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    酶聯(lián)免疫吸附反應對獼猴桃潰瘍病菌效應子Hopz5多克隆抗體的特性分析

    2018-01-31 03:45:21胡月陳航楊巽喆李慶楊輝
    生物技術通報 2018年1期
    關鍵詞:潰瘍病懸液單胞菌

    胡月 陳航,2 楊巽喆 李慶 楊輝

    (1. 四川農(nóng)業(yè)大學農(nóng)學院,成都 611130;2. 眉山職業(yè)技術學院,眉山 620000)

    獼猴桃因其品質(zhì)鮮嫩,營養(yǎng)豐富,被譽為“水果之王”。中國是獼猴桃屬植物的起源中心,栽培面積最大,主要分布于陜西、四川、河南、貴州等省,其中,四川主栽品種“紅陽”,因其獨特的優(yōu)良紅色條紋性狀和優(yōu)異的風味成為新一代的主流品種[1]。

    然而,該品種易感獼猴桃潰瘍病,病菌為丁香假單胞菌獼猴桃致病變種(Pseudomonas syringae pv.actinidiae,PSA),該菌適應性廣,致病力強,來勢兇猛,發(fā)病嚴重時,整株枯死,幾年間造成果園毀滅[2-4]。該病害于1984 年日本靜岡縣首次發(fā)現(xiàn),隨后在韓國、意大利、法國、葡萄牙、西班牙、新西蘭和智利等多個國家陸續(xù)報道[5-8]。目前中國陜西[9]和四川等多個省份的獼猴桃產(chǎn)區(qū)有潰瘍病爆發(fā),四川蒼溪、雅安、都江堰等多個市縣的獼猴桃產(chǎn)區(qū)均有大規(guī)模潰瘍病發(fā)生,部分果園完全毀園,對獼猴桃產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展及經(jīng)濟損失造成嚴重影響。近些年,隨著獼猴桃潰瘍病感病品種的苗木繁育和調(diào)運不規(guī)范,防治困難等因素的影響,使得獼猴桃潰瘍病的發(fā)生、傳播和蔓延面積進一步擴大,現(xiàn)已成為獼猴桃的毀滅性病害,是生產(chǎn)上亟待解決的重大問題之一。

    2010年后,隨著潰瘍病給獼猴桃產(chǎn)業(yè)帶來的嚴重損失,國內(nèi)外專家學者對獼猴桃潰瘍病的病原菌進行了研究和分類。目前,將全球的PSA分成4類[10-12]:PSA1包括日本和1992年在意大利引起的獼猴桃潰瘍?。籔SA2只存在于韓國,其他國家尚未發(fā)現(xiàn)這一類群;PSA3廣布于全球,包括中國、智力、新西蘭、意大利(2008-2009年發(fā)生的獼猴桃潰瘍病等)和韓國[13];PSA4主要分布于新西蘭和澳大利亞。在各類群中,自從2008年意大利爆發(fā)了致病性極強的PSA3類群以來,該病害開始對獼猴桃產(chǎn)業(yè)的發(fā)展造成重大影響,才逐漸受到人們的關注,PSA3已成為制約全球獼猴桃產(chǎn)業(yè)發(fā)展的重要致病類群。因此,田間帶菌果樹的早期檢測,是防治獼猴桃潰瘍病的關鍵;對調(diào)運苗木的準確診斷,是防治其蔓延的關鍵。建立一套高效、快速、方便、準確的檢測方法,進而有利于實現(xiàn)該病害的早期診斷和及時防治。

    目前,主要通過PCR擴增特異基因序列進行PSA的分子檢測。2017年,Cimmino等[14]報道制備了一種PSA胞外多糖的多克隆抗體,建立了一種獼猴桃潰瘍病菌的血清學檢測。本研究則根據(jù)2013年McCann等[11]對獼猴桃潰瘍病菌不同類群基因組的分析,尤其是效應子在PSA各類群中的差異比較,指出PSA3類群的特異效應子包括Hopz5、NRPS、hopH1、hopAM-2和hopAA1-2。此外,根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫(http://ncbi.nlm.nih.gov/)和 T3SE 數(shù)據(jù)庫(http:// pseudomonas-syringae.org/)提供的信息,表明僅Hopz5效應子不存在于其他細菌中。因此,利用該效應子進行分子檢測,以及制備的抗體行血清學檢測都將表現(xiàn)高度的特異性及準確性。目前,鑒于Ciarroni等[15]報道中國獼猴桃潰瘍病菌為PSA3類群,并且前期我們對四川各地獼猴桃潰瘍病菌類群的鑒定,也證實其為該類群。因此,本研究選擇PSA3特異效應子Hopz5制備的多克隆抗體,通過對抗體特性分析,旨為提供一種用于PSA3血清學檢測用試劑。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 供試材料 獼猴桃品種為紅陽;獼猴桃潰瘍病菌分離自蒼溪獼猴桃發(fā)病果園,并于實驗室保存?zhèn)溆茫惶镩g各檢測用樣品材料取自都江堰。

    1.1.2 供試試劑及儀器 Hopz5多克隆抗體由四川農(nóng)業(yè)大學植物病理實驗室提供;限制性內(nèi)切酶Xho I、BamH I,Primestar HS polymerase購自寶生物工程(大連)有限公司;質(zhì)粒小提試劑盒購自Tiangen 公司;預染蛋白marker,HRP(辣根過氧化物酶),卡那霉素購自北京全式金公司。TMB顯色液購自天根公司。堿性磷酸酶購自中杉金橋公司。NBT/BCIP試劑盒購自康為世紀公司。引物由蘇州金唯智公司合成。UVP 凝膠成像儀為美國BIO-RAD,DNA濃度檢測儀為美國Thermo公司的NANODROP200。

    1.2 方法

    1.2.1 不同類型樣品的制備 PSA在LB固體培養(yǎng)基上進行畫線,放于25℃ 恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),將菌落用無菌水洗脫,制備為1×108CFU/mL的PSA菌懸液。感病組織總蛋白提取過程:液氮充分研磨材料,按照1 g∶2 mL,加入蛋白提取緩沖液(50 mmol/L Tris.HCl(PH 6.8),4% SDS,6%β-巰 基 乙 醇,4mol/L尿素,10%甘油)。100℃溫浴10 min,然后12 000×g離心10 min,取上清即為總蛋白。組織浸泡液制備過程:將帶菌組織切成小碎塊,0.005 g樣品碎片中加入無菌水20 μL,浸泡10 s,吸取浸泡液備用。以制備的PSA菌懸液,感病組織提取的總蛋白和組織浸泡液這3種樣品為材料,用于ELISA檢測。

    1.2.2 ELISA檢測 ELISA的操作步驟參照以前報道的方法略有改動[16]。取待測樣品,平均每孔加入樣品10 μL、包被液90 μL,置于37℃充分吸附2 h;倒出固定液,平均各孔加入220 μL PBST,洗板3次后每孔加入100 μL封閉液,置于37℃溫育2 h;倒出封閉液,用PBST洗板3次后每孔加入100 μL用PBST稀釋成1∶2 000的一抗(PAb-Hopz5),37℃孵育2 h;倒出一抗,用PBST洗板3次后每孔加入100 μL用 PBS將辣根酶結(jié)合的山羊抗小鼠的IgG(二抗)(1∶2 000),37℃培養(yǎng)90 min;倒出二抗,用PBST洗板3次后每孔加入100 μL底物緩沖液,于空白對照開始顯色時,每孔加入2 mol/L H2SO4100 μL終止反應,待藍色轉(zhuǎn)變?yōu)辄S色,用酶標儀測定450 nm下的OD值。

    1.2.3 不同侵染時期的蛋白表達檢測 取兩年生的獼猴桃枝干約20 cm,先用無菌水沖洗,再用1%次氯酸鈉浸泡 10 min進行表面消毒,然后用無菌水浸泡漂洗3次,每次 10 min。PSA于25℃、180 r/min震蕩培養(yǎng)至對數(shù)生長期(16-18 h),收集菌體細胞(5 000 r/min,10 min),并重懸浮在1×PBS緩沖液中,血球計數(shù)板計數(shù)法調(diào)節(jié)菌懸液濃度至 1×108CFU/mL。于接種后3、6、12和24 d取材,提取總蛋白,取10 μL用于ELISA檢測。

    1.2.4 Hopz5抗體的特異性檢測 將丁香假單胞菌番茄致病變種、枯草芽孢桿菌、姜瘟菌、巨大芽孢桿菌、惡臭假單胞菌、熒光假單胞菌、大黃歐文氏菌培養(yǎng)24 h后用包被液制成濃度為1×108CFU/mL的菌懸液,取50 μL用于ELISA檢測。

    1.2.5 Hopz5抗體的ELISA靈敏度檢測 將PSA制備為1×108CFU/mL的菌懸液,用無菌水梯度稀釋 為 107、106、105、104、103、103、102、101、100CFU/mL和無菌水做對照,每個稀釋梯度取10 μL用于ELISA檢測;10 μL用于PCR檢測。

    1.2.6 Hopz5抗體的田間樣品檢測 從都江堰獼猴桃潰瘍病發(fā)病果園,隨機取30個樣品進行檢測,每個樣品分成兩份,一份提取DNA,用于PCR檢測,所用引物為PSAF1:5'-TTTTGCTTTGC ACACCCGATTTT-3'和 PSAR2:5'-CACGCACCCTT CAATCAGGATG-3'[17],擴增大小 280 bp ;Hopz5-F :5'-TCACTCCTAGACTGGAATAC-3'和Hopz5-R:5'-GGCTATCATGAAGGCTGTCA-3',擴增大小550 bp。另一份提取植物總蛋白,用于ELISA檢測。

    2 結(jié)果

    2.1 Hopz5抗體的Western-blot檢測

    將PSA3特異效應子Hopz5多克隆抗體首先通過Western-blot進行檢測,其檢出的信號條帶為38.98 kD,與預期大小一致,且檢測條帶單一(圖1),進而將Hopz5抗體進行后續(xù)特性分析。

    圖1 PAbs-Hopz5的Western blot檢測

    2.2 Hopz5抗體對不同類型樣品的檢測分析

    Hopz5是獼猴桃潰瘍病菌的一個特異效應子,是病原細菌在侵染寄主過程中的重要致病因子之一。Hopz5多克隆抗體能否用于檢測培養(yǎng)的PSA,有待驗證。因此,將培養(yǎng)24 h的PSA菌液,以感病獼猴桃組織的總蛋白和感病組織浸泡液為參照,ELISA檢測結(jié)果(圖2)表明3種樣品均能顯色,其中菌懸液、蛋白樣品和組織浸泡液的OD450值分別為1.74、1.66和1.32,P/N值均大于2,結(jié)果為陽性,表明Hopz5抗體對培養(yǎng)基上的PSA同帶菌獼猴桃組織一樣,可進行檢測,具有較好的應用范圍。

    2.3 不同侵染時期的蛋白表達分析

    為了明確Hopz5抗體檢測是否受PSA不同侵染時期的影響,我們將人工接種PSA的枝干,于接種后3、6、12和24 d,提取總蛋白,進行ELISA檢測,OD450值分別為1.46、1.74、1.75和1.76,P/N值均大于2,結(jié)果如圖3,表明該抗體可以穩(wěn)定檢測PSA不同侵染時期的材料。

    圖2 不同類型的PSA樣品檢測

    圖3 不同接種時期的PSA檢測

    2.4 Hopz5抗體的特異性分析

    將PSA和其他7種供試細菌進行特異性分析,PSA菌懸液發(fā)生明顯反應,OD450值為1.71,P/N值大于2。與供試菌枯草芽孢桿菌、姜瘟菌、丁香假單胞菌番茄致病變種、巨大芽孢桿菌、惡臭假單胞菌、熒光假單胞菌和大黃歐文氏菌無交叉反應,OD450值均約0.2,結(jié)果如圖4,表明Hopz5抗體對PSA的檢測特異性較好。

    2.5 Hopz5抗體的ELISA檢測靈敏度分析

    為了明確Hopz5多克隆抗體檢測PSA的有效靈敏度,采用ELISA和PCR兩種方法對比分析。將PSA菌懸液稀釋成3×100-3×108CFU/mL 9個濃度梯度,每個濃度梯度分別用于PCR和ELISA檢測。結(jié)果顯示(圖5),Hopz5抗體用于ELISA檢測的最低菌懸液濃度為3× 105CFU/mL,受靈敏度限制,利用該抗體可進行帶菌苗木和田間樣品的診斷。然而,PCR檢測PSA菌懸液的最低濃度為3×10 CFU/mL,具有較高的檢測靈敏度。

    圖4 PAb-Hopz5的特異性檢測

    圖5 ELISA分析PAb-Hopz5的檢測靈敏度

    2.6 Hopz5抗體的田間樣品檢測

    為了明確Hopz5多克隆抗體的檢測準確性,我們以田間獼猴桃潰瘍病發(fā)病樣品為材料,結(jié)合PCR結(jié)果對比分析。將采集的田間樣品一份提取DNA,用于PCR檢測;另一份提取總蛋白,用于ELISA檢測。ELISA檢測樣品編號為3-19的OD450值大于1.5,P/N值大于2(圖6),均為陽性結(jié)果,與PCR檢測一致。然而,即使PCR檢測菌懸液的靈敏度較高,但對于大部分田間樣品材料,PCR擴增的目標條帶并不夠清晰,推測由于獼猴桃多糖多酚類物質(zhì)含量高,影響核酸提取質(zhì)量,進而對PCR擴增產(chǎn)物造成影響。然而,田間樣品的ELISA檢測結(jié)果明顯,其可信度高,說明Hopz5可用于ELSIA的田間樣品診斷。

    圖6 PAb-Hopz5的田間樣品檢測

    3 討論

    近些年,獼猴桃潰瘍病對獼猴桃產(chǎn)業(yè)具有毀滅性的破環(huán),造成了重大的經(jīng)濟損失。因此,對病原菌的檢測為限制其進一步擴展和及時防治提供依據(jù)。

    目前,分子檢測是獼猴桃潰瘍病菌的主要方式。在全基因組未測序之前,2002年Koh等[18]通過SRAP分析,篩選了一段能夠擴增PSA的序列,建立了獼猴桃潰瘍病菌的分子檢測方式。2010年Rees-George等[17]根據(jù) PSA的 16S-23SrDNA的 ITS區(qū)域,設計了一對引物,但該引物不能將P. syringae pv. theae區(qū)分。2013年Balestra等[19]建立的PSA雙重PCR檢測體系,其中利用HopZ3序列設計了一對引物,能夠特異檢測PSA,并將P. syringae pv. theae區(qū)分。雖然,血清學檢測具有操作方便的特點,針對PSA卻發(fā)展較慢,直到2017年,Cimmino等[14]制備了一種PSA胞外多糖的多克隆抗體,才建立了獼猴桃潰瘍病菌的ELISA檢測。本研究則基于PSA的主要致病類群PSA3,選擇特異性效應子Hopz5,制備了相應的多克隆抗體,建立了一種針對我國主要類群的血清學檢測方法。

    效應子、胞外多糖、胞外酶和毒素等通常為病原菌的致病因子。效應子作為病原細菌的重要致病因子之一,能夠通過III型分泌系統(tǒng)進入寄主植物中。例如,假單胞菌屬的hopW1效應子能夠與感病寄主的機動蛋白結(jié)合,破壞寄主正常生長[20]。然而,Hopz5效應子多克隆抗體能否廣泛用于PSA的檢測仍有待驗證,畢竟目前鮮有利用效應子進行血清學檢測的文獻報道。因此,本研究在抗體特性分析中,首先利用培養(yǎng)基上培養(yǎng)的PSA3和不同類型的材料進行檢測發(fā)現(xiàn),Hopz5多克隆抗體均能檢測PSA3,但發(fā)病枝干浸泡液的檢測效果較人工培養(yǎng)的菌液和提取的總蛋白效果差,表明選用獼猴桃組織的蛋白進行檢測是較好的一種樣品類型。此外,通過人工接種方式,對不同接種時期的樣品進行檢測,均能檢出PSA3,說明該抗體的檢測不受侵染時期的影響。通過特異性比較,Hopz5多克隆抗體對供試菌無交叉反應。在靈敏度分析中,ELISA檢測PSA3菌懸液的最低濃度為3×105CFU/mL,與PCR的檢測靈敏度相比,差異較大,PCR能夠檢測PSA3的最低濃度為3×10 CFU/mL。然而,田間帶菌組織的檢測發(fā)現(xiàn),ELISA對樣品的檢測效果優(yōu)于PCR。推測原因在于,獼猴桃組織富含多糖多酚類物質(zhì),對核酸提取質(zhì)量影響較大,進而影響PCR的檢測結(jié)果。Hopz5抗體對田間樣品的檢測表明其結(jié)果較準確,可信度較高。

    4 結(jié)論

    本實驗通過對Hopz5抗體的特性分析和田間樣品檢測結(jié)果表明,我國由丁香假單胞菌獼猴桃致病變種PSA3類群引起的獼猴桃潰瘍病可以利用其效應子Hopz5制備的多克隆抗體進行血清學檢測,該抗體可運用于室內(nèi)培養(yǎng)的菌液和田間樣品的檢測,可作為其他血清學檢測的試劑,具有較廣的應用范圍。

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