制多種細胞的增殖和活力。

      自首次報道后,ORMDL3被大量用于兒童期哮喘疾病的研究,ORMDL3亦可在胎兒及成人的組織中表達[4]。研究發(fā)現(xiàn),在小鼠哮喘模型中過表達ORMDL3,可增加哮喘氣道組織病理性重塑,包括平滑肌細胞增殖增加、上皮下纖維化及黏液分泌加重[7]。TONCHEVA等[17]發(fā)現(xiàn),ORMDL家族基因,包括ORMDLL1、ORMDL2及ORMDL3在哮喘患者平滑肌細胞中明顯上調,然而單核苷酸多態(tài)性分析發(fā)現(xiàn),ORMDL3是其中最主要的影響因素。本研究獲得類似的結果,即在OVA的誘導下,ORMDL3在氣道組織的表達上調。然而,該上調趨勢被過表達miR-34a抑制。近年來大量研究表明,miRNA可通過抑制靶基因直接或間接調控各種蛋白表達,從而發(fā)揮不同的生理功能[8],且miRNA參與調控哮喘引起的ASMC增殖等過程與ORMDL3的功能密不可分[7,18]。本研究結果發(fā)現(xiàn),在體外培養(yǎng)的ASMC中miR-34a過表達可抑制ORMDL3的表達。以上結果表明,在體內外的ASMC中,ORMDL3水平均可被miR-34a抑制。

      綜上所述,過表達miR-34a可緩解哮喘小鼠ASMC異常增殖和抑制ORMDL3的高表達;另外miR-34a可抑制AMSC細胞的增殖,并且降低AMSC中ORMDL3水平。結果表明,哮喘致氣道平滑肌層功能異常的內在機制可能與miR-34a調節(jié)ORMDL3水平變化相關。然而,miR-34a是否對ORMDL3進行直接調控,仍需進一步深入研究。

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